Centre de Documentation Campus Montignies
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Lundi : 8h-18h30
Mardi : 8h-18h30
Mercredi 9h-16h30
Jeudi : 8h-18h30
Vendredi : 8h-16h30
Attention, votre centre de documentation sera fermé du 27/04 au 12/05 inclus.
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Etude des mécanismes moléculaires contrôlant la réponse chimiotactique de la bactérie Caulobacter crescentus face au cuivre / Vincent Paquet
Titre : Etude des mécanismes moléculaires contrôlant la réponse chimiotactique de la bactérie Caulobacter crescentus face au cuivre Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Vincent Paquet, Auteur ; Françoise Motte, Directeur de la recherche Editeur : Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale Année de publication : 2019 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale UNamur Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Notre environnement est constamment soumis à des variations de température, de concentration en CO2 dans l’air, ou encore à la présence de produits toxiques dans les mers ou les océans. L’augmentation de la concentration en cuivre (Cu) dans les eaux provoquant des stress oxydatifs pour les bactéries qui y sont exposées en est un exemple. Pour éviter des troubles métaboliques, les bactéries développent divers mécanismes de réponses adaptatifs. Caulobacter crescentus est un exemple de ces bactéries qui possède un mécanisme spécifique mis en oeuvre pour résister à ces variations extérieures. En effet, cet organisme aquatique possède un cycle cellulaire assez particulier. Son cycle cellulaire donne naissance à deux
cellules filles totalement différentes que ce soit morphologiquement ou fonctionnellement. Ces deux cellules sont appelées stalked et swarmer. Ces deux cellules réagissent différemment dans un milieu ou la concentration en Cu est stressante. D’un côté, la cellule stalked possède
un système appelé PcoAB qui lui permet de réguler sa concentration intracellulaire en Cu et de l’autre côté, la cellule swarmer peut à l’aide de son flagelle s’éloigner de cet environnement présentant le stress dû au Cu. Ce mécanisme est d’ailleurs appelé le chimiotactisme.
En ce moment, une étude visant à caractériser le chimiotactisme de C. crescentus est menée dans le laboratoire de l’URBM. Ce travail de fin d’étude s’inscrit dans le cadre de cette recherche. L’objectif premier de ce travail est de mettre au point deux protocoles simples et
rapides qui permettent une mise en évidence directe d’un mouvement dû à ce chimiotactisme. Ces deux expériences se basent sur des principes différents, l’une se base sur des gouttières de nage et l’autre se base sur une plaque 96 puits. Ces deux expérimentations
seront adaptées depuis un protocole standard existant afin de trouver les conditions optimales pour visualiser significativement un mouvement chimiotactique.
L’autre axe de ce travail vise à caractériser une protéine reconnue comme un acteur potentiellement important dans ce processus chimiotactique. Pour ce faire, un protocole de surexpression optimale de cette protéine sera mis au point sur base d’un procédé existant et utilisé pour la surexpression d’autres protéines. Pour caractériser cette protéine après surexpression, elle sera purifiée et cristallisée pour en étudier sa structure tridimensionnelle.Note de contenu : Présentation du lieu de stage ................................................................................................ 9
Introduction générale ............................................................................................................11
1. Contexte théorique ........................................................................................................13
1.1 Caulobacter crescentus ..........................................................................................13
1.2 Chimiotactisme .......................................................................................................15
1.3 Methyl-accepting Chemotaxis Protein (MCP) .........................................................17
2. Contexte de la recherche et objectifs .............................................................................19
3. Matériel et méthode .......................................................................................................21
3.1 Test gouttière : Protocole standard .........................................................................21
3.1.1 1ere mise au point.............................................................................................22
3.1.2 2e mise au point...............................................................................................22
3.1.3 3e mise au point...............................................................................................23
3.2 Test de chimiotactisme en plaque 96 puits : protocole standard .............................24
3.2.1 1ere mise au point.............................................................................................25
3.2.2 2e mise au point...............................................................................................26
3.2.3 3e mise au point...............................................................................................27
3.3 Production de souche BL21-pET28a-mcpP ............................................................28
3.3.1 Construction souche BL21-pET28a-mcpP .......................................................28
3.4 Surexpression de BL21-pET28A-mcpP ..................................................................32
3.4.1 Cultures LB-Kan en petit volume de BL21-pET28a-mcpP ...............................32
3.4.2 Vérification sur gel SDS-PAGE de l’induction à l’IPTG en petit volume ...........33
4. Résultats et discussion ..................................................................................................35
4.1 Gouttières ..............................................................................................................35
4.1.1 1ere mise au point .............................................................................................35
4.1.2 2e mise au point...............................................................................................36
4.1.3 3e mise au point...............................................................................................38
4.2 Test de chimiotactisme en Plaque 96 puits ............................................................40
4.2.1 1ere mise au point.............................................................................................40
4.2.2 2e mise au point...............................................................................................41
4.2.3 3e mise au point...............................................................................................42
4.3 Surexpression de McpP .........................................................................................43
4.3.1 Construction de la souche BL21-pET28a-mcpP ..............................................43
4.3.2 Vérification de la surexpression de BL21-pET28a-mcpP .................................45
Conclusion ...........................................................................................................................47
Bibliographie ........................................................................................................................49
Liste des figures ...................................................................................................................50
Liste des tableaux ................................................................................................................50
AnnexesPermalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=79997 Etude des mécanismes moléculaires contrôlant la réponse chimiotactique de la bactérie Caulobacter crescentus face au cuivre [TFE / Mémoire] / Vincent Paquet, Auteur ; Françoise Motte, Directeur de la recherche . - Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale, 2019.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : biologie médicale UNamur Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Notre environnement est constamment soumis à des variations de température, de concentration en CO2 dans l’air, ou encore à la présence de produits toxiques dans les mers ou les océans. L’augmentation de la concentration en cuivre (Cu) dans les eaux provoquant des stress oxydatifs pour les bactéries qui y sont exposées en est un exemple. Pour éviter des troubles métaboliques, les bactéries développent divers mécanismes de réponses adaptatifs. Caulobacter crescentus est un exemple de ces bactéries qui possède un mécanisme spécifique mis en oeuvre pour résister à ces variations extérieures. En effet, cet organisme aquatique possède un cycle cellulaire assez particulier. Son cycle cellulaire donne naissance à deux
cellules filles totalement différentes que ce soit morphologiquement ou fonctionnellement. Ces deux cellules sont appelées stalked et swarmer. Ces deux cellules réagissent différemment dans un milieu ou la concentration en Cu est stressante. D’un côté, la cellule stalked possède
un système appelé PcoAB qui lui permet de réguler sa concentration intracellulaire en Cu et de l’autre côté, la cellule swarmer peut à l’aide de son flagelle s’éloigner de cet environnement présentant le stress dû au Cu. Ce mécanisme est d’ailleurs appelé le chimiotactisme.
