Centre de Documentation Campus Montignies
Horaires :
Lundi : 8h-18h30
Mardi : 8h-18h30
Mercredi 9h-16h30
Jeudi : 8h-18h30
Vendredi : 8h-16h30
Votre centre de documentation fermera de 12h à 12h30 et à 14h30 ce vendredi 19/04.
Lundi : 8h-18h30
Mardi : 8h-18h30
Mercredi 9h-16h30
Jeudi : 8h-18h30
Vendredi : 8h-16h30
Votre centre de documentation fermera de 12h à 12h30 et à 14h30 ce vendredi 19/04.
Bienvenue sur le catalogue du centre de documentation du campus de Montignies.
Résultat de la recherche
4 résultat(s) recherche sur le mot-clé 'CHU'
Ajouter le résultat dans votre panier Affiner la recherche Générer le flux rss de la recherche
Partager le résultat de cette recherche Faire une suggestion
La création d’un CHU espérée en Seine-et-Marne / Jean-Marie Manus in RFL : Revue Francophone des Laboratoires, 547 (décembre 2022)
[article]
Titre : La création d’un CHU espérée en Seine-et-Marne Type de document : texte imprimé Auteurs : Jean-Marie Manus Année de publication : 2022 Article en page(s) : p. 15 Langues : Français (fre) Mots-clés : CHU Seine-et-Marne Assemblée nationale désert médical France Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=107936
in RFL : Revue Francophone des Laboratoires > 547 (décembre 2022) . - p. 15[article] La création d’un CHU espérée en Seine-et-Marne [texte imprimé] / Jean-Marie Manus . - 2022 . - p. 15.
Langues : Français (fre)
in RFL : Revue Francophone des Laboratoires > 547 (décembre 2022) . - p. 15
Mots-clés : CHU Seine-et-Marne Assemblée nationale désert médical France Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=107936 Réservation
Réserver ce document
Exemplaires (1)
Cote Support Localisation Section Disponibilité Revue Revue Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Armoires à volets Disponible
DisponibleHarmonisation du système de management de la qualité au sein d’un laboratoire de biologie médicale hospitalo-universitaire / Matthieu Arvier in RFL : Revue Francophone des Laboratoires, 506 (novembre 2018)
[article]
Titre : Harmonisation du système de management de la qualité au sein d’un laboratoire de biologie médicale hospitalo-universitaire Type de document : texte imprimé Auteurs : Matthieu Arvier ; Alain Chevailler Année de publication : 2018 Article en page(s) : p. 22-25 Langues : Français (fre) Mots-clés : accréditation CHU harmonisation laboratoire de biologie médicale management système de management de la qualité Résumé : Résumé
Dans le cadre de l’accréditation des laboratoires de biologie médicale, les laboratoires de CHU présentent un profl particulier. La multiplicité des spécialités biologiques et l’expertise des équipes du laboratoire sont parfois en décalage avec la rigidité perçue de la démarche d’accréditation. Il n’est pas toujours évident d’imaginer qu’un examen réalisé des centaines de fois par jour sur un automate de chimie soit soumis aux mêmes exigences et s’accrédite de la même façon qu’une analyse manuelle spécialisée réalisée une dizaine de fois par semaine. Cet article présente comment avec la mise en place d’outils simples et une diffusion de ces outils assurée par les personnels du laboratoire, il est possible d’obtenir l’accréditation selon la norme NF EN ISO 15189 pour l’ensemble des services d’un laboratoire de biologie médicale de CHU.Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=77271
in RFL : Revue Francophone des Laboratoires > 506 (novembre 2018) . - p. 22-25[article] Harmonisation du système de management de la qualité au sein d’un laboratoire de biologie médicale hospitalo-universitaire [texte imprimé] / Matthieu Arvier ; Alain Chevailler . - 2018 . - p. 22-25.
