Centre de Documentation Campus Montignies
Horaires :
Lundi : 8h-18h30
Mardi : 8h-17h30
Mercredi 9h-16h30
Jeudi : 8h-18h30
Vendredi : 8h30-12h30 et 13h-14h30
Attention,
Votre centre de documentation sera fermé ce lundi 26 août.
Également, ce mercredi 28 août il sera fermé de 12 à 13h.
Enfin, ce jeudi 29 août il ouvrira à 14h45.
Lundi : 8h-18h30
Mardi : 8h-17h30
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2.2 TFE Agro-industries et biotechnologies
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A review of the role of omics-based techniques in identifying and understanding microbial successions in urine patches in New Zealand grasslands and their impact on N2O emissions / Vanessa Gelhay
Titre : A review of the role of omics-based techniques in identifying and understanding microbial successions in urine patches in New Zealand grasslands and their impact on N2O emissions Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Vanessa Gelhay, Auteur ; Jonathan Scauflaire, Directeur de la recherche Editeur : Montignies-sur-Sambre : Helha. Agronomie Année de publication : 2020 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : Agronomie AIBT Index. décimale : TFE AIBT TFE Agro-industries et biotechnologies Résumé : The intensive dairy farming system in New Zealand is responsible for most of the country’s N2O emissions. As a signatory of the Paris Agreement of 2015, New Zealand needs to get its emissions under control if it is to meet the 2050 target of no more emissions of this
greenhouse gas. The purpose of the present document is to offer a bibliographical review of the following
topics: The first chapter describes the importance of nitrogen in agriculture, explains its cycle and focusses on the main pathways for N2O emissions. The second chapter studies the N2O-producing microbial communities found in grassland
soils: what defines them, what their roles are, and how disruptive urine deposition can be to soil microorganisms. The third chapter reviews the role of metagenomics, metatranscriptomics and bioinformatics in environmental studies, and how they are crucial in gathering, treating and analyzing data.
Finally, in the conclusion, we provide some leads as to the possible solutions that could help New Zealand reduce its N2O emissions in urine patches.Note de contenu : Table of Contents
Acknowledgments
Presentation of the Department of Microbiology and Immunology
Introduction………………………………………………………………………………………………………………….……………………………..6
1 NITROGEN: ROLE, CYCLING AND CONTRIBUTION TO ATMOSPHERIC POLLUTION ............................. 9
1.1 ROLE OF NITROGEN IN AGRICULTURE ....................................................................................................... 9
1.2 NITROGEN CYCLING IN SOILS ................................................................................................................ 11
1.2.1 Pathways for N2O production .................................................................................................. 13
2 MICROBIAL COMMUNITIES IN GRASSLAND SOIL ............................................................................ 19
2.1 GENERAL CHARACTERISTICS OF SOIL MICROBIOMES .................................................................................. 19
2.2 COMPOSITION AND ROLES OF THE MICROBIAL COMMUNITIES IN SOILS .......................................................... 21
2.2.1 Archaea ................................................................................................................................... 22
2.2.2 Bacteria ................................................................................................................................... 22
2.2.3 Fungi ........................................................................................................................................ 24
2.3 IMPACT OF URINE ON MICROBIAL COMMUNITY COMPOSITION .................................................................... 26
3 IMPORTANCE OF MOLECULAR BIOLOGY AND BIOINFORMATICS .................................................... 27
3.1 DEFINITION OF OMICS-BASED TECHNIQUES ............................................................................................. 28
3.2 USE OF OMICS-BASED TECHNIQUES IN ENVIRONMENTAL STUDIES ................................................................ 29
3.2.1 Metagenomics ......................................................................................................................... 30
3.2.2 Metatranscriptomics ............................................................................................................... 32
3.3 LIMITATIONS OF OMICS-BASED TECHNIQUES ........................................................................................... 33
3.4 BIOINFORMATICS .............................................................................................................................. 34
Conclusion and perspectives……………………………………………………………………………………………………………………….36
Glossary…………………………………………………………………………………………..…………………………………………………………38
Abbreviations and acronyms ………………………………………………………………………………………………………………………39
Table of figures ……………………………………………………………………………………………………………………………………….…41
Bibliography ………………………………………………………………………………………………………………………………………………42
Table of appendices ………………………………………………………………………………………………………………..…………………59
AppendicesPermalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=89175 A review of the role of omics-based techniques in identifying and understanding microbial successions in urine patches in New Zealand grasslands and their impact on N2O emissions [TFE / Mémoire] / Vanessa Gelhay, Auteur ; Jonathan Scauflaire, Directeur de la recherche . - Montignies-sur-Sambre : Helha. Agronomie, 2020.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : Agronomie AIBT Index. décimale : TFE AIBT TFE Agro-industries et biotechnologies Résumé : The intensive dairy farming system in New Zealand is responsible for most of the country’s N2O emissions. As a signatory of the Paris Agreement of 2015, New Zealand needs to get its emissions under control if it is to meet the 2050 target of no more emissions of this
greenhouse gas. The purpose of the present document is to offer a bibliographical review of the following