En ce moment, une étude visant à caractériser le chimiotactisme de C. crescentus est menée dans le laboratoire de l’URBM. Ce travail de fin d’étude s’inscrit dans le cadre de cette recherche. L’objectif premier de ce travail est de mettre au point deux protocoles simples et
rapides qui permettent une mise en évidence directe d’un mouvement dû à ce chimiotactisme. Ces deux expériences se basent sur des principes différents, l’une se base sur des gouttières de nage et l’autre se base sur une plaque 96 puits. Ces deux expérimentations
seront adaptées depuis un protocole standard existant afin de trouver les conditions optimales pour visualiser significativement un mouvement chimiotactique.
L’autre axe de ce travail vise à caractériser une protéine reconnue comme un acteur potentiellement important dans ce processus chimiotactique. Pour ce faire, un protocole de surexpression optimale de cette protéine sera mis au point sur base d’un procédé existant et utilisé pour la surexpression d’autres protéines. Pour caractériser cette protéine après surexpression, elle sera purifiée et cristallisée pour en étudier sa structure tridimensionnelle.Note de contenu : Présentation du lieu de stage ................................................................................................ 9
Introduction générale ............................................................................................................11
1. Contexte théorique ........................................................................................................13
1.1 Caulobacter crescentus ..........................................................................................13
1.2 Chimiotactisme .......................................................................................................15
1.3 Methyl-accepting Chemotaxis Protein (MCP) .........................................................17
2. Contexte de la recherche et objectifs .............................................................................19
3. Matériel et méthode .......................................................................................................21
3.1 Test gouttière : Protocole standard .........................................................................21
3.1.1 1ere mise au point.............................................................................................22
3.1.2 2e mise au point...............................................................................................22
3.1.3 3e mise au point...............................................................................................23
3.2 Test de chimiotactisme en plaque 96 puits : protocole standard .............................24
3.2.1 1ere mise au point.............................................................................................25
3.2.2 2e mise au point...............................................................................................26
3.2.3 3e mise au point...............................................................................................27
3.3 Production de souche BL21-pET28a-mcpP ............................................................28
3.3.1 Construction souche BL21-pET28a-mcpP .......................................................28
3.4 Surexpression de BL21-pET28A-mcpP ..................................................................32
3.4.1 Cultures LB-Kan en petit volume de BL21-pET28a-mcpP ...............................32
3.4.2 Vérification sur gel SDS-PAGE de l’induction à l’IPTG en petit volume ...........33
4. Résultats et discussion ..................................................................................................35
4.1 Gouttières ..............................................................................................................35
4.1.1 1ere mise au point .............................................................................................35
4.1.2 2e mise au point...............................................................................................36
4.1.3 3e mise au point...............................................................................................38
4.2 Test de chimiotactisme en Plaque 96 puits ............................................................40
4.2.1 1ere mise au point.............................................................................................40
4.2.2 2e mise au point...............................................................................................41
4.2.3 3e mise au point...............................................................................................42
4.3 Surexpression de McpP .........................................................................................43
4.3.1 Construction de la souche BL21-pET28a-mcpP ..............................................43
4.3.2 Vérification de la surexpression de BL21-pET28a-mcpP .................................45
Conclusion ...........................................................................................................................47
Bibliographie ........................................................................................................................49
Liste des figures ...................................................................................................................50
Liste des tableaux ................................................................................................................50
AnnexesPermalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=79997 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Etude des mécanismes de résistance de Caulobacter crescentus au cuivre / Esma ALPAN
Titre : Etude des mécanismes de résistance de Caulobacter crescentus au cuivre Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Esma ALPAN, Auteur ; Jean-Yves MATROULE, Directeur de la recherche ; Johan Wouters, Directeur de la recherche Année de publication : 2017 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale Université de Namur département de biologie. Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : TABLE DES MATIÈRES
REMERCIEMENTS
PRÉSENTATION DU LIEU DE STAGE
INTRODUCTION ............................................................................................................................... 13
1. CONTEXTE THÉORIQUE ........................................................................................................... 15
1.1. CAULOBACTER CRESCENTUS ....................................................................................................... 15
1.1.1. Généralités ..................................................................................................................... 15
1.1.2. Cycle de vie ..................................................................................................................... 15
1.2. LE CUIVRE, UN ÉLÉMENT ESSENTIEL .............................................................................................. 16
1.2.1. Distribution du Cu ........................................................................................................... 16
1.2.2. Toxicité du Cu à haute concentration ............................................................................. 18
1.2.3. Utilisation antérieure ..................................................................................................... 18
1.3. MÉCANISMES DE RÉSISTANCE FACE AU CU CHEZ LES BACTÉRIES ......................................................... 19
1.3.1. Pénétration ..................................................................................................................... 19
1.3.2. Prise en charge – Résistance .......................................................................................... 19
1.3.2.1. Système « Cue » ................................................................................................................. 20
1.3.2.2. Système « Cus » ................................................................................................................. 21
1.3.2.3. Système « Pco » ................................................................................................................. 22
1.3.2.4. Système « Cut » .................................................................................................................. 24
1.3.3. Séquestration du Cu ....................................................................................................... 24
1.3.4. Limitation de l’utilisation du Cu...................................................................................... 24
1.4. PATHOLOGIES LIÉES AU CU CHEZ L’HOMME ................................................................................... 25
1.5. RÉPONSE DE C. CRESCENTUS AU CU ............................................................................................. 25
2. OBJECTIFS ET STRATÉGIES ...................................................................................................... 27
3. MATÉRIEL ET MÉTHODES ........................................................................................................ 29
3.1. PRODUCTION ET PURIFICATION DE PCOA ET PCOB .......................................................................... 29
3.1.1. Expression dans la souche BL21 d’E. coli ........................................................................ 29
3.1.2. Plasmide vecteur pET24b ............................................................................................... 29
3.1.2.1. Région Multiple Cloning Site (MCS) .................................................................................... 30
3.1.2.2. Opérateur lac ..................................................................................................................... 30
3.1.2.3. His-tag de PcoA et PcoB ..................................................................................................... 30
3.1.2.4. Sélection à la kanamycine .................................................................................................. 30
3.1.3. Formation d’une souche BL21-pET24b-PcoB .................................................................. 30