Langues : Français (fre)
in RFL : Revue Francophone des Laboratoires > 506 (novembre 2018) . - p. 22-25
Mots-clés : accréditation CHU harmonisation laboratoire de biologie médicale management système de management de la qualité Résumé : Résumé
Dans le cadre de l’accréditation des laboratoires de biologie médicale, les laboratoires de CHU présentent un profl particulier. La multiplicité des spécialités biologiques et l’expertise des équipes du laboratoire sont parfois en décalage avec la rigidité perçue de la démarche d’accréditation. Il n’est pas toujours évident d’imaginer qu’un examen réalisé des centaines de fois par jour sur un automate de chimie soit soumis aux mêmes exigences et s’accrédite de la même façon qu’une analyse manuelle spécialisée réalisée une dizaine de fois par semaine. Cet article présente comment avec la mise en place d’outils simples et une diffusion de ces outils assurée par les personnels du laboratoire, il est possible d’obtenir l’accréditation selon la norme NF EN ISO 15189 pour l’ensemble des services d’un laboratoire de biologie médicale de CHU.Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=77271 Réservation
Réserver ce document
Exemplaires (1)
Cote Support Localisation Section Disponibilité Revue Revue Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Armoires à volets Disponible
DisponibleEtude des modes de conservations de frottis sanguins pour la biobanque / Morgane EMMERECHTS
Titre : Etude des modes de conservations de frottis sanguins pour la biobanque Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Morgane EMMERECHTS, Auteur Année de publication : 2016 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : erythrocytes CHU UCL Namur Mont Godinne leucocytes granulocytes lymphocytes monocytes thrombocytes immunophénotypage sang anticorps cytométrie en flux Mau-Grünwald Giemsa myéloperoxydase double estérase congélation coloration coenzymatique immunomarquage Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Présentation du lieu du stage .................................................................................................. 13
Introduction .............................................................................................................................. 15
Partie théorique ....................................................................................................................... 17
1. Les acides nucléiques ....................................................................................................... 17
2. Le gène ............................................................................................................................. 18
3. Du proto-oncogène à l’oncogène ..................................................................................... 20
4. Les mutations ................................................................................................................... 20
5. Le gène Jak2 ..................................................................................................................... 23
6. Syndrome myéloprolifératif ............................................................................................. 23
7. Les cyclines ....................................................................................................................... 25
8. Myélome multiple ............................................................................................................ 26
9. Droplet Digital PCR ........................................................................................................... 27
9. a. Point de départ en pré-PCR : .................................................................................... 28
9. b. Étape 1 : création des gouttelettes grâce au générateur de gouttelettes : ............. 29
9. c. Étape 2 : amplification par PCR : .............................................................................. 30
9. d. Étape 3 : lecture des gouttelettes grâce au lecteur automatique : ......................... 32
9. e. Étape 4 : analyse des résultats par le logiciel QuantaSoft : ..................................... 33
Objectifs et stratégie ................................................................................................................ 37
Partie pratique.......................................................................................................................... 37
1. Dossier de validation ........................................................................................................ 37
2. Dossier de validation pour la recherche de la mutation V617F sur le gène Jak2 par ddPCR ................................................................................................................................... 38
2. a. Manipulation pour les différents paramètres .......................................................... 38
Matériel et méthode .................................................................................................... 38
Mode opératoire ......................................................................................................... 38
10
2. b. Détermination du seuil en ddPCR pour la mutation V617F du gène Jak2 ............... 41
Mise en pratique : Analyse d’une série d’échantillons négatifs et un positif .............. 41
2. c. Répétabilité ............................................................................................................... 43
Mise en pratique : échantillon répété .......................................................................... 43
2. d. Reproductibilité ........................................................................................................ 44
Mise en pratique 1 : jours différents ............................................................................ 44
Mise en pratique 2 : générateur de gouttelettes différents ........................................ 45
2. e. Robustesse ................................................................................................................ 46
Mise en pratique 1 : volumes différents ...................................................................... 46
Mise en pratique 2 : concentrations en ADN différentes ............................................ 48
Mise en pratique 3 : différents volumes avant émulsions ........................................... 49
Mise en pratique 4 : volumes après émulsions différents ........................................... 51
2. f. Sensibilité .................................................................................................................. 52