topics: The first chapter describes the importance of nitrogen in agriculture, explains its cycle and focusses on the main pathways for N2O emissions. The second chapter studies the N2O-producing microbial communities found in grassland
soils: what defines them, what their roles are, and how disruptive urine deposition can be to soil microorganisms. The third chapter reviews the role of metagenomics, metatranscriptomics and bioinformatics in environmental studies, and how they are crucial in gathering, treating and analyzing data.
Finally, in the conclusion, we provide some leads as to the possible solutions that could help New Zealand reduce its N2O emissions in urine patches.Note de contenu : Table of Contents
Acknowledgments
Presentation of the Department of Microbiology and Immunology
Introduction………………………………………………………………………………………………………………….……………………………..6
1 NITROGEN: ROLE, CYCLING AND CONTRIBUTION TO ATMOSPHERIC POLLUTION ............................. 9
1.1 ROLE OF NITROGEN IN AGRICULTURE ....................................................................................................... 9
1.2 NITROGEN CYCLING IN SOILS ................................................................................................................ 11
1.2.1 Pathways for N2O production .................................................................................................. 13
2 MICROBIAL COMMUNITIES IN GRASSLAND SOIL ............................................................................ 19
2.1 GENERAL CHARACTERISTICS OF SOIL MICROBIOMES .................................................................................. 19
2.2 COMPOSITION AND ROLES OF THE MICROBIAL COMMUNITIES IN SOILS .......................................................... 21
2.2.1 Archaea ................................................................................................................................... 22
2.2.2 Bacteria ................................................................................................................................... 22
2.2.3 Fungi ........................................................................................................................................ 24
2.3 IMPACT OF URINE ON MICROBIAL COMMUNITY COMPOSITION .................................................................... 26
3 IMPORTANCE OF MOLECULAR BIOLOGY AND BIOINFORMATICS .................................................... 27
3.1 DEFINITION OF OMICS-BASED TECHNIQUES ............................................................................................. 28
3.2 USE OF OMICS-BASED TECHNIQUES IN ENVIRONMENTAL STUDIES ................................................................ 29
3.2.1 Metagenomics ......................................................................................................................... 30
3.2.2 Metatranscriptomics ............................................................................................................... 32
3.3 LIMITATIONS OF OMICS-BASED TECHNIQUES ........................................................................................... 33
3.4 BIOINFORMATICS .............................................................................................................................. 34
Conclusion and perspectives……………………………………………………………………………………………………………………….36
Glossary…………………………………………………………………………………………..…………………………………………………………38
Abbreviations and acronyms ………………………………………………………………………………………………………………………39
Table of figures ……………………………………………………………………………………………………………………………………….…41
Bibliography ………………………………………………………………………………………………………………………………………………42
Table of appendices ………………………………………………………………………………………………………………..…………………59
AppendicesPermalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=89175 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Optimisation de protocoles d’extraction protéique de farines d’insectes dans le cadre du développement d’analyses en spectrométrie de masse / Romain Sanna
Titre : Optimisation de protocoles d’extraction protéique de farines d’insectes dans le cadre du développement d’analyses en spectrométrie de masse Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Romain Sanna, Auteur ; Valérie Norberg, Directeur de publication, rédacteur en chef Editeur : Montignies-sur-Sambre : Helha. Agronomie Année de publication : 2019 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : Agronomie AIBT CRA-W protéines farines d'insectes Index. décimale : TFE AIBT TFE Agro-industries et biotechnologies Note de contenu : Présentation du lieu de stage................................................................................................... 11
I. Partie théorique ............................................................................................................... 13
1 Introduction du sujet ........................................................................................................ 14
2 Préparation des échantillons pour les analyses ............................................................... 16
2.1 Broyage ..................................................................................................................... 16
2.1.1 Broyeur à marteaux ............................................................................................ 16
2.1.2 Broyeur à cylindres ............................................................................................. 16
2.1.3 Broyeur ultracentrifuge ..................................................................................... 17
2.1.4 Samples Grinding Kit .......................................................................................... 18
2.2 Extraction : réactifs utilisés lors des différents protocoles ...................................... 18
2.2.1 Trishydroxyméthyl-aminométhane (Tris) .......................................................... 18
2.2.2 Urée .................................................................................................................... 19
2.2.3 Sodium Dodecyl Sulfate (SDS) ............................................................................ 20
2.2.4 Dithiothréitol (DTT) ............................................................................................ 20