3.1.3.1. Extraction du plasmide pET24b-PcoB « Miniprep » ........................................................... 31
3.1.3.2. Electroporation à partir des souches BL21 et DH10B-pET24b-PcoB .................................. 31
3.1.3.3. PCR des colonies BL21-pET24b-PcoB.................................................................................. 32
3.1.3.4. Migration des résultats de la PCR sur gel d’agarose .......................................................... 33
3.1.4. Surexpression de BL21-pET24b-PcoA et BL21-pET24b-PcoB .......................................... 33
3.1.4.1. Composition du milieu LB................................................................................................... 33
3.1.4.2. Courbe de croissance : mesure D.O. .................................................................................. 33
3.1.4.3. Cultures LB-Kan à petit volume de BL21-pET24b-PcoA ou BL21-pET24b-PcoB .................. 34
3.1.4.4. Vérification sur gel SDS-PAGE de l’induction de PcoA ou PcoB à l’IPTG à petit volume ..... 34
3.1.4.5. Cultures LB-Kan à grand volume de BL21-pET24b-PcoA ou BL21-pET24b-PcoB ................ 36
3.1.4.6. Vérification sur gel SDS-PAGE de l’induction de PcoA ou PcoB à l’IPTG à grand volume ... 36
3.1.5. Purification de PcoA ou PcoB ......................................................................................... 37
3.1.5.1. Première étape de la purification – Traitement à la guanidine 6 M ................................... 37
3.1.5.2. Deuxième étape de la purification – Chromatographie d’affinité ...................................... 38
3.1.5.3. Vérification de la purification de PcoA ou PcoB sur gel SDS-PAGE ..................................... 39
3.1.6. Dialyse de PcoA ou PcoB ................................................................................................ 39
3.1.7. Concentration de PcoA ou PcoB ..................................................................................... 40
3.2. OPTIMISATION DU PROTOCOLE EXPÉRIMENTAL .............................................................................. 42
3.2.1. Tests tampons phosphate salés après la lyse cellulaire ................................................. 42
3.2.2. Tests des tampons phosphate salés pour la dialyse de PcoA ......................................... 42
3.3. CRISTALLOGRAPHIE DE PCOA OU PCOB ........................................................................................ 43
3.3.1. Principe ........................................................................................................................... 43
3.3.2. Méthode ......................................................................................................................... 44
3.3.2.1. Préparation des plaques pour la cristallogenèse ............................................................... 45
3.3.2.2. Observation des plaques au microscope ............................................................................ 45
3.4. MUTAGENÈSE ......................................................................................................................... 46
3.4.1. Caractéristiques de la souche sauvage de C. crescentus ................................................ 46
3.4.2. Caractéristiques de la souche E. coli Tn5 ........................................................................ 46
3.4.3. Particularité de la souche C. crescentus ΔAB ................................................................. 46
3.4.4. Composition du milieu PYE (HIGG) ................................................................................. 46
3.4.5. Création des mutants de C. crescentus .......................................................................... 47
3.4.6. Isolement de mutants de C. crescentus sensibles au Cu ................................................. 48
3.4.7. Analyse de la croissance cellulaire en présence de Cu ................................................... 48
3.4.7.1. Croissance de la souche CB15N en présence de Cu ........................................................... 48
3.4.7.2. Croissance de mutants sensibles au Cu en présence de Cu ............................................... 49
4. RÉSULTATS ET DISCUSSIONS ................................................................................................... 51
4.1. PRODUCTION, PURIFICATION ET CRISTALLISATION DE PCOB .............................................................. 51
4.1.1. Formation d’une souche BL21-pET24b-PcoB .................................................................. 51
4.1.2. Vérification de la surexpression de BL21-pET24b-PcoB .................................................. 53
4.1.3. Vérification de la purification de PcoB ........................................................................... 54
4.1.4. Dialyse des fractions pures de PcoB ............................................................................... 55
4.1.5. Concentration de PcoB ................................................................................................... 56
4.2. PRODUCTION, PURIFICATION ET CRISTALLISATION DE PCOA .............................................................. 57
4.2.1. Vérification de la surexpression de BL21-pET24b-PcoA ................................................. 57
4.2.2. Vérification de la purification de PcoA ........................................................................... 58
4.2.3. Dialyse des fractions pures de PcoA ............................................................................... 59
4.2.4. Concentration de PcoA ................................................................................................... 59
4.2.4.1. Première culture LB-Kan de BL21-pET24b-PcoA (2X 200 ml) ............................................. 59
4.2.4.2. Deuxième culture LB-Kan de BL21-pET24b-PcoA (4X 250 ml) ............................................ 60
4.2.4.3. Traitement des précipités issus des cultures précédentes ................................................. 60
4.2.4.4. Troisième culture LB-Kan de BL21-pET24b-PcoA (4X 250 ml) ............................................ 60
4.2.4.5. Discussion ........................................................................................................................... 61
4.3. OPTIMISATION DU PROTOCOLE EXPÉRIMENTAL .............................................................................. 62
4.3.1. Tests tampons phosphate salés après la lyse cellulaire ................................................. 62
4.3.2. Tests des tampons phosphate salés pour la dialyse ....................................................... 62
4.3.2.1. Résultats du dosage de la concentration de PcoA ............................................................. 62
4.4. CRISTALLOGRAPHIE DE PCOA ..................................................................................................... 63
4.4.1. Cristal dans la plaque PcoA n°A...................................................................................... 63
4.5. MUTAGENÈSE ......................................................................................................................... 64
4.5.1. Nombre de mutants isolés « sensibles » au Cu .............................................................. 64
4.5.2. Analyse de la croissance de la souche CB15N en présence de concentrations croissantes en Cu....... ...................................................................................................................................... 64
4.5.3. Analyse de la croissance des mutants sensibles au Cu en présence de 100 ou 150 μM de Cu………..Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65824 Etude des mécanismes de résistance de Caulobacter crescentus au cuivre [TFE / Mémoire] / Esma ALPAN, Auteur ; Jean-Yves MATROULE, Directeur de la recherche ; Johan Wouters, Directeur de la recherche . - 2017.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : biologie médicale Université de Namur département de biologie. Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : TABLE DES MATIÈRES
REMERCIEMENTS
PRÉSENTATION DU LIEU DE STAGE
INTRODUCTION ............................................................................................................................... 13
1. CONTEXTE THÉORIQUE ........................................................................................................... 15
1.1. CAULOBACTER CRESCENTUS ....................................................................................................... 15
1.1.1. Généralités ..................................................................................................................... 15
1.1.2. Cycle de vie ..................................................................................................................... 15
1.2. LE CUIVRE, UN ÉLÉMENT ESSENTIEL .............................................................................................. 16
1.2.1. Distribution du Cu ........................................................................................................... 16
1.2.2. Toxicité du Cu à haute concentration ............................................................................. 18
1.2.3. Utilisation antérieure ..................................................................................................... 18
1.3. MÉCANISMES DE RÉSISTANCE FACE AU CU CHEZ LES BACTÉRIES ......................................................... 19
1.3.1. Pénétration ..................................................................................................................... 19
1.3.2. Prise en charge – Résistance .......................................................................................... 19
1.3.2.1. Système « Cue » ................................................................................................................. 20
1.3.2.2. Système « Cus » ................................................................................................................. 21
1.3.2.3. Système « Pco » ................................................................................................................. 22
1.3.2.4. Système « Cut » .................................................................................................................. 24