Mise en pratique : pourcentages différents ................................................................ 52
2. g. Limite de détection ................................................................................................... 53
Mise en pratique : à 0.5% ............................................................................................. 53
2. h. Linéarité .................................................................................................................... 54
Mise en pratique : proportionnalité de concentrations .............................................. 54
2. i. Comparaison de deux méthodes d’analyse : le pyroséquençage et la ddPCR ......... 56
Mode opératoire ......................................................................................................... 57
Mise en pratique 1 : JAK2 de 9.6 à 0.9% ...................................................................... 59
Mise en pratique 2 : vrais ou faux positifs ? ................................................................ 61
3. Dossier de validation pour la recherche de la surexpression en cycline D1 par ddPCR .. 63
3. a. Manipulation pour les différents paramètres .......................................................... 63
Matériel et méthode .................................................................................................... 63
Mode opératoire .......................................................................................................... 63
11
3. b. Linéarité .................................................................................................................... 64
Mise en pratique : dilutions de plasmides en CD1, CD3 et CD1/CD3 .......................... 64
3. c. Spécificité .................................................................................................................. 65
Mise en pratique : dilutions des plasmides en CD1 et CD3 avec des sondes non spécifiques .................................................................................................................... 65
3. d. Établissement d’un seuil de sensibilité .................................................................... 66
Mise en pratique : échantillons négatifs ...................................................................... 66
3. e. Série d’échantillons négatifs et positifs .................................................................... 70
Mise en pratique : comparaison qPCR avec ddPCR ..................................................... 70
3. f. Répétabilité ............................................................................................................... 71
Mise en pratique : positif fort, positif faible, négatif fort et négatif faible ................. 71
3. g. Reproductibilité ........................................................................................................ 72
Mise en pratique : K562 ............................................................................................... 72
Conclusion ................................................................................................................................ 73
Bibliographie ............................................................................................................................ 75
Annexes .................................................................................................................................... 77Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65672 Etude des modes de conservations de frottis sanguins pour la biobanque [TFE / Mémoire] / Morgane EMMERECHTS, Auteur . - 2016.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : erythrocytes CHU UCL Namur Mont Godinne leucocytes granulocytes lymphocytes monocytes thrombocytes immunophénotypage sang anticorps cytométrie en flux Mau-Grünwald Giemsa myéloperoxydase double estérase congélation coloration coenzymatique immunomarquage Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Présentation du lieu du stage .................................................................................................. 13
Introduction .............................................................................................................................. 15
Partie théorique ....................................................................................................................... 17
1. Les acides nucléiques ....................................................................................................... 17
2. Le gène ............................................................................................................................. 18
3. Du proto-oncogène à l’oncogène ..................................................................................... 20
4. Les mutations ................................................................................................................... 20
5. Le gène Jak2 ..................................................................................................................... 23
6. Syndrome myéloprolifératif ............................................................................................. 23
7. Les cyclines ....................................................................................................................... 25
8. Myélome multiple ............................................................................................................ 26
9. Droplet Digital PCR ........................................................................................................... 27
9. a. Point de départ en pré-PCR : .................................................................................... 28
9. b. Étape 1 : création des gouttelettes grâce au générateur de gouttelettes : ............. 29
9. c. Étape 2 : amplification par PCR : .............................................................................. 30
9. d. Étape 3 : lecture des gouttelettes grâce au lecteur automatique : ......................... 32
9. e. Étape 4 : analyse des résultats par le logiciel QuantaSoft : ..................................... 33
Objectifs et stratégie ................................................................................................................ 37
Partie pratique.......................................................................................................................... 37
1. Dossier de validation ........................................................................................................ 37
2. Dossier de validation pour la recherche de la mutation V617F sur le gène Jak2 par ddPCR ................................................................................................................................... 38