2.2.5 Acide trichloro-acétique (TCA) ........................................................................... 21
2.2.6 Acide chlorhydrique (HCl) .................................................................................. 22
2.2.7 DIGE (Differential Gel Electrophoresis) labelling buffer (DLA)........................... 22
3 Experimentation ............................................................................................................... 23
3.1 Dosage Pierce ........................................................................................................... 23
3.2 Dosage de l’azote protéique par la méthode Kjeldahl ............................................. 24
3.3 Spectrométrie de masse en tandem ........................................................................ 25
II. Partie pratique ................................................................................................................. 29
Objectifs et stratégie ................................................................................................................ 30
1 Matériels et réactifs ......................................................................................................... 30
2 Méthodologie ................................................................................................................... 31
2.1 Préparation des solutions ........................................................................................ 31
2.1.1 Tampon Tris-Urée ............................................................................................... 31
2.1.2 Tampon SDS-Tris ................................................................................................ 31
2.1.3 HCl ...................................................................................................................... 31
2.1.4 DLA ..................................................................................................................... 31
2.1.5 TCA/acétone ....................................................................................................... 32
2.2 Préparation des échantillons.................................................................................... 32
2.3 Protocoles testés ...................................................................................................... 33
2.3.1 Protocole Tris-Urée « normal » 1 ....................................................................... 33
2.3.2 Protocole Tris-Urée « modifié » ......................................................................... 34
2.3.3 Protocole Tris-Urée « normal » 2 ....................................................................... 34
2.3.4 Protocole HCl ...................................................................................................... 34
2.3.5 Protocole TCA/acétone ...................................................................................... 35
2.3.6 Protocole SDS 4 % .............................................................................................. 35
2.4 Dosage Pierce (Protein Assay 660 nm) ..................................................................... 36
2.5 Dosage des protéines totales ................................................................................... 39
3 Résultats et discussion ..................................................................................................... 40
3.1 Dosage Kjeldahl ........................................................................................................ 40
3.2 Comparaison des protocoles Tris-Urée avec le protocole SDS 4 % ......................... 41
3.3 Comparaison entre les protocoles Tris-Urée, Tris + HCl et TCA/acétone ................ 44
3.4 Comparaison des 3 protocoles choisis sur l’ensemble des échantillons ................. 46
4 Conclusion ........................................................................................................................ 48
Abréviations ............................................................................................................................. 50
Glossaire ................................................................................................................................... 51
Bibliographie ............................................................................................................................ 52
Annexes ....................................................................................................................................Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=79740 Optimisation de protocoles d’extraction protéique de farines d’insectes dans le cadre du développement d’analyses en spectrométrie de masse [TFE / Mémoire] / Romain Sanna, Auteur ; Valérie Norberg, Directeur de publication, rédacteur en chef . - Montignies-sur-Sambre : Helha. Agronomie, 2019.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : Agronomie AIBT CRA-W protéines farines d'insectes Index. décimale : TFE AIBT TFE Agro-industries et biotechnologies Note de contenu : Présentation du lieu de stage................................................................................................... 11
I. Partie théorique ............................................................................................................... 13
1 Introduction du sujet ........................................................................................................ 14
2 Préparation des échantillons pour les analyses ............................................................... 16
2.1 Broyage ..................................................................................................................... 16
2.1.1 Broyeur à marteaux ............................................................................................ 16
2.1.2 Broyeur à cylindres ............................................................................................. 16
2.1.3 Broyeur ultracentrifuge ..................................................................................... 17
2.1.4 Samples Grinding Kit .......................................................................................... 18
2.2 Extraction : réactifs utilisés lors des différents protocoles ...................................... 18