1.3.3. Séquestration du Cu ....................................................................................................... 24
1.3.4. Limitation de l’utilisation du Cu...................................................................................... 24
1.4. PATHOLOGIES LIÉES AU CU CHEZ L’HOMME ................................................................................... 25
1.5. RÉPONSE DE C. CRESCENTUS AU CU ............................................................................................. 25
2. OBJECTIFS ET STRATÉGIES ...................................................................................................... 27
3. MATÉRIEL ET MÉTHODES ........................................................................................................ 29
3.1. PRODUCTION ET PURIFICATION DE PCOA ET PCOB .......................................................................... 29
3.1.1. Expression dans la souche BL21 d’E. coli ........................................................................ 29
3.1.2. Plasmide vecteur pET24b ............................................................................................... 29
3.1.2.1. Région Multiple Cloning Site (MCS) .................................................................................... 30
3.1.2.2. Opérateur lac ..................................................................................................................... 30
3.1.2.3. His-tag de PcoA et PcoB ..................................................................................................... 30
3.1.2.4. Sélection à la kanamycine .................................................................................................. 30
3.1.3. Formation d’une souche BL21-pET24b-PcoB .................................................................. 30
3.1.3.1. Extraction du plasmide pET24b-PcoB « Miniprep » ........................................................... 31
3.1.3.2. Electroporation à partir des souches BL21 et DH10B-pET24b-PcoB .................................. 31
3.1.3.3. PCR des colonies BL21-pET24b-PcoB.................................................................................. 32
3.1.3.4. Migration des résultats de la PCR sur gel d’agarose .......................................................... 33
3.1.4. Surexpression de BL21-pET24b-PcoA et BL21-pET24b-PcoB .......................................... 33
3.1.4.1. Composition du milieu LB................................................................................................... 33
3.1.4.2. Courbe de croissance : mesure D.O. .................................................................................. 33
3.1.4.3. Cultures LB-Kan à petit volume de BL21-pET24b-PcoA ou BL21-pET24b-PcoB .................. 34
3.1.4.4. Vérification sur gel SDS-PAGE de l’induction de PcoA ou PcoB à l’IPTG à petit volume ..... 34
3.1.4.5. Cultures LB-Kan à grand volume de BL21-pET24b-PcoA ou BL21-pET24b-PcoB ................ 36
3.1.4.6. Vérification sur gel SDS-PAGE de l’induction de PcoA ou PcoB à l’IPTG à grand volume ... 36
3.1.5. Purification de PcoA ou PcoB ......................................................................................... 37
3.1.5.1. Première étape de la purification – Traitement à la guanidine 6 M ................................... 37
3.1.5.2. Deuxième étape de la purification – Chromatographie d’affinité ...................................... 38
3.1.5.3. Vérification de la purification de PcoA ou PcoB sur gel SDS-PAGE ..................................... 39
3.1.6. Dialyse de PcoA ou PcoB ................................................................................................ 39
3.1.7. Concentration de PcoA ou PcoB ..................................................................................... 40
3.2. OPTIMISATION DU PROTOCOLE EXPÉRIMENTAL .............................................................................. 42
3.2.1. Tests tampons phosphate salés après la lyse cellulaire ................................................. 42
3.2.2. Tests des tampons phosphate salés pour la dialyse de PcoA ......................................... 42
3.3. CRISTALLOGRAPHIE DE PCOA OU PCOB ........................................................................................ 43
3.3.1. Principe ........................................................................................................................... 43
3.3.2. Méthode ......................................................................................................................... 44
3.3.2.1. Préparation des plaques pour la cristallogenèse ............................................................... 45
3.3.2.2. Observation des plaques au microscope ............................................................................ 45
3.4. MUTAGENÈSE ......................................................................................................................... 46
3.4.1. Caractéristiques de la souche sauvage de C. crescentus ................................................ 46
3.4.2. Caractéristiques de la souche E. coli Tn5 ........................................................................ 46
3.4.3. Particularité de la souche C. crescentus ΔAB ................................................................. 46
3.4.4. Composition du milieu PYE (HIGG) ................................................................................. 46
3.4.5. Création des mutants de C. crescentus .......................................................................... 47
3.4.6. Isolement de mutants de C. crescentus sensibles au Cu ................................................. 48
3.4.7. Analyse de la croissance cellulaire en présence de Cu ................................................... 48
3.4.7.1. Croissance de la souche CB15N en présence de Cu ........................................................... 48
3.4.7.2. Croissance de mutants sensibles au Cu en présence de Cu ............................................... 49
4. RÉSULTATS ET DISCUSSIONS ................................................................................................... 51
4.1. PRODUCTION, PURIFICATION ET CRISTALLISATION DE PCOB .............................................................. 51
4.1.1. Formation d’une souche BL21-pET24b-PcoB .................................................................. 51
4.1.2. Vérification de la surexpression de BL21-pET24b-PcoB .................................................. 53
4.1.3. Vérification de la purification de PcoB ........................................................................... 54
4.1.4. Dialyse des fractions pures de PcoB ............................................................................... 55
4.1.5. Concentration de PcoB ................................................................................................... 56
4.2. PRODUCTION, PURIFICATION ET CRISTALLISATION DE PCOA .............................................................. 57
4.2.1. Vérification de la surexpression de BL21-pET24b-PcoA ................................................. 57
4.2.2. Vérification de la purification de PcoA ........................................................................... 58
4.2.3. Dialyse des fractions pures de PcoA ............................................................................... 59
4.2.4. Concentration de PcoA ................................................................................................... 59
4.2.4.1. Première culture LB-Kan de BL21-pET24b-PcoA (2X 200 ml) ............................................. 59
4.2.4.2. Deuxième culture LB-Kan de BL21-pET24b-PcoA (4X 250 ml) ............................................ 60
4.2.4.3. Traitement des précipités issus des cultures précédentes ................................................. 60
4.2.4.4. Troisième culture LB-Kan de BL21-pET24b-PcoA (4X 250 ml) ............................................ 60
4.2.4.5. Discussion ........................................................................................................................... 61
4.3. OPTIMISATION DU PROTOCOLE EXPÉRIMENTAL .............................................................................. 62
4.3.1. Tests tampons phosphate salés après la lyse cellulaire ................................................. 62
4.3.2. Tests des tampons phosphate salés pour la dialyse ....................................................... 62
4.3.2.1. Résultats du dosage de la concentration de PcoA ............................................................. 62
4.4. CRISTALLOGRAPHIE DE PCOA ..................................................................................................... 63
4.4.1. Cristal dans la plaque PcoA n°A...................................................................................... 63
4.5. MUTAGENÈSE ......................................................................................................................... 64
4.5.1. Nombre de mutants isolés « sensibles » au Cu .............................................................. 64
4.5.2. Analyse de la croissance de la souche CB15N en présence de concentrations croissantes en Cu....... ...................................................................................................................................... 64
4.5.3. Analyse de la croissance des mutants sensibles au Cu en présence de 100 ou 150 μM de Cu………..Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65824 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Etude du métabolismeoxydatif du neutrophile par la cytométrie en flux / COQUETTE Marie
Titre : Etude du métabolismeoxydatif du neutrophile par la cytométrie en flux Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : COQUETTE Marie, Année de publication : 2009 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Mots-clés : NEUTROPHILE METABOLISME OXYDATIF CYTOMETRIE EN FLUX SEPTICEMIE GRANULOMATOSE SEPTIQUE CHRONIQUE TEST NBT CD64 Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64549 Etude du métabolismeoxydatif du neutrophile par la cytométrie en flux [TFE / Mémoire] / COQUETTE Marie, . - 2009.
