Centre de Documentation Campus Montignies
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6 résultat(s) recherche sur le mot-clé 'monocytes'
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Cellulaire immunologische technieken in ABTL BVLT, 1 (1997)
[article]
Titre : Cellulaire immunologische technieken Type de document : texte imprimé Année de publication : 1997 Article en page(s) : 33 - 46 Mots-clés : IMMUNOLOGIE LEUKOCYTES LYMPHOCYTES CYTOMETRIE DE FLUX FLUORESCENCE FAGOCYTOSE MONOCYTES MACROPHAGES GRANULOCYTES Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=69447
in ABTL BVLT > 1 (1997) . - 33 - 46[article] Cellulaire immunologische technieken [texte imprimé] . - 1997 . - 33 - 46.
in ABTL BVLT > 1 (1997) . - 33 - 46
Mots-clés : IMMUNOLOGIE LEUKOCYTES LYMPHOCYTES CYTOMETRIE DE FLUX FLUORESCENCE FAGOCYTOSE MONOCYTES MACROPHAGES GRANULOCYTES Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=69447 Exemplaires (1)
Cote Support Localisation Section Disponibilité Revue Revue Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Réserve Consultable sur demande auprès des documentalistes
Exclu du prêtEtude des modes de conservations de frottis sanguins pour la biobanque / Morgane EMMERECHTS
Titre : Etude des modes de conservations de frottis sanguins pour la biobanque Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Morgane EMMERECHTS, Auteur Année de publication : 2016 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : erythrocytes CHU UCL Namur Mont Godinne leucocytes granulocytes lymphocytes monocytes thrombocytes immunophénotypage sang anticorps cytométrie en flux Mau-Grünwald Giemsa myéloperoxydase double estérase congélation coloration coenzymatique immunomarquage Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Présentation du lieu du stage .................................................................................................. 13
Introduction .............................................................................................................................. 15
Partie théorique ....................................................................................................................... 17
1. Les acides nucléiques ....................................................................................................... 17
2. Le gène ............................................................................................................................. 18
3. Du proto-oncogène à l’oncogène ..................................................................................... 20
4. Les mutations ................................................................................................................... 20
5. Le gène Jak2 ..................................................................................................................... 23
6. Syndrome myéloprolifératif ............................................................................................. 23
7. Les cyclines ....................................................................................................................... 25
8. Myélome multiple ............................................................................................................ 26
9. Droplet Digital PCR ........................................................................................................... 27
9. a. Point de départ en pré-PCR : .................................................................................... 28
9. b. Étape 1 : création des gouttelettes grâce au générateur de gouttelettes : ............. 29
9. c. Étape 2 : amplification par PCR : .............................................................................. 30
9. d. Étape 3 : lecture des gouttelettes grâce au lecteur automatique : ......................... 32
9. e. Étape 4 : analyse des résultats par le logiciel QuantaSoft : ..................................... 33
Objectifs et stratégie ................................................................................................................ 37
Partie pratique.......................................................................................................................... 37
1. Dossier de validation ........................................................................................................ 37
2. Dossier de validation pour la recherche de la mutation V617F sur le gène Jak2 par ddPCR ................................................................................................................................... 38
2. a. Manipulation pour les différents paramètres .......................................................... 38
Matériel et méthode .................................................................................................... 38
Mode opératoire ......................................................................................................... 38
10
2. b. Détermination du seuil en ddPCR pour la mutation V617F du gène Jak2 ............... 41
Mise en pratique : Analyse d’une série d’échantillons négatifs et un positif .............. 41
2. c. Répétabilité ............................................................................................................... 43
Mise en pratique : échantillon répété .......................................................................... 43
2. d. Reproductibilité ........................................................................................................ 44
Mise en pratique 1 : jours différents ............................................................................ 44
Mise en pratique 2 : générateur de gouttelettes différents ........................................ 45
2. e. Robustesse ................................................................................................................ 46
Mise en pratique 1 : volumes différents ...................................................................... 46
Mise en pratique 2 : concentrations en ADN différentes ............................................ 48
Mise en pratique 3 : différents volumes avant émulsions ........................................... 49
Mise en pratique 4 : volumes après émulsions différents ........................................... 51
2. f. Sensibilité .................................................................................................................. 52
Mise en pratique : pourcentages différents ................................................................ 52
2. g. Limite de détection ................................................................................................... 53