2.2.1 Trishydroxyméthyl-aminométhane (Tris) .......................................................... 18
2.2.2 Urée .................................................................................................................... 19
2.2.3 Sodium Dodecyl Sulfate (SDS) ............................................................................ 20
2.2.4 Dithiothréitol (DTT) ............................................................................................ 20
2.2.5 Acide trichloro-acétique (TCA) ........................................................................... 21
2.2.6 Acide chlorhydrique (HCl) .................................................................................. 22
2.2.7 DIGE (Differential Gel Electrophoresis) labelling buffer (DLA)........................... 22
3 Experimentation ............................................................................................................... 23
3.1 Dosage Pierce ........................................................................................................... 23
3.2 Dosage de l’azote protéique par la méthode Kjeldahl ............................................. 24
3.3 Spectrométrie de masse en tandem ........................................................................ 25
II. Partie pratique ................................................................................................................. 29
Objectifs et stratégie ................................................................................................................ 30
1 Matériels et réactifs ......................................................................................................... 30
2 Méthodologie ................................................................................................................... 31
2.1 Préparation des solutions ........................................................................................ 31
2.1.1 Tampon Tris-Urée ............................................................................................... 31
2.1.2 Tampon SDS-Tris ................................................................................................ 31
2.1.3 HCl ...................................................................................................................... 31
2.1.4 DLA ..................................................................................................................... 31
2.1.5 TCA/acétone ....................................................................................................... 32
2.2 Préparation des échantillons.................................................................................... 32
2.3 Protocoles testés ...................................................................................................... 33
2.3.1 Protocole Tris-Urée « normal » 1 ....................................................................... 33
2.3.2 Protocole Tris-Urée « modifié » ......................................................................... 34
2.3.3 Protocole Tris-Urée « normal » 2 ....................................................................... 34
2.3.4 Protocole HCl ...................................................................................................... 34
2.3.5 Protocole TCA/acétone ...................................................................................... 35
2.3.6 Protocole SDS 4 % .............................................................................................. 35
2.4 Dosage Pierce (Protein Assay 660 nm) ..................................................................... 36
2.5 Dosage des protéines totales ................................................................................... 39
3 Résultats et discussion ..................................................................................................... 40
3.1 Dosage Kjeldahl ........................................................................................................ 40
3.2 Comparaison des protocoles Tris-Urée avec le protocole SDS 4 % ......................... 41
3.3 Comparaison entre les protocoles Tris-Urée, Tris + HCl et TCA/acétone ................ 44
3.4 Comparaison des 3 protocoles choisis sur l’ensemble des échantillons ................. 46
4 Conclusion ........................................................................................................................ 48
Abréviations ............................................................................................................................. 50
Glossaire ................................................................................................................................... 51
Bibliographie ............................................................................................................................ 52
Annexes ....................................................................................................................................Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=79740 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Potentiel d’utilisation de drêche, de fibre de coco et d’écorce de fève de cacao comme substrat pour la culture de champignons saprophytes destinés à l’alimentation / Maurine Raskin
Titre : Potentiel d’utilisation de drêche, de fibre de coco et d’écorce de fève de cacao comme substrat pour la culture de champignons saprophytes destinés à l’alimentation Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Maurine Raskin, Auteur ; Gaëtane Maernoudt, Directeur de publication, rédacteur en chef Editeur : Montignies-sur-Sambre : Helha. Agronomie Année de publication : 2019 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : Agronomie AIBT le champignon de Bruxelles champignons saprophytes Index. décimale : TFE AIBT TFE Agro-industries et biotechnologies Résumé : Ce travail de fin d’études s’inscrit dans la continuité de mon stage, qui s’est déroulé durant quatre mois, au sein de la champignonnière « le Champignon de Bruxelles ». Cette étude aborde la réutilisation de coproduits organiques d’origine urbaine comme ingrédients entrant dans la composition de substrats destinés à la culture de champignons saprophytes comestibles.