2. a. Manipulation pour les différents paramètres .......................................................... 38
Matériel et méthode .................................................................................................... 38
Mode opératoire ......................................................................................................... 38
10
2. b. Détermination du seuil en ddPCR pour la mutation V617F du gène Jak2 ............... 41
Mise en pratique : Analyse d’une série d’échantillons négatifs et un positif .............. 41
2. c. Répétabilité ............................................................................................................... 43
Mise en pratique : échantillon répété .......................................................................... 43
2. d. Reproductibilité ........................................................................................................ 44
Mise en pratique 1 : jours différents ............................................................................ 44
Mise en pratique 2 : générateur de gouttelettes différents ........................................ 45
2. e. Robustesse ................................................................................................................ 46
Mise en pratique 1 : volumes différents ...................................................................... 46
Mise en pratique 2 : concentrations en ADN différentes ............................................ 48
Mise en pratique 3 : différents volumes avant émulsions ........................................... 49
Mise en pratique 4 : volumes après émulsions différents ........................................... 51
2. f. Sensibilité .................................................................................................................. 52
Mise en pratique : pourcentages différents ................................................................ 52
2. g. Limite de détection ................................................................................................... 53
Mise en pratique : à 0.5% ............................................................................................. 53
2. h. Linéarité .................................................................................................................... 54
Mise en pratique : proportionnalité de concentrations .............................................. 54
2. i. Comparaison de deux méthodes d’analyse : le pyroséquençage et la ddPCR ......... 56
Mode opératoire ......................................................................................................... 57
Mise en pratique 1 : JAK2 de 9.6 à 0.9% ...................................................................... 59
Mise en pratique 2 : vrais ou faux positifs ? ................................................................ 61
3. Dossier de validation pour la recherche de la surexpression en cycline D1 par ddPCR .. 63
3. a. Manipulation pour les différents paramètres .......................................................... 63
Matériel et méthode .................................................................................................... 63
Mode opératoire .......................................................................................................... 63
11
3. b. Linéarité .................................................................................................................... 64
Mise en pratique : dilutions de plasmides en CD1, CD3 et CD1/CD3 .......................... 64
3. c. Spécificité .................................................................................................................. 65
Mise en pratique : dilutions des plasmides en CD1 et CD3 avec des sondes non spécifiques .................................................................................................................... 65
3. d. Établissement d’un seuil de sensibilité .................................................................... 66
Mise en pratique : échantillons négatifs ...................................................................... 66
3. e. Série d’échantillons négatifs et positifs .................................................................... 70
Mise en pratique : comparaison qPCR avec ddPCR ..................................................... 70
3. f. Répétabilité ............................................................................................................... 71
Mise en pratique : positif fort, positif faible, négatif fort et négatif faible ................. 71
3. g. Reproductibilité ........................................................................................................ 72
Mise en pratique : K562 ............................................................................................... 72
Conclusion ................................................................................................................................ 73
Bibliographie ............................................................................................................................ 75
Annexes .................................................................................................................................... 77Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65672 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire EVALUATION D'UNE METHODE D'ANTIBIOGRAMME RAPIDE A PARTIR DES FLACONS D'HEMOCULTURE POSITIVE SELON LES RECOMMANDATIONS DE L'EUCAST / Blandine Ngongang Nana
Titre : EVALUATION D'UNE METHODE D'ANTIBIOGRAMME RAPIDE A PARTIR DES FLACONS D'HEMOCULTURE POSITIVE SELON LES RECOMMANDATIONS DE L'EUCAST Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Blandine Ngongang Nana, Auteur ; Nicolas Kesteman, Directeur de la recherche Editeur : Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale Année de publication : 2019 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale CHU Marie Curie Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : L’étude réalisée porte sur l’évaluation d’une méthode d’antibiogramme rapide à partir des flacons d’hémocultures selon les recommandations du comité européen de l’antibiogramme (EUCAST - European Committee on Antimicrobial Susceptibility). Cette méthode appelée RAST (Rapid Antimicrobial Susceptibilité Testing) a été expérimentée sur une population de 33 hémocultures monomicrobiennes. Cette population était constituée de 18 souches d'Escherichia coli, 9 souches de Staphylococcus aureus, 5 souches de Klebsiella pneumoniae et 1 souche de Pseudomonas aeruginosa.