Mise en pratique : à 0.5% ............................................................................................. 53
2. h. Linéarité .................................................................................................................... 54
Mise en pratique : proportionnalité de concentrations .............................................. 54
2. i. Comparaison de deux méthodes d’analyse : le pyroséquençage et la ddPCR ......... 56
Mode opératoire ......................................................................................................... 57
Mise en pratique 1 : JAK2 de 9.6 à 0.9% ...................................................................... 59
Mise en pratique 2 : vrais ou faux positifs ? ................................................................ 61
3. Dossier de validation pour la recherche de la surexpression en cycline D1 par ddPCR .. 63
3. a. Manipulation pour les différents paramètres .......................................................... 63
Matériel et méthode .................................................................................................... 63
Mode opératoire .......................................................................................................... 63
11
3. b. Linéarité .................................................................................................................... 64
Mise en pratique : dilutions de plasmides en CD1, CD3 et CD1/CD3 .......................... 64
3. c. Spécificité .................................................................................................................. 65
Mise en pratique : dilutions des plasmides en CD1 et CD3 avec des sondes non spécifiques .................................................................................................................... 65
3. d. Établissement d’un seuil de sensibilité .................................................................... 66
Mise en pratique : échantillons négatifs ...................................................................... 66
3. e. Série d’échantillons négatifs et positifs .................................................................... 70
Mise en pratique : comparaison qPCR avec ddPCR ..................................................... 70
3. f. Répétabilité ............................................................................................................... 71
Mise en pratique : positif fort, positif faible, négatif fort et négatif faible ................. 71
3. g. Reproductibilité ........................................................................................................ 72
Mise en pratique : K562 ............................................................................................... 72
Conclusion ................................................................................................................................ 73
Bibliographie ............................................................................................................................ 75
Annexes .................................................................................................................................... 77Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65672 Etude des modes de conservations de frottis sanguins pour la biobanque [TFE / Mémoire] / Morgane EMMERECHTS, Auteur . - 2016.
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Mots-clés : erythrocytes CHU UCL Namur Mont Godinne leucocytes granulocytes lymphocytes monocytes thrombocytes immunophénotypage sang anticorps cytométrie en flux Mau-Grünwald Giemsa myéloperoxydase double estérase congélation coloration coenzymatique immunomarquage Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Présentation du lieu du stage .................................................................................................. 13
Introduction .............................................................................................................................. 15
Partie théorique ....................................................................................................................... 17
1. Les acides nucléiques ....................................................................................................... 17
2. Le gène ............................................................................................................................. 18
3. Du proto-oncogène à l’oncogène ..................................................................................... 20
4. Les mutations ................................................................................................................... 20
5. Le gène Jak2 ..................................................................................................................... 23
6. Syndrome myéloprolifératif ............................................................................................. 23
7. Les cyclines ....................................................................................................................... 25
8. Myélome multiple ............................................................................................................ 26
9. Droplet Digital PCR ........................................................................................................... 27
9. a. Point de départ en pré-PCR : .................................................................................... 28
9. b. Étape 1 : création des gouttelettes grâce au générateur de gouttelettes : ............. 29
9. c. Étape 2 : amplification par PCR : .............................................................................. 30
9. d. Étape 3 : lecture des gouttelettes grâce au lecteur automatique : ......................... 32
9. e. Étape 4 : analyse des résultats par le logiciel QuantaSoft : ..................................... 33
Objectifs et stratégie ................................................................................................................ 37
Partie pratique.......................................................................................................................... 37
1. Dossier de validation ........................................................................................................ 37
2. Dossier de validation pour la recherche de la mutation V617F sur le gène Jak2 par ddPCR ................................................................................................................................... 38
