Centre de Documentation Campus Montignies
Horaires :
Lundi : 8h-18h30
Mardi : 8h-17h30
Mercredi 9h-16h30
Jeudi : 8h-18h30
Vendredi : 8h30-12h30 et 13h-14h30
Lundi : 8h-18h30
Mardi : 8h-17h30
Mercredi 9h-16h30
Jeudi : 8h-18h30
Vendredi : 8h30-12h30 et 13h-14h30
Bienvenue sur le catalogue du centre de documentation du campus de Montignies.
Résultat de la recherche
16 résultat(s) recherche sur le mot-clé 'immunophénotypage'
Ajouter le résultat dans votre panier Affiner la recherche Générer le flux rss de la recherche
Partager le résultat de cette recherche Faire une suggestion
Développement de l'immunophénotypage dans les syndromes myélodysplasiques in RFL : Revue Francophone des Laboratoires, 413 (2009)
[article]
Titre : Développement de l'immunophénotypage dans les syndromes myélodysplasiques Type de document : texte imprimé Année de publication : 2009 Article en page(s) : 73 - 76 Langues : Français (fre) Mots-clés : SYNDROMES MYELODYSPLMASIQUES SMD IMMUNOPHENOTYPAGE CYTOMETRIE CYTOPENIE EN FLUX DIAGNOSTIC En ligne : http://www.em-consulte.com/article/218216/article/developpement-de-limmunophenot [...] Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=71996
in RFL : Revue Francophone des Laboratoires > 413 (2009) . - 73 - 76[article] Développement de l'immunophénotypage dans les syndromes myélodysplasiques [texte imprimé] . - 2009 . - 73 - 76.
Langues : Français (fre)
in RFL : Revue Francophone des Laboratoires > 413 (2009) . - 73 - 76Exemplaires (1)
Cote Support Localisation Section Disponibilité Revue Revue Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Réserve Consultable sur demande auprès des documentalistes
Exclu du prêtUn cas rare de myélome multiple non-sécrétant / Tristan Bintner in Annales de Biologie Clinique, Vol.80 N°1 (janvier 2022)
[article]
Titre : Un cas rare de myélome multiple non-sécrétant Type de document : texte imprimé Auteurs : Tristan Bintner ; Valérie Coulon ; Quentin Cabrera ; Thierry Klein Année de publication : 2022 Article en page(s) : p. 61-64 Note générale : https://DOI:10.1684/abc.2022.1699 Langues : Français (fre) Mots-clés : myélome multiple non-sécrétant myélogramme immunophénotypage Résumé : Un homme de 88 ans est hospitalisé dans un contexte d’altération de l’état général. L’hypercalcémie, le débit de filtration glomérulaire et la présence de lésions ostéolytiques diffuses amènent à la réalisation d’un myélogramme, qui retrouve un envahissement médullaire majeur par des plasmocytes anormaux. L’absence de détection d’immunoglobuline ou de chaîne légère libre dans le sang et les urines, de même que l’immunophénotypage mettant en évidence des plasmocytes très immatures, permettent le diagnostic de myélome multiple non-sécrétant. Ce cas clinique a pour objectif de décrire la présentation atypique d’une forme rare de myélome multiple. Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=101767
in Annales de Biologie Clinique > Vol.80 N°1 (janvier 2022) . - p. 61-64[article] Un cas rare de myélome multiple non-sécrétant [texte imprimé] / Tristan Bintner ; Valérie Coulon ; Quentin Cabrera ; Thierry Klein . - 2022 . - p. 61-64.