L’objectif poursuivi est d’évaluer le potentiel d’utilisation de drêches de bière, de fibres de coco et d’écorces de fèves de cacao comme matières premières entrant dans
l’élaboration de ces substrats. Les recherches ont été menées sur six espèces de champignons basidiomycètes (Lentinula edodes, Pholiota nameko, Grifola frondosa,
Pleurotus eryngii, Pleurotus ostreatus, Agrocybe aegerita) cultivées par la coopérative « le Champignon de Bruxelles ».
La stratégie menée consistait à déterminer les différents paramètres pouvant influer la croissance des champignons, de préparer et traiter les substrats avant de les mettre en culture, puis de mesurer les rendements des récoltes afin de mettre en évidence les paramètres les plus probants.
Ce travail a permis de confirmer le succès des substrats à base de drêches de bières et de pellets de bois, qui s’avèrent tout à fait adaptés à la culture de champignons saprophytes. En effet, leur emploi permet une efficience de culture qui dépasse généralement l’efficience obtenue par des substrats élaborés à partir de recettes « traditionnelles ». En ce qui concerne l’utilisation de fibres de coco et d’écorces de fèves de cacao, il est encore trop tôt pour se prononcer étant donné que les substrats concernés sont toujours à l’étude.Note de contenu : Table des matières
Remerciements
Table des matières
Présentation du lieu de stage ........................................................................................... 7
Le Champignon de Bruxelles ....................................................................................... 7
Evolution de la recherche depuis les débuts de la coopérative ..................................... 9
Introduction ................................................................................................................... 11
Contexte .................................................................................................................. 12
1.1 L’agronomie urbaine ou la pratique agricole en ville ............................... 12
1.2 L’économie circulaire ............................................................................... 14
1.3 La place des champignons dans un système alimentaire durable ............. 19
1.4 Les champignons ....................................................................................... 20
1.4.1 Le règne des Fungi ................................................................................... 20
1.4.1.1 Généralités ........................................................................................... 20
1.4.1.2 Reproduction ........................................................................................ 21
1.4.1.3 Ecologie ............................................................................................... 22
1.4.2 Les Basidiomycètes .................................................................................. 23
1.4.2.1 Généralités ........................................................................................... 23
1.4.2.2 Croissance ............................................................................................ 24
1.4.2.3 Reproduction ........................................................................................ 25
1.5 La culture des Fungi .................................................................................. 27
1.5.1 Les champignons à l’accent bruxellois .................................................... 31
1.5.1.1 Shiitake (Lentinula edodes) ................................................................. 32
1.5.1.2 Nameko (Pholiota nameko) ................................................................. 32
1.5.1.3 Maitake (Grifola frondosa) .................................................................. 32
1.5.1.4 Eryngii (Pleurotus eryngii) .................................................................. 33
1.5.1.5 Pioppino (Agrocybe aegerita) .............................................................. 33
1.5.1.6 Pleurote huître (Pleurotus ostreatus) .................................................... 33
Objectifs de la recherche ........................................................................................ 34
Matériel et méthode ................................................................................................ 35
3.1 Mode « TEST » ......................................................................................... 36
3.1.1 L’objectif du mode « TEST » .................................................................. 36
3.1.2 Préparation des sacs de substrats .............................................................. 36
3.1.3 Pasteurisation ........................................................................................... 37
3.1.4 Inoculation ................................................................................................ 38
3.1.5 Incubation ................................................................................................. 38
3.1.6 Fructification ............................................................................................ 39
3.2 Mode PROD .............................................................................................. 40
3.2.1 L’objectif du mode « PROD » ................................................................. 40
3.2.2 Préparation des sacs de substrats .............................................................. 40