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Mots-clés : NEUTROPHILE METABOLISME OXYDATIF CYTOMETRIE EN FLUX SEPTICEMIE GRANULOMATOSE SEPTIQUE CHRONIQUE TEST NBT CD64 Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64549 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Etude du mode d’action de l’harmine et de ses dérivés en tant qu’agents intercalants de l’ADN / Nicolas JUSTE
Titre : Etude du mode d’action de l’harmine et de ses dérivés en tant qu’agents intercalants de l’ADN Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Nicolas JUSTE, Auteur Année de publication : 2014 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : BIOLOGIE MÉDICALE UNIVERSITE DE NAMUR HARMINE DERIVES AGENTS INTERCALANTS ADN SOLUBILITE ABSORBANCE FILTRATION CONCENTRATION MAXIMALE SOLUBLE PURETE TM Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65394 Etude du mode d’action de l’harmine et de ses dérivés en tant qu’agents intercalants de l’ADN [TFE / Mémoire] / Nicolas JUSTE, Auteur . - 2014.
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Langues : Français (fre)
Mots-clés : BIOLOGIE MÉDICALE UNIVERSITE DE NAMUR HARMINE DERIVES AGENTS INTERCALANTS ADN SOLUBILITE ABSORBANCE FILTRATION CONCENTRATION MAXIMALE SOLUBLE PURETE TM Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65394 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Etude des modes de conservations de frottis sanguins pour la biobanque / Morgane EMMERECHTS
Titre : Etude des modes de conservations de frottis sanguins pour la biobanque Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Morgane EMMERECHTS, Auteur Année de publication : 2016 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : erythrocytes CHU UCL Namur Mont Godinne leucocytes granulocytes lymphocytes monocytes thrombocytes immunophénotypage sang anticorps cytométrie en flux Mau-Grünwald Giemsa myéloperoxydase double estérase congélation coloration coenzymatique immunomarquage Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Présentation du lieu du stage .................................................................................................. 13
Introduction .............................................................................................................................. 15
Partie théorique ....................................................................................................................... 17
1. Les acides nucléiques ....................................................................................................... 17
2. Le gène ............................................................................................................................. 18
3. Du proto-oncogène à l’oncogène ..................................................................................... 20
4. Les mutations ................................................................................................................... 20
5. Le gène Jak2 ..................................................................................................................... 23
6. Syndrome myéloprolifératif ............................................................................................. 23
7. Les cyclines ....................................................................................................................... 25
8. Myélome multiple ............................................................................................................ 26
9. Droplet Digital PCR ........................................................................................................... 27
9. a. Point de départ en pré-PCR : .................................................................................... 28
9. b. Étape 1 : création des gouttelettes grâce au générateur de gouttelettes : ............. 29
9. c. Étape 2 : amplification par PCR : .............................................................................. 30
9. d. Étape 3 : lecture des gouttelettes grâce au lecteur automatique : ......................... 32
9. e. Étape 4 : analyse des résultats par le logiciel QuantaSoft : ..................................... 33
Objectifs et stratégie ................................................................................................................ 37
Partie pratique.......................................................................................................................... 37
1. Dossier de validation ........................................................................................................ 37
2. Dossier de validation pour la recherche de la mutation V617F sur le gène Jak2 par ddPCR ................................................................................................................................... 38
2. a. Manipulation pour les différents paramètres .......................................................... 38
Matériel et méthode .................................................................................................... 38
Mode opératoire ......................................................................................................... 38
10
2. b. Détermination du seuil en ddPCR pour la mutation V617F du gène Jak2 ............... 41
Mise en pratique : Analyse d’une série d’échantillons négatifs et un positif .............. 41
2. c. Répétabilité ............................................................................................................... 43
Mise en pratique : échantillon répété .......................................................................... 43
2. d. Reproductibilité ........................................................................................................ 44
Mise en pratique 1 : jours différents ............................................................................ 44
Mise en pratique 2 : générateur de gouttelettes différents ........................................ 45
2. e. Robustesse ................................................................................................................ 46
Mise en pratique 1 : volumes différents ...................................................................... 46
Mise en pratique 2 : concentrations en ADN différentes ............................................ 48
Mise en pratique 3 : différents volumes avant émulsions ........................................... 49
Mise en pratique 4 : volumes après émulsions différents ........................................... 51
2. f. Sensibilité .................................................................................................................. 52
Mise en pratique : pourcentages différents ................................................................ 52
2. g. Limite de détection ................................................................................................... 53
Mise en pratique : à 0.5% ............................................................................................. 53
2. h. Linéarité .................................................................................................................... 54
Mise en pratique : proportionnalité de concentrations .............................................. 54
2. i. Comparaison de deux méthodes d’analyse : le pyroséquençage et la ddPCR ......... 56
Mode opératoire ......................................................................................................... 57
Mise en pratique 1 : JAK2 de 9.6 à 0.9% ...................................................................... 59
Mise en pratique 2 : vrais ou faux positifs ? ................................................................ 61
3. Dossier de validation pour la recherche de la surexpression en cycline D1 par ddPCR .. 63
3. a. Manipulation pour les différents paramètres .......................................................... 63
Matériel et méthode .................................................................................................... 63
Mode opératoire .......................................................................................................... 63
11
3. b. Linéarité .................................................................................................................... 64
Mise en pratique : dilutions de plasmides en CD1, CD3 et CD1/CD3 .......................... 64
3. c. Spécificité .................................................................................................................. 65
Mise en pratique : dilutions des plasmides en CD1 et CD3 avec des sondes non spécifiques .................................................................................................................... 65
3. d. Établissement d’un seuil de sensibilité .................................................................... 66
Mise en pratique : échantillons négatifs ...................................................................... 66
3. e. Série d’échantillons négatifs et positifs .................................................................... 70
Mise en pratique : comparaison qPCR avec ddPCR ..................................................... 70
3. f. Répétabilité ............................................................................................................... 71
Mise en pratique : positif fort, positif faible, négatif fort et négatif faible ................. 71
3. g. Reproductibilité ........................................................................................................ 72
Mise en pratique : K562 ............................................................................................... 72
Conclusion ................................................................................................................................ 73
Bibliographie ............................................................................................................................ 75
Annexes .................................................................................................................................... 77Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65672 Etude des modes de conservations de frottis sanguins pour la biobanque [TFE / Mémoire] / Morgane EMMERECHTS, Auteur . - 2016.