https://DOI:10.1684/abc.2022.1699
Langues : Français (fre)
in Annales de Biologie Clinique > Vol.80 N°1 (janvier 2022) . - p. 61-64
Mots-clés : myélome multiple non-sécrétant myélogramme immunophénotypage Résumé : Un homme de 88 ans est hospitalisé dans un contexte d’altération de l’état général. L’hypercalcémie, le débit de filtration glomérulaire et la présence de lésions ostéolytiques diffuses amènent à la réalisation d’un myélogramme, qui retrouve un envahissement médullaire majeur par des plasmocytes anormaux. L’absence de détection d’immunoglobuline ou de chaîne légère libre dans le sang et les urines, de même que l’immunophénotypage mettant en évidence des plasmocytes très immatures, permettent le diagnostic de myélome multiple non-sécrétant. Ce cas clinique a pour objectif de décrire la présentation atypique d’une forme rare de myélome multiple. Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=101767 Réservation
Réserver ce document
Exemplaires (1)
Cote Support Localisation Section Disponibilité Revue Revue Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Armoires à volets Disponible
DisponibleLeucémies aiguës difficilement classables : à propos d’un cas / Carole Fleury in Annales de Biologie Clinique, 75/3 (Mai-juin 2017)
[article]
Titre : Leucémies aiguës difficilement classables : à propos d’un cas Type de document : texte imprimé Auteurs : Carole Fleury ; Marie Passet ; Catherine Settegrana Année de publication : 2017 Article en page(s) : p. 339-347 Langues : Français (fre) Mots-clés : leucémie aiguë de phénotype mixte leucémie aiguë lymphoblastique T cytologie immunophénotypage cytométrie en flux clonalité lymphoïde Résumé : Nous rapportons le cas d’une leucémie aiguë atypique, chez un homme de 31 ans, dont la caractérisation cytologique est difficile. L’immunophénotypage permet d’identifier une population blastique co-exprimant des marqueurs des 3 lignées (myéloïde, lymphoïde B et T) évoquant ainsi deux diagnostics : celui de leucémie aiguë de phénotype mixte et celui de leucémie aiguë lymphoblastique de type early T-cell precursor. Devant cette leucémie de mauvais pronostic, le patient reçoit une chimiothérapie à la fois à visée myéloïde et lymphoïde en vue d’une allogreffe de cellules souches hématopoïétiques. L’étude des clonalités lymphoïdes B et T par biologie moléculaire met en évidence des réarrangements partiels des gènes des immunoglobulines et du TCR (T-cell receptor) permettant ainsi le suivi de la maladie résiduelle. Cette observation met en évidence la difficulté de classification de certaines leucémies aiguës atypiques et souligne la complémentarité des analyses biologiques : l’étude cytomorphologique, l’immunophénotypage par cytométrie en flux et la biologie moléculaire pour la caractérisation et la prise en charge de ces leucémies. Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=76297
in Annales de Biologie Clinique > 75/3 (Mai-juin 2017) . - p. 339-347[article] Leucémies aiguës difficilement classables : à propos d’un cas [texte imprimé] / Carole Fleury ; Marie Passet ; Catherine Settegrana . - 2017 . - p. 339-347.
Langues : Français (fre)
in Annales de Biologie Clinique > 75/3 (Mai-juin 2017) . - p. 339-347
Mots-clés : leucémie aiguë de phénotype mixte leucémie aiguë lymphoblastique T cytologie immunophénotypage cytométrie en flux clonalité lymphoïde Résumé : Nous rapportons le cas d’une leucémie aiguë atypique, chez un homme de 31 ans, dont la caractérisation cytologique est difficile. L’immunophénotypage permet d’identifier une population blastique co-exprimant des marqueurs des 3 lignées (myéloïde, lymphoïde B et T) évoquant ainsi deux diagnostics : celui de leucémie aiguë de phénotype mixte et celui de leucémie aiguë lymphoblastique de type early T-cell precursor. Devant cette leucémie de mauvais pronostic, le patient reçoit une chimiothérapie à la fois à visée myéloïde et lymphoïde en vue d’une allogreffe de cellules souches hématopoïétiques. L’étude des clonalités lymphoïdes B et T par biologie moléculaire met en évidence des réarrangements partiels des gènes des immunoglobulines et du TCR (T-cell receptor) permettant ainsi le suivi de la maladie résiduelle. Cette observation met en évidence la difficulté de classification de certaines leucémies aiguës atypiques et souligne la complémentarité des analyses biologiques : l’étude cytomorphologique, l’immunophénotypage par cytométrie en flux et la biologie moléculaire pour la caractérisation et la prise en charge de ces leucémies. Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=76297 Réservation
Réserver ce document
Exemplaires (1)
Cote Support Localisation Section Disponibilité Revue Revue Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Armoires à volets Disponible
DisponibleEtude des modes de conservations de frottis sanguins pour la biobanque / Morgane EMMERECHTS
Titre : Etude des modes de conservations de frottis sanguins pour la biobanque Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Morgane EMMERECHTS, Auteur Année de publication : 2016 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : erythrocytes CHU UCL Namur Mont Godinne leucocytes granulocytes lymphocytes monocytes thrombocytes immunophénotypage sang anticorps cytométrie en flux Mau-Grünwald Giemsa myéloperoxydase double estérase congélation coloration coenzymatique immunomarquage Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Présentation du lieu du stage .................................................................................................. 13
Introduction .............................................................................................................................. 15
Partie théorique ....................................................................................................................... 17
1. Les acides nucléiques ....................................................................................................... 17
2. Le gène ............................................................................................................................. 18