Pour chaque flacon d'hémoculture positive, un antibiogramme a été réalisé à partir du liquide contenu du flacon. Une lecture des zones d'inhibition a été faite après 4 heures d'incubation puis une autre après 6 heures. Le germe pouvait être soit résistant, sensible ou alors de sensibilité non interprétable. Trois types de résultats ont été distingués après la lecture des antibiogrammes. Les résultats se sont donc catégorisés en « sensible ou résistant », « non interprétables » ou « illisibles ». Par la suite, une comparaison entre la méthode RAST et la méthode de référence a permis d’évaluer la concordance des résultats qui étaient sensibles ou résistants ; les autres résultats étant exclus.
Les résultats des antibiogrammes des Staphylococcus aureus ont présenté 100% de concordance entre les deux méthodes.
Concernant les antibiogrammes des bacilles Gram négatif étudiés, les deux méthodes ont été plus concordantes à la 6e heure qu’à la 4e heure d’incubation de la méthode RAST.
Quelques cas de discordances majeures ont cependant été observés pour les antibiotiques Piperacillin-Tazobactam, Cefotaxime, Ceftazidime, Ciprofloxacin, Gentamicin et Tobramycin. La source probable de cette discordance serait le raccourcissement de la durée d’incubation. Une prolongation de la durée d’incubation à 8 heures tel que recommandé par l’EUCAST pourrait peut-être contribuer à limiter les cas de discordances observés.
Note de contenu : Table des matières
Remerciements 1
Présentation du lieu de stage 6
Introduction 8
I. CONTEXTE GENERAL 9
I.1. Bactériémie 9
I.1.1. Définition 9
I.1.2. Physiopathologie 9
I.1.3. Signes cliniques 11
I.1.4. Germes rencontrés 11
I.1.5. Epidémiologie 12
I.2. Hémoculture 13
I.2.1. Principe 13
I.2.2. Incubation des flacons 14
I.2.3. Prise en charge actuelle des flacons positifs 16
I.2.3.1. Examen direct et ensemencement 16
I.2.3.2. Identification des germes 16
I.2.3.3. Réalisation de l’antibiogramme conventionnel 18
II. OBJECTIFS ET STRATEGIES 20
II.1. Objectif du travail 20
II.2. Stratégie Méthode RAST 20
II.3. Revue de la littérature 21
III. MATERIELS ET METHODES 23
III.1. Matériels et appareillages 23
III.1.1. Matériels 23
III.1.2. Appareillages 25
III.2. Aspects pré-analytiques 25
III.2.1. Vérification de la stérilité de la poche de sang 25
III.2.2. Délai de la positivité des Contrôles de Qualité (CQ) 26
III.2.3. Germes exclus de l’étude 27
III.2.4. Vérification de la conformité des flacons d’hémoculture 27
III.3. Mode opératoire 28
III.3.1. Gestion des flacons d’hémoculture des patients 28
III.3.1.1. Prise en charge des flacons positifs 28
III.3.1.2. Réalisation de l’antibiogramme selon la méthode Kirby Bauer 28
III.3.1.3. Choix des disques antibiotiques 28
III.3.1.4. Lecture des antibiogrammes rapides 29
III.3.1.5. Identification des germes sur culture jeune 29
III.3.1.6. Réalisation des antibiogrammes conventionnels 30
III.3.2. Mise au point de contrôles de qualité interne 31
III.3.2.1. Préparation des contrôles de qualité internes 31
III.3.2.2. Introduction du sang de la poche transfusionnelle dans les flacons d’hémoculture de chaque souche ATCC 32
III.3.2.3. Prise en charge des flacons positifs des contrôles qualité (CQ) 32
IV. RESULTATS ET DISCUSSION 32
IV.1. Résultats 32
IV.1.1. Aspects pré-analytiques 32
IV.1.1.1. Vérification de la stérilité de la poche de sang 32
IV.1.1.2. Délai de la positivité des contrôles de qualité 33
IV.1.1.3. Vérification de la conformité des flacons d’hémoculture 34
IV.1.2. Méthode RAST 34
IV.1.2.1. Prise en charge des flacons positifs 34