2. a. Manipulation pour les différents paramètres .......................................................... 38
Matériel et méthode .................................................................................................... 38
Mode opératoire ......................................................................................................... 38
10
2. b. Détermination du seuil en ddPCR pour la mutation V617F du gène Jak2 ............... 41
Mise en pratique : Analyse d’une série d’échantillons négatifs et un positif .............. 41
2. c. Répétabilité ............................................................................................................... 43
Mise en pratique : échantillon répété .......................................................................... 43
2. d. Reproductibilité ........................................................................................................ 44
Mise en pratique 1 : jours différents ............................................................................ 44
Mise en pratique 2 : générateur de gouttelettes différents ........................................ 45
2. e. Robustesse ................................................................................................................ 46
Mise en pratique 1 : volumes différents ...................................................................... 46
Mise en pratique 2 : concentrations en ADN différentes ............................................ 48
Mise en pratique 3 : différents volumes avant émulsions ........................................... 49
Mise en pratique 4 : volumes après émulsions différents ........................................... 51
2. f. Sensibilité .................................................................................................................. 52
Mise en pratique : pourcentages différents ................................................................ 52
2. g. Limite de détection ................................................................................................... 53
Mise en pratique : à 0.5% ............................................................................................. 53
2. h. Linéarité .................................................................................................................... 54
Mise en pratique : proportionnalité de concentrations .............................................. 54
2. i. Comparaison de deux méthodes d’analyse : le pyroséquençage et la ddPCR ......... 56
Mode opératoire ......................................................................................................... 57
Mise en pratique 1 : JAK2 de 9.6 à 0.9% ...................................................................... 59
Mise en pratique 2 : vrais ou faux positifs ? ................................................................ 61
3. Dossier de validation pour la recherche de la surexpression en cycline D1 par ddPCR .. 63
3. a. Manipulation pour les différents paramètres .......................................................... 63
Matériel et méthode .................................................................................................... 63
Mode opératoire .......................................................................................................... 63
11
3. b. Linéarité .................................................................................................................... 64
Mise en pratique : dilutions de plasmides en CD1, CD3 et CD1/CD3 .......................... 64
3. c. Spécificité .................................................................................................................. 65
Mise en pratique : dilutions des plasmides en CD1 et CD3 avec des sondes non spécifiques .................................................................................................................... 65
3. d. Établissement d’un seuil de sensibilité .................................................................... 66
Mise en pratique : échantillons négatifs ...................................................................... 66
3. e. Série d’échantillons négatifs et positifs .................................................................... 70
Mise en pratique : comparaison qPCR avec ddPCR ..................................................... 70
3. f. Répétabilité ............................................................................................................... 71
Mise en pratique : positif fort, positif faible, négatif fort et négatif faible ................. 71
3. g. Reproductibilité ........................................................................................................ 72
Mise en pratique : K562 ............................................................................................... 72
Conclusion ................................................................................................................................ 73
Bibliographie ............................................................................................................................ 75
Annexes .................................................................................................................................... 77Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65672 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Hématologie / Atul B. Mehta
Titre : Hématologie Type de document : texte imprimé Auteurs : Atul B. Mehta, Auteur ; A. V. Hoffbrand, Auteur ; Michel Rocour, Traducteur Editeur : Paris : De Boeck Année de publication : 2003 Collection : Sciences médicales. Série Claude Bernard Sous-collection : Série Claude Bernard Importance : 208 p. Présentation : ill. en noir et en coul., couv. ill. en coul. Format : 27 cm ISBN/ISSN/EAN : 2-7445-0141-7 Prix : 29 EUR Note générale : Index Langues : Français (fre) Langues originales : Anglais (eng) Mots-clés : SANG HEMATOPOÏESE GLOBULES ROUGES PLAQUETTES GRANULOCYTES MONOCYTES LYMPHOCYTES EXAMENS DE LABORATOIRE FER ANEMIES INSUFFISANCE MEDULLAIRE HEMOPATHIES MALIGNES LEUCEMIES LYMPHOMES Index. décimale : 616.15 Sang. Plasma. Sérum. Hématologie clinique. Maladie du sang Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=85908 Hématologie [texte imprimé] / Atul B. Mehta, Auteur ; A. V. Hoffbrand, Auteur ; Michel Rocour, Traducteur . - Paris : De Boeck, 2003 . - 208 p. : ill. en noir et en coul., couv. ill. en coul. ; 27 cm. - (Sciences médicales. Série Claude Bernard. Série Claude Bernard) .