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Langues : Français (fre)
Mots-clés : erythrocytes CHU UCL Namur Mont Godinne leucocytes granulocytes lymphocytes monocytes thrombocytes immunophénotypage sang anticorps cytométrie en flux Mau-Grünwald Giemsa myéloperoxydase double estérase congélation coloration coenzymatique immunomarquage Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Présentation du lieu du stage .................................................................................................. 13
Introduction .............................................................................................................................. 15
Partie théorique ....................................................................................................................... 17
1. Les acides nucléiques ....................................................................................................... 17
2. Le gène ............................................................................................................................. 18
3. Du proto-oncogène à l’oncogène ..................................................................................... 20
4. Les mutations ................................................................................................................... 20
5. Le gène Jak2 ..................................................................................................................... 23
6. Syndrome myéloprolifératif ............................................................................................. 23
7. Les cyclines ....................................................................................................................... 25
8. Myélome multiple ............................................................................................................ 26
9. Droplet Digital PCR ........................................................................................................... 27
9. a. Point de départ en pré-PCR : .................................................................................... 28
9. b. Étape 1 : création des gouttelettes grâce au générateur de gouttelettes : ............. 29
9. c. Étape 2 : amplification par PCR : .............................................................................. 30
9. d. Étape 3 : lecture des gouttelettes grâce au lecteur automatique : ......................... 32
9. e. Étape 4 : analyse des résultats par le logiciel QuantaSoft : ..................................... 33
Objectifs et stratégie ................................................................................................................ 37
Partie pratique.......................................................................................................................... 37
1. Dossier de validation ........................................................................................................ 37
2. Dossier de validation pour la recherche de la mutation V617F sur le gène Jak2 par ddPCR ................................................................................................................................... 38
2. a. Manipulation pour les différents paramètres .......................................................... 38
Matériel et méthode .................................................................................................... 38
Mode opératoire ......................................................................................................... 38
10
2. b. Détermination du seuil en ddPCR pour la mutation V617F du gène Jak2 ............... 41
Mise en pratique : Analyse d’une série d’échantillons négatifs et un positif .............. 41
2. c. Répétabilité ............................................................................................................... 43
Mise en pratique : échantillon répété .......................................................................... 43
2. d. Reproductibilité ........................................................................................................ 44
Mise en pratique 1 : jours différents ............................................................................ 44
Mise en pratique 2 : générateur de gouttelettes différents ........................................ 45
2. e. Robustesse ................................................................................................................ 46
Mise en pratique 1 : volumes différents ...................................................................... 46
Mise en pratique 2 : concentrations en ADN différentes ............................................ 48
Mise en pratique 3 : différents volumes avant émulsions ........................................... 49
Mise en pratique 4 : volumes après émulsions différents ........................................... 51
2. f. Sensibilité .................................................................................................................. 52
Mise en pratique : pourcentages différents ................................................................ 52
2. g. Limite de détection ................................................................................................... 53
Mise en pratique : à 0.5% ............................................................................................. 53
2. h. Linéarité .................................................................................................................... 54
Mise en pratique : proportionnalité de concentrations .............................................. 54
2. i. Comparaison de deux méthodes d’analyse : le pyroséquençage et la ddPCR ......... 56
Mode opératoire ......................................................................................................... 57
Mise en pratique 1 : JAK2 de 9.6 à 0.9% ...................................................................... 59
Mise en pratique 2 : vrais ou faux positifs ? ................................................................ 61
3. Dossier de validation pour la recherche de la surexpression en cycline D1 par ddPCR .. 63
3. a. Manipulation pour les différents paramètres .......................................................... 63
Matériel et méthode .................................................................................................... 63
Mode opératoire .......................................................................................................... 63
11
3. b. Linéarité .................................................................................................................... 64
Mise en pratique : dilutions de plasmides en CD1, CD3 et CD1/CD3 .......................... 64
3. c. Spécificité .................................................................................................................. 65
Mise en pratique : dilutions des plasmides en CD1 et CD3 avec des sondes non spécifiques .................................................................................................................... 65
3. d. Établissement d’un seuil de sensibilité .................................................................... 66
Mise en pratique : échantillons négatifs ...................................................................... 66
3. e. Série d’échantillons négatifs et positifs .................................................................... 70
Mise en pratique : comparaison qPCR avec ddPCR ..................................................... 70
3. f. Répétabilité ............................................................................................................... 71
Mise en pratique : positif fort, positif faible, négatif fort et négatif faible ................. 71
3. g. Reproductibilité ........................................................................................................ 72
Mise en pratique : K562 ............................................................................................... 72
Conclusion ................................................................................................................................ 73
Bibliographie ............................................................................................................................ 75
Annexes .................................................................................................................................... 77Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65672 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Etude par hybridation in situ de l’expression du microARN miR-210 dans les cancers du sein triple négatifs / SARA SOLLENNITA
PermalinkEtude du paramètre IPF (fraction plaquettaire immature) sur XN : validation et intérêt clinique dans le diagnostic différentiel des thrombopénies / Sophie TUMSON
PermalinkEtude de la phase pré-analytique des hémocultures / BOUKO Amélie
PermalinkÉtude de la phosphosérine phosphatase de Mycobacterium marinum : Production, purification et détermination de paramètres enzymatiques. / Adrien Lesne
PermalinkEtude de la physiologie des bactéries en conditions spatiales. / WALBRECQ Sébastien
PermalinkEtude préanalytique sur le dosage du zinc et du cuivre par spectrométrie d’absorption atomique / Lucia Lo cicero
PermalinkEtude de la production de GMPc par les cellules endothéliales / CASTROGIOVANNI Cédric
PermalinkEtude de la production de mélanges gazeux corrosifs instables. Vérification de la stabilité par FTIR / CEDRIC ZOUBAN
PermalinkEtude de la protéine ESAG 5 / DURBECQ Maxime
PermalinkEtude protéomique du secrétome des fibroblastes en sénescence réplicative ou induite par les UVB / FLORE LAURENT
PermalinkEtude de la réaction enzyme-inhibiteur au moyen de techniques HPLC ou FIA / Florimont FAMEREE
PermalinkEtude de la réduction potentielle par une cyanobactérie (Arthrospira sp.) des dommages aux cellules endothéliales humaines soumises à des conditions spatiales simulées / CHASPIERRE Guillaume
PermalinkEtude de la régulation transcriptionnelle du BLV : mise au point de nouveaux outils / Dimitri CEGLAR
PermalinkEtude de la régulation transcriptionnelle des gènes Abc transporteurs en réponse à l’invalidation du gène Abcb5 chez les souris / Franck KONCHECHOU
PermalinkEtude de la relation entre stress oxydatif et tabagisme. Evolution chez les fumeurs en cours de sevrage / GUILLAUME HOUSIAUX
PermalinkEtude de la résistance à la Bléomycine induite par la protéine TMEM45A dans les cellules cancéreuses HepG2 / SOPHIE CRÈVECOEUR
PermalinkEtude du rôle de l’ectonucléotidase CD73 dans un modèle inflammatoire intestinal / CHRISTOPHE VANHAVER
PermalinkEtude du rôle du facteur de transcription Dmrt4 dans le développement du cortex cérébral chez la souris / ÉMILIE POSSONI
PermalinkEtude du rôle potentiel de la prolyl-hydroxylase 2 dans l’indiction des lymphocytes T régulateurs / Charlotte FELTEN
PermalinkEtude du rôle de la protéine PicC de Brucella abortus. / SABRINA DELMOITIE
PermalinkEtude du rôle du transporteur monocarboxylate MCT1 dans la prolifération et la fonction du lymphocyte T / Inès Zoraï
PermalinkEtude du second messager di-GMP cyclique dans la croissance de Bruxella abortus / Antoine Gerodez
PermalinkÉtude de la spécificité de la Transportine chez Drosophila melanogaster / SÉBASTIEN ROSAR
PermalinkEtude de stabilité d’une combinaison fixe en pravastine et fénofibrate / Maxime DEPREE
PermalinkEtude de la stabilité de l'ésoméprazole en perfusion après congélation et décongélation par micro-ondes / MONMART Elise
PermalinkEtude de stabilité d’un mélange de morphine, kétamine et lorazépam utilisé en soins palliatifs / Laura Defrene
PermalinkEtude structurale et fonctionnelle de la 1-déoxy-D-xykulose-5-phosphate réductoisomérase – Like de Brucella abortus, une enzyme impliquée dans la biosynthèse des isoprénoïdes / TATIANA SULIMOWSKI
PermalinkEtude structurale et fonctionnelle de l'arginase type I humaine, une nouvelle cible potentielle pour le traitement du cancer / Gregory DEPRET
PermalinkEtude structurale de la PHGDH humaine : production, purification et cristallogenèse de la protéine ; mutagenèse dirigée au sein du site actif / Sophie Rousseau
PermalinkEtude structurelle et fonctionnelle de micro- et nanoparticules / ALPAN Lütfiye
PermalinkEtude du succès reproducteur des cerfs mâles sur le conseil cytogénétique du Bois Saint Jean / Arnaud ICKX
PermalinkÉtude de la synergie entre l'association ceftazidime/avibactam et l'aztréonam sur des bacilles Gram négatif producteurs de métallo-bêta-lactamases / Merve Okur
PermalinkÉtude des systèmes de réponse aux stress d’enveloppe chez Brucella abortus / Marine Van Der Gucht
PermalinkEtude des test phénotypiques pour la détection de la résistance plasmidique à la colistine / Margot Cardinal
PermalinkEtude Transcriptomique de l’effet d’une exposition aux rayonnements ionisants sur le système cardiovasculaire (cœur et aorte) / DELPHINE DELHOTTE
PermalinkÉTUDE DE LA VITESSE DE SÉDIMENTATION : COMPARAISON DES TECHNIQUES DE WESTERGREN, DU MONITOR V20® ET DU VES-MATIC CUBE 30®. RELATION DE LA VITESSE DE SÉDIMENTATION AVEC D’AUTRES MARQUEURS BIOLOGIQUES. / Cédric LORENT
PermalinkEtudes des conditions spatiales sur le développement embryonnaire de la souris / HAUTEFELT Julien
PermalinkEtudes structurale et enzymatique de l’indoléamine 2, 3- dioxygénase / DAVID CALOMNE
PermalinkEvaluation de 2 milieux de dépistage des germes producteurs de beta-lactamases à spectre élargi (BLSE) / SABATO Adrien
PermalinkEvaluation de l’activité anti-leucémique du Composé X et développement d’un test de clonogénicité / DENIS ZICOT
PermalinkÉvaluation de l’Alinity i au sein de l’ETS « La Transfusion du Sang » de Charleroi / Nilay Yesilbas
PermalinkEvaluation de la carte ANC sur le VITEK-2 pour l'identificaztion des germes anaérobies / TROUILLET John
PermalinkEvaluation et comparaison de méthodes de détermination des concentrations minimales inhibitrices des antibiotiques chez les bacilles Gram-négatifs / Martin HOEBEKE
PermalinkEvaluation comparative de 6 kits commerciaux pour la détection de l’hémoglobine dans les selles / Marie Lavaert
PermalinkEvaluation comparative de l’antibiogramme rapide de l’EUCAST (RAST) avec les méthodes standards / Vanessa Siani Yanken
PermalinkEvaluation comparative du dosage de l’hémoglobine A1c par HPLC échangeuses de cations et par électrophorèse capillaire / Eve PONTHIERE
PermalinkEvaluation de différentes méthodes diagnostiques pour le dépistage de la sphérocytose héréditaire au laboratoire / SMIRNOFF Alexandre
PermalinkEvaluation de différentes techniques cytogénétiques dans le cadre de l’analyse des leucémies lymphoïdes chroniques / ZEYNEP ORCUN
PermalinkEvaluation du dosage des d-dimères dans le diagnostic de l'embolie pulmonaire et de la thrombose veineuse profonde. / KISS Laurent
PermalinkEvaluation de l’effet matrice de 2 kits sixplex commerciaux pour le dosage de cytokines dans le plasma humain / Christos Bekris
PermalinkEvaluation de l’effet matrice des calibrateurs DOACs commercialisés / HÉLÈNE LEGRAND
PermalinkEvaluation des effets pharmacologiques et toxiques d'un extrait méthanolique de Sattaga bowal. / KAHVECIOGLU Zehra Cagla
PermalinkEvaluation de la fiabilité des paramètres d’hémoglobine et d’hématocrite par comparaison de méthodes sur un panel d’automates de biologie délocalisée / Donatien Plancq
PermalinkEvaluation de l'HemaCAM dans l'analyse des rejets de formules automatisées / Valentin Dewez
PermalinkEvaluation de l’hemosil® readiplastin pour la détermination du fibrinogène par la méthode dérivée et du temps de quick / Sorelle MOUTCHEU KAPAWA
PermalinkEvaluation de l’impact de l’edoxaban sur une large gamme de test d’hémostase : Recommandations de bonnes pratiques de laboratoire / TANIA DEL BIANCO
PermalinkEvaluation de l'implication de l'acide urique dans les maladies auto-immunes / LAMBERT Axel
PermalinkEvaluation du kit "Osom® Trichomonas Rapid Test" pour la recherche de l'antigène du Trichomonas vaginalis sur les frottis génitaux. / Nicolas PLATTEAU
PermalinkEvaluation du kit Sepsityper TM Maldi pour l'identification rapide des microorganismes à partir de flacons d'hémocultures positives / RASE Christelle
PermalinkEvaluation du kit XpertR HCV Viral Load / Hanane TLATI
PermalinkEvaluation métabonomique du rôle de l'acide urique en tant que signal de danger dans le développement des maladies autoimmunes / JENICOT Jérôme
PermalinkEVALUATION D'UNE METHODE D'ANTIBIOGRAMME RAPIDE A PARTIR DES FLACONS D'HEMOCULTURE POSITIVE SELON LES RECOMMANDATIONS DE L'EUCAST / Blandine Ngongang Nana
PermalinkEvaluation d'un nouvel algorithme pour le diagnostic rapide de diarrhées associées à Clostridium difficile. / D'HOLLANDERS Sophie
PermalinkÉvaluation de la nouvelle méthode d’antibiogramme rapide directe sur flacon d’hémoculture selon EUCAST / Carolane Van Caneghem
PermalinkEvaluation de nouvelles approches pour le diagnostic de laboratoire des infections à Clostridium difficile / DILMI Sarra
PermalinkEvaluation of lipid profile analysis method with the use of MALDI-TOF MS coupled with thin layer chromatography / Boris PIRLOT
PermalinkEvaluation des paramètres biologiques du stress oxydatif et du statut inflammatoire dans des populations spécifiques / Gilles DRUGMAND
PermalinkEvaluation des paramètres influençant le dosage de l'homocystéine / Vitalien Iradukunda Gakwaya
PermalinkEvaluation de la performance de deux automates d'immuno-hématologie au sein d'un laboratoire d'analyses biologiques du Service du sang de la Croix-Rouge en vue du remplacement de l'automate Galiléo / Céline Daco
PermalinkEvaluation des performances analytiques de deux PCRs real-time détectant la présence de Campylobacter spp directement sur prélèvement de selles / SALIMA AZAIZAOUI
PermalinkEvaluation des performances du MALDI-TOF MS pour le typage de souches bactériennes dans un contexte d’épidémie hospitalière / Karim PEETERS
PermalinkEvaluation des performances du MBT STAR-Carba IVD kit pour la détection de l'activité des carbapénèmases chez les entérobactéries et les non-fermentants / Corentin Bombecke
PermalinkEvaluation des performances d'une nouvelle thromboplastine, la STA-NeoPTimal®, pour la détermination du Temps de Quick et validation d'un nouvel automate, le STA Compact Max 3® / Kenny Moulin
PermalinkEvaluation du potentiel trypanolytique de différents mutants d'apolipoprotéine L1. / SCORNEAU Gauthier
PermalinkEvaluation pré-clinique in vitro de candidats médicaments en vue d’un traitement du gliome infiltrant du tronc cérébral et mise à l’essai de nouveaux tests de quantification de l’apoptose et de la nécrose in vitro. / Mélanie Debroux
PermalinkEvaluation pré-clinique in vitro du potentiel anti-leucémique de deux nouvelles molécules inhibitrices de bromodomaines / Louise Janssens
PermalinkEvaluation pré-clinique in- vitro d’un potentiel candidat thérapeutique anti- leucémique / Elyse Fievet
PermalinkEvaluation préclinique in vitro d’un nouveau composé (VAL201) comme candidat médicament dans le traitement du cancer de la prostate / PINAR GUMUS
PermalinkEvaluation préclinique de nouveaux inhibiteurs épigénétiques d’interaction protéine-protéine dans la leucémie aiguë lymphoïde / Aline HEREMANS
PermalinkÉvaluation d’un rôle cytoplasmique des protéines DUX4 et DUX4c, impliquées dans la dystrophie musculaire FSHD, par l’étude de partenaires protéiques et ARN / Maëlle Sciot
PermalinkEvaluation de la structure et de la fonction rénales dans des modèles murins de néphropathies expérimentales / Belinda VAIRA
PermalinkEvaluation du système multiplate dans diverses situations cliniques / AKOUCHE Lila
PermalinkL’évaluation d’un système de score pour le diagnostic des néoplasies myélodysplasiques en cytométrie en flux / Louise Staquet
PermalinkEvaluation d’une technique d’hybridation in situ permettant la détection des ARNm de BRCA1 dans les cancers du sein « triple négatifs » / MINETTE TCHANA Y.
PermalinkEvaluation d’un test immunochromatographique pour la détection de cinq carbapénèmases chez les Bacilles Gram Négatif / Maryse Doumont
PermalinkEvaluation et validation de méthodes bioanalytiques basées sur la technique d'échantillonage Dried Blood Spot en comparaison avec les techniques classiques de prélèvement plasmatique / HUSSIN Christophe
PermalinkExploitation des mécanismes moléculaires de résistance au cuivre chez Caulobacter crescentus / Alexandre Babarakos
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PermalinkL’expression de gènes comme biomarqueur des effets des radiations dans les cellules immunitaires humaines / JULIE BROOS
PermalinkExpression de LAMP 2 dans le kératinocyte humain : détermination de l’influence de la vitamine D3 / Geoffroy VAN DESSEL
PermalinkExpression des protéines E2 et C recombinantes du virus BVDV dans un système de cellules de mammifères in vitro / Yohan Kellner
PermalinkExpression, purification et cristalisation de l'enzyme SerB2 de Mycobacterium tuberculosis en vue d'études structurales / Adeline Courtoy
PermalinkExpression, purification et repliement du variant D67H du lysosyme humain impliqué dans les maladies amyloïdes / ORESTI Mélissa
PermalinkExtraction, isolation et caractérisation par microscopie électronique des pigments dans les cheveux. Etude des profils pigmentaires individuels en vue d’une application criminalistique / MATHIEU DARAN
PermalinkExtraction, purification et caractérisation de l'alliinase d'Allium sativum L. / Julien PONCHAUX
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