IV.1.2.2. Réalisation de l’antibiogramme par la méthode du Kirby Bauer 34
IV.1.2.3. Choix des disques antibiotiques 34
IV.1.2.4. Lecture des antibiogrammes des Contrôles de qualité interne 35
IV.1.2.4.1. Staphylococcus aureus ATCC 25213 35
IV.1.2.4.2. Escherichia coli ATCC 25922 37
IV.1.2.5. Identification des germes sur culture jeune 40
IV.1.2.6. Lecture des antibiogrammes rapides (RAST) des flacons d’hémoculture des patients et comparaison avec la méthode conventionnelle 42
IV.1.2.6.1. Cocci Gram Positif en amas 42
IV.1.2.6.1.1. Lecture des antibiogrammes rapides des Cocci Gram Positif en amas 42
IV.1.2.6.1.2. Comparaison des antibiogrammes RAST et les antibiogrammes conventionnels des Cocci Gram Positif en amas 44
IV.1.2.6.2. Bacilles Gram Négatif 45
IV.1.2.6.2.1. Lecture des antibiogrammes RAST des Bacilles Gram Négatif 45
IV.1.2.6.2.2. Comparaison des antibiogrammes RAST avec les antibiogrammes conventionnels des Bacilles Gram Négatif 47
IV.2. Discussion 48
Conclusion et perspectives 50
Liste des abréviations 51
Bibliographie 53
Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=79996 EVALUATION D'UNE METHODE D'ANTIBIOGRAMME RAPIDE A PARTIR DES FLACONS D'HEMOCULTURE POSITIVE SELON LES RECOMMANDATIONS DE L'EUCAST [TFE / Mémoire] / Blandine Ngongang Nana, Auteur ; Nicolas Kesteman, Directeur de la recherche . - Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale, 2019.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : biologie médicale CHU Marie Curie Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : L’étude réalisée porte sur l’évaluation d’une méthode d’antibiogramme rapide à partir des flacons d’hémocultures selon les recommandations du comité européen de l’antibiogramme (EUCAST - European Committee on Antimicrobial Susceptibility). Cette méthode appelée RAST (Rapid Antimicrobial Susceptibilité Testing) a été expérimentée sur une population de 33 hémocultures monomicrobiennes. Cette population était constituée de 18 souches d'Escherichia coli, 9 souches de Staphylococcus aureus, 5 souches de Klebsiella pneumoniae et 1 souche de Pseudomonas aeruginosa.
Pour chaque flacon d'hémoculture positive, un antibiogramme a été réalisé à partir du liquide contenu du flacon. Une lecture des zones d'inhibition a été faite après 4 heures d'incubation puis une autre après 6 heures. Le germe pouvait être soit résistant, sensible ou alors de sensibilité non interprétable. Trois types de résultats ont été distingués après la lecture des antibiogrammes. Les résultats se sont donc catégorisés en « sensible ou résistant », « non interprétables » ou « illisibles ». Par la suite, une comparaison entre la méthode RAST et la méthode de référence a permis d’évaluer la concordance des résultats qui étaient sensibles ou résistants ; les autres résultats étant exclus.
Les résultats des antibiogrammes des Staphylococcus aureus ont présenté 100% de concordance entre les deux méthodes.
Concernant les antibiogrammes des bacilles Gram négatif étudiés, les deux méthodes ont été plus concordantes à la 6e heure qu’à la 4e heure d’incubation de la méthode RAST.
Quelques cas de discordances majeures ont cependant été observés pour les antibiotiques Piperacillin-Tazobactam, Cefotaxime, Ceftazidime, Ciprofloxacin, Gentamicin et Tobramycin. La source probable de cette discordance serait le raccourcissement de la durée d’incubation. Une prolongation de la durée d’incubation à 8 heures tel que recommandé par l’EUCAST pourrait peut-être contribuer à limiter les cas de discordances observés.