ISBN : 2-7445-0141-7 : 29 EUR
Index
Langues : Français (fre) Langues originales : Anglais (eng)
Mots-clés : SANG HEMATOPOÏESE GLOBULES ROUGES PLAQUETTES GRANULOCYTES MONOCYTES LYMPHOCYTES EXAMENS DE LABORATOIRE FER ANEMIES INSUFFISANCE MEDULLAIRE HEMOPATHIES MALIGNES LEUCEMIES LYMPHOMES Index. décimale : 616.15 Sang. Plasma. Sérum. Hématologie clinique. Maladie du sang Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=85908 Réservation
Réserver ce document
Exemplaires (1)
Cote Support Localisation Section Disponibilité 616.15 MET H Livre Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Etagères livres Disponible
DisponibleL'inflammation / RUSSO-MARIE Françoise , et al.
Titre : L'inflammation Type de document : texte imprimé Auteurs : RUSSO-MARIE Françoise , et al., Année de publication : 1998 Mots-clés : REACTION INFLAMMATOIRE REACTIONS IMMUNITAIRES NEUTROPHILES MONOCYTES MACROPHAGES EOSINOPHILES MASTOCYTES BASOPHILES LYPHOCYTES : T / B PLAQUETTES ALLERGIE INTRLEUKINE ANTIINFLAMMATOIRES Index. décimale : Biologie Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=63928 L'inflammation [texte imprimé] / RUSSO-MARIE Françoise , et al., . - 1998.
Mots-clés : REACTION INFLAMMATOIRE REACTIONS IMMUNITAIRES NEUTROPHILES MONOCYTES MACROPHAGES EOSINOPHILES MASTOCYTES BASOPHILES LYPHOCYTES : T / B PLAQUETTES ALLERGIE INTRLEUKINE ANTIINFLAMMATOIRES Index. décimale : Biologie Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=63928 Exemplaires (1)
Cote Support Localisation Section Disponibilité BIO 0085 Livre Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Réserve Consultable sur demande auprès des documentalistes
Exclu du prêtQuand le système immunitaire défaille in Biofutur, 157 (1996)
[article]
Titre : Quand le système immunitaire défaille Type de document : texte imprimé Année de publication : 1996 Article en page(s) : 31 - 35 Mots-clés : MONOCYTES GRANULOCYTES LYMPHOCYTES B et T Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=68654
in Biofutur > 157 (1996) . - 31 - 35[article] Quand le système immunitaire défaille [texte imprimé] . - 1996 . - 31 - 35.
in Biofutur > 157 (1996) . - 31 - 35
Mots-clés : MONOCYTES GRANULOCYTES LYMPHOCYTES B et T Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=68654 Exemplaires (1)
Cote Support Localisation Section Disponibilité Revue Revue Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Réserve Consultable sur demande auprès des documentalistes
Exclu du prêtDe rol van monocyten en macrophagen bij de afweer tegen maligne tumoren in ABTL BVLT, 1 (1997)
Permalink