3. Du proto-oncogène à l’oncogène ..................................................................................... 20
4. Les mutations ................................................................................................................... 20
5. Le gène Jak2 ..................................................................................................................... 23
6. Syndrome myéloprolifératif ............................................................................................. 23
7. Les cyclines ....................................................................................................................... 25
8. Myélome multiple ............................................................................................................ 26
9. Droplet Digital PCR ........................................................................................................... 27
9. a. Point de départ en pré-PCR : .................................................................................... 28
9. b. Étape 1 : création des gouttelettes grâce au générateur de gouttelettes : ............. 29
9. c. Étape 2 : amplification par PCR : .............................................................................. 30
9. d. Étape 3 : lecture des gouttelettes grâce au lecteur automatique : ......................... 32
9. e. Étape 4 : analyse des résultats par le logiciel QuantaSoft : ..................................... 33
Objectifs et stratégie ................................................................................................................ 37
Partie pratique.......................................................................................................................... 37
1. Dossier de validation ........................................................................................................ 37
2. Dossier de validation pour la recherche de la mutation V617F sur le gène Jak2 par ddPCR ................................................................................................................................... 38
2. a. Manipulation pour les différents paramètres .......................................................... 38
Matériel et méthode .................................................................................................... 38
Mode opératoire ......................................................................................................... 38
10
2. b. Détermination du seuil en ddPCR pour la mutation V617F du gène Jak2 ............... 41
Mise en pratique : Analyse d’une série d’échantillons négatifs et un positif .............. 41
2. c. Répétabilité ............................................................................................................... 43
Mise en pratique : échantillon répété .......................................................................... 43
2. d. Reproductibilité ........................................................................................................ 44
Mise en pratique 1 : jours différents ............................................................................ 44
Mise en pratique 2 : générateur de gouttelettes différents ........................................ 45
2. e. Robustesse ................................................................................................................ 46
Mise en pratique 1 : volumes différents ...................................................................... 46
Mise en pratique 2 : concentrations en ADN différentes ............................................ 48
Mise en pratique 3 : différents volumes avant émulsions ........................................... 49
Mise en pratique 4 : volumes après émulsions différents ........................................... 51
2. f. Sensibilité .................................................................................................................. 52
Mise en pratique : pourcentages différents ................................................................ 52
2. g. Limite de détection ................................................................................................... 53
Mise en pratique : à 0.5% ............................................................................................. 53
2. h. Linéarité .................................................................................................................... 54
Mise en pratique : proportionnalité de concentrations .............................................. 54
2. i. Comparaison de deux méthodes d’analyse : le pyroséquençage et la ddPCR ......... 56
Mode opératoire ......................................................................................................... 57
Mise en pratique 1 : JAK2 de 9.6 à 0.9% ...................................................................... 59
Mise en pratique 2 : vrais ou faux positifs ? ................................................................ 61
3. Dossier de validation pour la recherche de la surexpression en cycline D1 par ddPCR .. 63
3. a. Manipulation pour les différents paramètres .......................................................... 63
Matériel et méthode .................................................................................................... 63
Mode opératoire .......................................................................................................... 63
11
3. b. Linéarité .................................................................................................................... 64
Mise en pratique : dilutions de plasmides en CD1, CD3 et CD1/CD3 .......................... 64
3. c. Spécificité .................................................................................................................. 65
Mise en pratique : dilutions des plasmides en CD1 et CD3 avec des sondes non spécifiques .................................................................................................................... 65
3. d. Établissement d’un seuil de sensibilité .................................................................... 66
Mise en pratique : échantillons négatifs ...................................................................... 66
3. e. Série d’échantillons négatifs et positifs .................................................................... 70
Mise en pratique : comparaison qPCR avec ddPCR ..................................................... 70
3. f. Répétabilité ............................................................................................................... 71
Mise en pratique : positif fort, positif faible, négatif fort et négatif faible ................. 71
3. g. Reproductibilité ........................................................................................................ 72
Mise en pratique : K562 ............................................................................................... 72
Conclusion ................................................................................................................................ 73
Bibliographie ............................................................................................................................ 75
Annexes .................................................................................................................................... 77Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65672 Etude des modes de conservations de frottis sanguins pour la biobanque [TFE / Mémoire] / Morgane EMMERECHTS, Auteur . - 2016.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : erythrocytes CHU UCL Namur Mont Godinne leucocytes granulocytes lymphocytes monocytes thrombocytes immunophénotypage sang anticorps cytométrie en flux Mau-Grünwald Giemsa myéloperoxydase double estérase congélation coloration coenzymatique immunomarquage Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Présentation du lieu du stage .................................................................................................. 13
Introduction .............................................................................................................................. 15
Partie théorique ....................................................................................................................... 17
1. Les acides nucléiques ....................................................................................................... 17
2. Le gène ............................................................................................................................. 18
3. Du proto-oncogène à l’oncogène ..................................................................................... 20
4. Les mutations ................................................................................................................... 20
5. Le gène Jak2 ..................................................................................................................... 23
6. Syndrome myéloprolifératif ............................................................................................. 23
7. Les cyclines ....................................................................................................................... 25
8. Myélome multiple ............................................................................................................ 26
9. Droplet Digital PCR ........................................................................................................... 27
9. a. Point de départ en pré-PCR : .................................................................................... 28
9. b. Étape 1 : création des gouttelettes grâce au générateur de gouttelettes : ............. 29
9. c. Étape 2 : amplification par PCR : .............................................................................. 30
9. d. Étape 3 : lecture des gouttelettes grâce au lecteur automatique : ......................... 32
9. e. Étape 4 : analyse des résultats par le logiciel QuantaSoft : ..................................... 33
Objectifs et stratégie ................................................................................................................ 37
Partie pratique.......................................................................................................................... 37
1. Dossier de validation ........................................................................................................ 37
2. Dossier de validation pour la recherche de la mutation V617F sur le gène Jak2 par ddPCR ................................................................................................................................... 38
2. a. Manipulation pour les différents paramètres .......................................................... 38
Matériel et méthode .................................................................................................... 38
Mode opératoire ......................................................................................................... 38
10
2. b. Détermination du seuil en ddPCR pour la mutation V617F du gène Jak2 ............... 41
Mise en pratique : Analyse d’une série d’échantillons négatifs et un positif .............. 41
2. c. Répétabilité ............................................................................................................... 43
Mise en pratique : échantillon répété .......................................................................... 43
2. d. Reproductibilité ........................................................................................................ 44
Mise en pratique 1 : jours différents ............................................................................ 44
Mise en pratique 2 : générateur de gouttelettes différents ........................................ 45
2. e. Robustesse ................................................................................................................ 46
Mise en pratique 1 : volumes différents ...................................................................... 46
Mise en pratique 2 : concentrations en ADN différentes ............................................ 48
Mise en pratique 3 : différents volumes avant émulsions ........................................... 49
Mise en pratique 4 : volumes après émulsions différents ........................................... 51
2. f. Sensibilité .................................................................................................................. 52
Mise en pratique : pourcentages différents ................................................................ 52
2. g. Limite de détection ................................................................................................... 53
Mise en pratique : à 0.5% ............................................................................................. 53
2. h. Linéarité .................................................................................................................... 54
Mise en pratique : proportionnalité de concentrations .............................................. 54
2. i. Comparaison de deux méthodes d’analyse : le pyroséquençage et la ddPCR ......... 56
Mode opératoire ......................................................................................................... 57
Mise en pratique 1 : JAK2 de 9.6 à 0.9% ...................................................................... 59
Mise en pratique 2 : vrais ou faux positifs ? ................................................................ 61
3. Dossier de validation pour la recherche de la surexpression en cycline D1 par ddPCR .. 63
3. a. Manipulation pour les différents paramètres .......................................................... 63
Matériel et méthode .................................................................................................... 63
Mode opératoire .......................................................................................................... 63
11
3. b. Linéarité .................................................................................................................... 64
Mise en pratique : dilutions de plasmides en CD1, CD3 et CD1/CD3 .......................... 64
3. c. Spécificité .................................................................................................................. 65
Mise en pratique : dilutions des plasmides en CD1 et CD3 avec des sondes non spécifiques .................................................................................................................... 65
3. d. Établissement d’un seuil de sensibilité .................................................................... 66
Mise en pratique : échantillons négatifs ...................................................................... 66
3. e. Série d’échantillons négatifs et positifs .................................................................... 70
Mise en pratique : comparaison qPCR avec ddPCR ..................................................... 70
3. f. Répétabilité ............................................................................................................... 71
Mise en pratique : positif fort, positif faible, négatif fort et négatif faible ................. 71
3. g. Reproductibilité ........................................................................................................ 72
Mise en pratique : K562 ............................................................................................... 72
Conclusion ................................................................................................................................ 73
Bibliographie ............................................................................................................................ 75
Annexes .................................................................................................................................... 77Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65672 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Hémopathies à lymphocytes « chevelus » / Mélissa Julien in Annales de Biologie Clinique, Vol.80 N°3 (mai 2022)
[article]
Titre : Hémopathies à lymphocytes « chevelus » : à propos d’un cas et revue de la littérature Type de document : texte imprimé Auteurs : Mélissa Julien ; Véronique Latger-Cannard ; Sylvain Salignac ; Christopher Aubert ; Delphine Gérard ; Julien Broséus ; Jean-François Lesesve Année de publication : 2022 Article en page(s) : p. 252-258 Note générale : https://doi.org/10.1684/abc.2022.1732 Langues : Français (fre) Mots-clés : lymphocytes villeux immunophénotypage SMZL HCL HCL-v SDRPL Résumé : Les syndromes lymphoprolifératifs B matures avec des lymphocytes d’aspect « chevelus » comprennent le lymphome splénique de la zone marginale splénique (SMZL), la leucémie à tricholeucocytes (HCL), le lymphome diffus de la pulpe rouge (SDRPL) et la leucémie à tricholeucocytes variante (HCL-v), ces deux dernières étant des entités provisoires apparues dans la classification OMS 2008. Nous rapportons le cas d’un homme de 75 ans qui a bénéficié d’une réévaluation diagnostique de son SMZL. En effet, la bonne évolution clinique, les données des explorations par cytométrie en flux (score HCL < 3, score SDRPL > 3, CD180 fort et ratio CD200/CD180 < 0,5) et les données anatomopathologiques ont conclu à un SDRPL. Cette entité n’existait pas lors du diagnostic en 2006. Le diagnostic différentiel entre ces différentes pathologies n’étant pas toujours aisé, nous tenterons de donner quelques pistes pratiques pour conduire au diagnostic précis. Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=105201
in Annales de Biologie Clinique > Vol.80 N°3 (mai 2022) . - p. 252-258[article] Hémopathies à lymphocytes « chevelus » : à propos d’un cas et revue de la littérature [texte imprimé] / Mélissa Julien ; Véronique Latger-Cannard ; Sylvain Salignac ; Christopher Aubert ; Delphine Gérard ; Julien Broséus ; Jean-François Lesesve . - 2022 . - p. 252-258.
https://doi.org/10.1684/abc.2022.1732
Langues : Français (fre)
in Annales de Biologie Clinique > Vol.80 N°3 (mai 2022) . - p. 252-258
Mots-clés : lymphocytes villeux immunophénotypage SMZL HCL HCL-v SDRPL Résumé : Les syndromes lymphoprolifératifs B matures avec des lymphocytes d’aspect « chevelus » comprennent le lymphome splénique de la zone marginale splénique (SMZL), la leucémie à tricholeucocytes (HCL), le lymphome diffus de la pulpe rouge (SDRPL) et la leucémie à tricholeucocytes variante (HCL-v), ces deux dernières étant des entités provisoires apparues dans la classification OMS 2008. Nous rapportons le cas d’un homme de 75 ans qui a bénéficié d’une réévaluation diagnostique de son SMZL. En effet, la bonne évolution clinique, les données des explorations par cytométrie en flux (score HCL < 3, score SDRPL > 3, CD180 fort et ratio CD200/CD180 < 0,5) et les données anatomopathologiques ont conclu à un SDRPL. Cette entité n’existait pas lors du diagnostic en 2006. Le diagnostic différentiel entre ces différentes pathologies n’étant pas toujours aisé, nous tenterons de donner quelques pistes pratiques pour conduire au diagnostic précis. Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=105201 Réservation
Réserver ce document
Exemplaires (1)
Cote Support Localisation Section Disponibilité Revue Revue Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Armoires à volets Disponible
DisponibleInvestigation des leucémies à grands lymphocytes à grains / Charles Guisnel in Annales de Biologie Clinique, Vol.80 N°1 (janvier 2022)
PermalinkLeucémie à grands lymphocytes granuleux CD3+ CD56+ révélée par une tumeur oculaire / Hanaa Bencharef ; Asmaa Koudouss ; Samiha Jaddaoui ; Dounia Dassouli ; Abdellah Madani ; Meryem Qachouh ; Bouchra Oukkache ; Laboratoire d'hématologie (Centre hospitalier universitaire IBN Rochd, Casablanca, Maroc, Université Hassan II, faculté de médecine et de pharmacie, Casablanca; Maroc.) ; Laboratoire d'hématologie (Centre hospitalier universitaire IBN Rochd, Casablanca, Maroc, Université Hassan II, faculté de médecine et de pharmacie, Casablanca; Maroc.) ; Laboratoire d'hématologie (Centre hospitalier universitaire IBN Rochd, Casablanca, Maroc, Université Hassan II, faculté de médecine et de pharmacie, Casablanca; Maroc.) ; Service d'hématologie-oncologie pédiatrique (Hôpital 20 Aout 1953, Casablanca, Maroc, Université Hassan II, faculté de médecine et de pharmacie, Casablanca; Maroc.) ; Service d'hématologie-oncologie pédiatrique (Hôpital 20 Aout 1953, Casablanca, Maroc, Université Hassan II, faculté de médecine et de pharmacie, Casablanca; Maroc.) ; Service d'hématologie-oncologie pédiatrique (Hôpital 20 Aout 1953, Casablanca, Maroc, Université Hassan II, faculté de médecine et de pharmacie, Casablanca; Maroc.) ; Laboratoire d'hématologie (Centre hospitalier universitaire IBN Rochd, Casablanca, Maroc, Université Hassan II, faculté de médecine et de pharmacie, Casablanca; Maroc.) in Annales de Biologie Clinique, vol. 79, n° 6 (Novembre - Décembre 2021)
PermalinkLeucémie néonatale et Blueberry Muffin Baby syndrome / Hicham Yahyaoui in Annales de Biologie Clinique, Vol.81 N°1 (Janvier-février 2023)
PermalinkLa leucémie à plasmocytes primitive : quelle place pour la cytométrie en flux ? / Nour Louati in Annales de Biologie Clinique, Vol.80 N°5 (septembre 2022)
PermalinkPlace de la cytométrie en flux dans le diagnostic et le suivi des syndromes lymphoprolifératifs B / Magali Le Garff-Tavernier in RFL : Revue Francophone des Laboratoires, RFL 452 ([06/05/2013])
Permalink