Note de contenu : Table des matières
Remerciements 1
Présentation du lieu de stage 6
Introduction 8
I. CONTEXTE GENERAL 9
I.1. Bactériémie 9
I.1.1. Définition 9
I.1.2. Physiopathologie 9
I.1.3. Signes cliniques 11
I.1.4. Germes rencontrés 11
I.1.5. Epidémiologie 12
I.2. Hémoculture 13
I.2.1. Principe 13
I.2.2. Incubation des flacons 14
I.2.3. Prise en charge actuelle des flacons positifs 16
I.2.3.1. Examen direct et ensemencement 16
I.2.3.2. Identification des germes 16
I.2.3.3. Réalisation de l’antibiogramme conventionnel 18
II. OBJECTIFS ET STRATEGIES 20
II.1. Objectif du travail 20
II.2. Stratégie Méthode RAST 20
II.3. Revue de la littérature 21
III. MATERIELS ET METHODES 23
III.1. Matériels et appareillages 23
III.1.1. Matériels 23
III.1.2. Appareillages 25
III.2. Aspects pré-analytiques 25
III.2.1. Vérification de la stérilité de la poche de sang 25
III.2.2. Délai de la positivité des Contrôles de Qualité (CQ) 26
III.2.3. Germes exclus de l’étude 27
III.2.4. Vérification de la conformité des flacons d’hémoculture 27
III.3. Mode opératoire 28
III.3.1. Gestion des flacons d’hémoculture des patients 28
III.3.1.1. Prise en charge des flacons positifs 28
III.3.1.2. Réalisation de l’antibiogramme selon la méthode Kirby Bauer 28
III.3.1.3. Choix des disques antibiotiques 28
III.3.1.4. Lecture des antibiogrammes rapides 29
III.3.1.5. Identification des germes sur culture jeune 29
III.3.1.6. Réalisation des antibiogrammes conventionnels 30
III.3.2. Mise au point de contrôles de qualité interne 31
III.3.2.1. Préparation des contrôles de qualité internes 31
III.3.2.2. Introduction du sang de la poche transfusionnelle dans les flacons d’hémoculture de chaque souche ATCC 32
III.3.2.3. Prise en charge des flacons positifs des contrôles qualité (CQ) 32
IV. RESULTATS ET DISCUSSION 32
IV.1. Résultats 32
IV.1.1. Aspects pré-analytiques 32
IV.1.1.1. Vérification de la stérilité de la poche de sang 32
IV.1.1.2. Délai de la positivité des contrôles de qualité 33
IV.1.1.3. Vérification de la conformité des flacons d’hémoculture 34
IV.1.2. Méthode RAST 34
IV.1.2.1. Prise en charge des flacons positifs 34
IV.1.2.2. Réalisation de l’antibiogramme par la méthode du Kirby Bauer 34
IV.1.2.3. Choix des disques antibiotiques 34
IV.1.2.4. Lecture des antibiogrammes des Contrôles de qualité interne 35
IV.1.2.4.1. Staphylococcus aureus ATCC 25213 35
IV.1.2.4.2. Escherichia coli ATCC 25922 37
IV.1.2.5. Identification des germes sur culture jeune 40
IV.1.2.6. Lecture des antibiogrammes rapides (RAST) des flacons d’hémoculture des patients et comparaison avec la méthode conventionnelle 42
IV.1.2.6.1. Cocci Gram Positif en amas 42
IV.1.2.6.1.1. Lecture des antibiogrammes rapides des Cocci Gram Positif en amas 42
IV.1.2.6.1.2. Comparaison des antibiogrammes RAST et les antibiogrammes conventionnels des Cocci Gram Positif en amas 44
IV.1.2.6.2. Bacilles Gram Négatif 45
IV.1.2.6.2.1. Lecture des antibiogrammes RAST des Bacilles Gram Négatif 45
IV.1.2.6.2.2. Comparaison des antibiogrammes RAST avec les antibiogrammes conventionnels des Bacilles Gram Négatif 47
IV.2. Discussion 48
Conclusion et perspectives 50
Liste des abréviations 51
Bibliographie 53
Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=79996 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire