Centre de Documentation Campus Montignies
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Lundi : 8h-18h30
Mardi : 8h-17h30
Mercredi 9h-16h30
Jeudi : 8h-18h30
Vendredi : 8h30-12h30 et 13h-14h30
Attention,
Votre centre de documentation sera fermé ce lundi 26 août.
Également, ce mercredi 28 août il sera fermé de 12 à 13h.
Enfin, ce jeudi 29 août il ouvrira à 14h45.
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8 résultat(s) recherche sur le mot-clé 'ERYTHROCYTES'
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Adaptation de la mesure de l'activité glutathion peroxydase plasmatique et érythrocytaire sur Hitachi 911 in Annales de Biologie Clinique, 5 (1996)
[article]
Titre : Adaptation de la mesure de l'activité glutathion peroxydase plasmatique et érythrocytaire sur Hitachi 911 Type de document : texte imprimé Année de publication : 1996 Article en page(s) : 199 - 202 Mots-clés : PLASMA ERYTHROCYTES GLUTATHION PEROXYDASE AUTOMATISATION Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=68525
in Annales de Biologie Clinique > 5 (1996) . - 199 - 202[article] Adaptation de la mesure de l'activité glutathion peroxydase plasmatique et érythrocytaire sur Hitachi 911 [texte imprimé] . - 1996 . - 199 - 202.
in Annales de Biologie Clinique > 5 (1996) . - 199 - 202
Mots-clés : PLASMA ERYTHROCYTES GLUTATHION PEROXYDASE AUTOMATISATION Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=68525 Exemplaires (1)
Cote Support Localisation Section Disponibilité Revue Revue Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Réserve Consultable sur demande auprès des documentalistes
Exclu du prêt
Titre : Blood cells : a practical guide Type de document : texte imprimé Auteurs : Barbara Jane Bain, Auteur Mention d'édition : 4e ?ed. Editeur : Malden, Mass. : Blackwell Année de publication : 2006 Importance : X-476 p. Présentation : ill. en noir et en coul. Format : 26 cm ISBN/ISSN/EAN : 978-1-4051-4265-6 Langues : Anglais (eng) Mots-clés : HEMATOLOGIE SANG ANOMALIES ERYTHROCYTES LEUCOCYTES PLAQUETTES LYMPHOCYTES ANEMIES LEUCEMIES HEMOGLOBINOPATHIES THALASSEMIES PARASITES VIRUS Index. décimale : 616.15 Sang. Plasma. Sérum. Hématologie clinique. Maladie du sang Note de contenu : Blood sampling and blood film preparation and examination
Performing a blood count
Morphology of blood cells
Detecting erroneous blood counts
Normal ranges
Quantitative changes in blood cells
Important supplementary tests
Disorders of red cells and platelets
Disorders of white cellsEn ligne : http://www.loc.gov/catdir/toc/ecip063/2005031759.html Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=85522 Blood cells : a practical guide [texte imprimé] / Barbara Jane Bain, Auteur . - 4e ?ed. . - Malden, Mass. : Blackwell, 2006 . - X-476 p. : ill. en noir et en coul. ; 26 cm.
ISBN : 978-1-4051-4265-6
Langues : Anglais (eng)
Mots-clés : HEMATOLOGIE SANG ANOMALIES ERYTHROCYTES LEUCOCYTES PLAQUETTES LYMPHOCYTES ANEMIES LEUCEMIES HEMOGLOBINOPATHIES THALASSEMIES PARASITES VIRUS Index. décimale : 616.15 Sang. Plasma. Sérum. Hématologie clinique. Maladie du sang Note de contenu : Blood sampling and blood film preparation and examination
Performing a blood count
Morphology of blood cells
Detecting erroneous blood counts
Normal ranges
Quantitative changes in blood cells
Important supplementary tests
Disorders of red cells and platelets
Disorders of white cellsEn ligne : http://www.loc.gov/catdir/toc/ecip063/2005031759.html Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=85522 Réservation
Réserver ce document
Exemplaires (1)
Cote Support Localisation Section Disponibilité 616.15 BAI B Livre Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Etagères livres Disponible
DisponibleDosage du glutathion avec la méthode GSH-400 : intérêt de la spectrophotométrie dérivée in Annales de Biologie Clinique, 6 (1997)
[article]
Titre : Dosage du glutathion avec la méthode GSH-400 : intérêt de la spectrophotométrie dérivée Type de document : texte imprimé Année de publication : 1997 Article en page(s) : 592 - 596 Mots-clés : ERYTHROCYTES Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=69033
in Annales de Biologie Clinique > 6 (1997) . - 592 - 596[article] Dosage du glutathion avec la méthode GSH-400 : intérêt de la spectrophotométrie dérivée [texte imprimé] . - 1997 . - 592 - 596.
in Annales de Biologie Clinique > 6 (1997) . - 592 - 596
Mots-clés : ERYTHROCYTES Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=69033 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Erythrocyte metabolic alterations in type I diabetes : relationship to metabolic control in Annales de Biologie Clinique, 1 (1992)
[article]
Titre : Erythrocyte metabolic alterations in type I diabetes : relationship to metabolic control Type de document : texte imprimé Année de publication : 1992 Article en page(s) : 9 - 13 Mots-clés : DIABETE ERYTHROCYTES ATP DIPHOSPHOGLYCERATE DPG GLYCOLYSE ERYTHROCYTAIRE Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=67078
in Annales de Biologie Clinique > 1 (1992) . - 9 - 13[article] Erythrocyte metabolic alterations in type I diabetes : relationship to metabolic control [texte imprimé] . - 1992 . - 9 - 13.
in Annales de Biologie Clinique > 1 (1992) . - 9 - 13
Mots-clés : DIABETE ERYTHROCYTES ATP DIPHOSPHOGLYCERATE DPG GLYCOLYSE ERYTHROCYTAIRE Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=67078 Exemplaires (1)
Cote Support Localisation Section Disponibilité Revue Revue Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Réserve Consultable sur demande auprès des documentalistes
Exclu du prêtEtude des modes de conservations de frottis sanguins pour la biobanque / Morgane EMMERECHTS
Titre : Etude des modes de conservations de frottis sanguins pour la biobanque Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Morgane EMMERECHTS, Auteur Année de publication : 2016 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : erythrocytes CHU UCL Namur Mont Godinne leucocytes granulocytes lymphocytes monocytes thrombocytes immunophénotypage sang anticorps cytométrie en flux Mau-Grünwald Giemsa myéloperoxydase double estérase congélation coloration coenzymatique immunomarquage Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Présentation du lieu du stage .................................................................................................. 13
Introduction .............................................................................................................................. 15
Partie théorique ....................................................................................................................... 17
1. Les acides nucléiques ....................................................................................................... 17
2. Le gène ............................................................................................................................. 18
3. Du proto-oncogène à l’oncogène ..................................................................................... 20
4. Les mutations ................................................................................................................... 20
5. Le gène Jak2 ..................................................................................................................... 23
6. Syndrome myéloprolifératif ............................................................................................. 23
7. Les cyclines ....................................................................................................................... 25
8. Myélome multiple ............................................................................................................ 26
9. Droplet Digital PCR ........................................................................................................... 27
9. a. Point de départ en pré-PCR : .................................................................................... 28
9. b. Étape 1 : création des gouttelettes grâce au générateur de gouttelettes : ............. 29
9. c. Étape 2 : amplification par PCR : .............................................................................. 30
9. d. Étape 3 : lecture des gouttelettes grâce au lecteur automatique : ......................... 32
9. e. Étape 4 : analyse des résultats par le logiciel QuantaSoft : ..................................... 33
Objectifs et stratégie ................................................................................................................ 37
Partie pratique.......................................................................................................................... 37
1. Dossier de validation ........................................................................................................ 37
2. Dossier de validation pour la recherche de la mutation V617F sur le gène Jak2 par ddPCR ................................................................................................................................... 38
2. a. Manipulation pour les différents paramètres .......................................................... 38
Matériel et méthode .................................................................................................... 38
Mode opératoire ......................................................................................................... 38
10
2. b. Détermination du seuil en ddPCR pour la mutation V617F du gène Jak2 ............... 41
Mise en pratique : Analyse d’une série d’échantillons négatifs et un positif .............. 41
2. c. Répétabilité ............................................................................................................... 43
Mise en pratique : échantillon répété .......................................................................... 43
2. d. Reproductibilité ........................................................................................................ 44
Mise en pratique 1 : jours différents ............................................................................ 44
Mise en pratique 2 : générateur de gouttelettes différents ........................................ 45
2. e. Robustesse ................................................................................................................ 46
Mise en pratique 1 : volumes différents ...................................................................... 46
Mise en pratique 2 : concentrations en ADN différentes ............................................ 48
Mise en pratique 3 : différents volumes avant émulsions ........................................... 49
Mise en pratique 4 : volumes après émulsions différents ........................................... 51
2. f. Sensibilité .................................................................................................................. 52
Mise en pratique : pourcentages différents ................................................................ 52
2. g. Limite de détection ................................................................................................... 53
Mise en pratique : à 0.5% ............................................................................................. 53
2. h. Linéarité .................................................................................................................... 54
Mise en pratique : proportionnalité de concentrations .............................................. 54
2. i. Comparaison de deux méthodes d’analyse : le pyroséquençage et la ddPCR ......... 56
Mode opératoire ......................................................................................................... 57
Mise en pratique 1 : JAK2 de 9.6 à 0.9% ...................................................................... 59
Mise en pratique 2 : vrais ou faux positifs ? ................................................................ 61
3. Dossier de validation pour la recherche de la surexpression en cycline D1 par ddPCR .. 63
3. a. Manipulation pour les différents paramètres .......................................................... 63
Matériel et méthode .................................................................................................... 63
Mode opératoire .......................................................................................................... 63
11
3. b. Linéarité .................................................................................................................... 64
Mise en pratique : dilutions de plasmides en CD1, CD3 et CD1/CD3 .......................... 64
3. c. Spécificité .................................................................................................................. 65
Mise en pratique : dilutions des plasmides en CD1 et CD3 avec des sondes non spécifiques .................................................................................................................... 65
3. d. Établissement d’un seuil de sensibilité .................................................................... 66
Mise en pratique : échantillons négatifs ...................................................................... 66
3. e. Série d’échantillons négatifs et positifs .................................................................... 70
Mise en pratique : comparaison qPCR avec ddPCR ..................................................... 70
3. f. Répétabilité ............................................................................................................... 71
Mise en pratique : positif fort, positif faible, négatif fort et négatif faible ................. 71
3. g. Reproductibilité ........................................................................................................ 72
Mise en pratique : K562 ............................................................................................... 72
Conclusion ................................................................................................................................ 73
Bibliographie ............................................................................................................................ 75
Annexes .................................................................................................................................... 77Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65672 Etude des modes de conservations de frottis sanguins pour la biobanque [TFE / Mémoire] / Morgane EMMERECHTS, Auteur . - 2016.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : erythrocytes CHU UCL Namur Mont Godinne leucocytes granulocytes lymphocytes monocytes thrombocytes immunophénotypage sang anticorps cytométrie en flux Mau-Grünwald Giemsa myéloperoxydase double estérase congélation coloration coenzymatique immunomarquage Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Présentation du lieu du stage .................................................................................................. 13
Introduction .............................................................................................................................. 15
Partie théorique ....................................................................................................................... 17
1. Les acides nucléiques ....................................................................................................... 17
2. Le gène ............................................................................................................................. 18
3. Du proto-oncogène à l’oncogène ..................................................................................... 20
4. Les mutations ................................................................................................................... 20
5. Le gène Jak2 ..................................................................................................................... 23
6. Syndrome myéloprolifératif ............................................................................................. 23
7. Les cyclines ....................................................................................................................... 25
8. Myélome multiple ............................................................................................................ 26
9. Droplet Digital PCR ........................................................................................................... 27
9. a. Point de départ en pré-PCR : .................................................................................... 28
9. b. Étape 1 : création des gouttelettes grâce au générateur de gouttelettes : ............. 29
9. c. Étape 2 : amplification par PCR : .............................................................................. 30
9. d. Étape 3 : lecture des gouttelettes grâce au lecteur automatique : ......................... 32
9. e. Étape 4 : analyse des résultats par le logiciel QuantaSoft : ..................................... 33
Objectifs et stratégie ................................................................................................................ 37
Partie pratique.......................................................................................................................... 37
1. Dossier de validation ........................................................................................................ 37
2. Dossier de validation pour la recherche de la mutation V617F sur le gène Jak2 par ddPCR ................................................................................................................................... 38
2. a. Manipulation pour les différents paramètres .......................................................... 38
Matériel et méthode .................................................................................................... 38
Mode opératoire ......................................................................................................... 38
10
2. b. Détermination du seuil en ddPCR pour la mutation V617F du gène Jak2 ............... 41
Mise en pratique : Analyse d’une série d’échantillons négatifs et un positif .............. 41
2. c. Répétabilité ............................................................................................................... 43
Mise en pratique : échantillon répété .......................................................................... 43
2. d. Reproductibilité ........................................................................................................ 44
Mise en pratique 1 : jours différents ............................................................................ 44
Mise en pratique 2 : générateur de gouttelettes différents ........................................ 45
2. e. Robustesse ................................................................................................................ 46
Mise en pratique 1 : volumes différents ...................................................................... 46
Mise en pratique 2 : concentrations en ADN différentes ............................................ 48
Mise en pratique 3 : différents volumes avant émulsions ........................................... 49
Mise en pratique 4 : volumes après émulsions différents ........................................... 51
2. f. Sensibilité .................................................................................................................. 52
Mise en pratique : pourcentages différents ................................................................ 52
2. g. Limite de détection ................................................................................................... 53
Mise en pratique : à 0.5% ............................................................................................. 53
2. h. Linéarité .................................................................................................................... 54
Mise en pratique : proportionnalité de concentrations .............................................. 54
2. i. Comparaison de deux méthodes d’analyse : le pyroséquençage et la ddPCR ......... 56
Mode opératoire ......................................................................................................... 57
Mise en pratique 1 : JAK2 de 9.6 à 0.9% ...................................................................... 59
Mise en pratique 2 : vrais ou faux positifs ? ................................................................ 61
3. Dossier de validation pour la recherche de la surexpression en cycline D1 par ddPCR .. 63
3. a. Manipulation pour les différents paramètres .......................................................... 63
Matériel et méthode .................................................................................................... 63
Mode opératoire .......................................................................................................... 63
11
3. b. Linéarité .................................................................................................................... 64
Mise en pratique : dilutions de plasmides en CD1, CD3 et CD1/CD3 .......................... 64
3. c. Spécificité .................................................................................................................. 65
Mise en pratique : dilutions des plasmides en CD1 et CD3 avec des sondes non spécifiques .................................................................................................................... 65
3. d. Établissement d’un seuil de sensibilité .................................................................... 66
Mise en pratique : échantillons négatifs ...................................................................... 66
3. e. Série d’échantillons négatifs et positifs .................................................................... 70
Mise en pratique : comparaison qPCR avec ddPCR ..................................................... 70
3. f. Répétabilité ............................................................................................................... 71
Mise en pratique : positif fort, positif faible, négatif fort et négatif faible ................. 71
3. g. Reproductibilité ........................................................................................................ 72
Mise en pratique : K562 ............................................................................................... 72
Conclusion ................................................................................................................................ 73
Bibliographie ............................................................................................................................ 75
Annexes .................................................................................................................................... 77Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65672 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Evaluation de différentes méthodes diagnostiques pour le dépistage de la sphérocytose héréditaire au laboratoire / SMIRNOFF Alexandre
PermalinkGuide pratique de cytologie et hématologie du chien et du chat / Rick L. Cowell
PermalinkLes maladies héréditaires de la membrane érythrocytaire : du tableau clinique aux mécanismes génétiques et moléculaires sous-jacents in Annales de Biologie Clinique, 3 (2000)
Permalink