3.2.3 Pasteurisation ........................................................................................... 40
3.2.4 Inoculation ................................................................................................ 41
3.2.5 Incubation et fructification ....................................................................... 41
3.3 Stratégie poursuivie ................................................................................... 42
3.4 Paramètres étudiés ..................................................................................... 43
3.4.1 Facteur 1 – la proportion optimale de drêches de bière et de pellets dans le
substrat ..................................................................................................... 43
3.4.2 Facteur 2 – le taux de mycélium introduit dans le substrat ...................... 44
3.4.3 Facteur 3 – l’influence du sac .................................................................. 44
3.4.4 Facteur 4 – la proportion optimale de paille bio précoupée dans le substrat
pour un pourcentage de drêches fixé à 40% ............................................. 45
3.4.5 Facteur 5 – la proportion optimale d’écorce de fève de cacao dans le
substrat pour un pourcentage de drêches fixé à 40% ............................... 46
3.4.6 Facteur 6 – la proportion optimale de fibre de coco dans le substrat pour
un pourcentage de drêches fixé à 40% ..................................................... 47
3.4.7 Facteur 7 – l’équilibre optimal entre la fibre de coco et l’écorce de fève de
cacao dans le substrat pour un pourcentage de drêches fixée à 40% ....... 48
3.5 Méthode d’analyses ................................................................................... 49
3.5.1 Encodage des données d’expériences ...................................................... 49
3.5.2 Encodage des résultats ............................................................................. 51
3.6 Résultats obtenus ....................................................................................... 52
3.6.1 Shiitake ..................................................................................................... 52
3.6.1.1 La proportion optimale de drêches de bière et de sciure de bois dans le
substrat ................................................................................................. 52
3.6.1.2 La proportion optimale de drêches de bière et de pellets de bois dans le
substrat ................................................................................................. 54
3.6.1.3 Le pH optimal pour le substrat ............................................................ 56
3.6.1.4 Les 3 meilleures efficiences de cultures pour le Shiitake .................... 57
3.6.2 Nameko .................................................................................................... 58
3.6.2.1 La proportion optimale de drêches de bière et de sciure de bois dans le
substrat ................................................................................................. 58
3.6.2.2 L’humidité optimale du substrat .......................................................... 59
3.6.2.3 Les 3 meilleures efficiences de cultures pour le Nameko.................... 60
Discussion .............................................................................................................. 61
4.1 Shiitake ...................................................................................................... 61
4.1.1 La proportion optimale de drêches de bière et de pellets de bois dans le
substrat ..................................................................................................... 61
4.1.2 Le pH optimal pour le substrat ................................................................. 61
4.1.3 Les 3 meilleures efficiences de cultures pour le Shiitake ........................ 62
4.2 Nameko ..................................................................................................... 63
4.2.1 L’humidité optimale du substrat .............................................................. 63
4.2.2 Les 3 meilleures efficiences de cultures pour le Nameko ........................ 63
4.3 La proportion optimale de drêches de bière et de sciure de bois dans le
substrat pour la culture de Shiitake et de Nameko ...................................................... 64
Conclusions générales et perspectives ........................................................................... 65
Références bibliographiques.......................................................................................... 67
AnnexesPermalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=79739 Potentiel d’utilisation de drêche, de fibre de coco et d’écorce de fève de cacao comme substrat pour la culture de champignons saprophytes destinés à l’alimentation [TFE / Mémoire] / Maurine Raskin, Auteur ; Gaëtane Maernoudt, Directeur de publication, rédacteur en chef . - Montignies-sur-Sambre : Helha. Agronomie, 2019.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : Agronomie AIBT le champignon de Bruxelles champignons saprophytes Index. décimale : TFE AIBT TFE Agro-industries et biotechnologies Résumé : Ce travail de fin d’études s’inscrit dans la continuité de mon stage, qui s’est déroulé durant quatre mois, au sein de la champignonnière « le Champignon de Bruxelles ». Cette étude aborde la réutilisation de coproduits organiques d’origine urbaine comme ingrédients entrant dans la composition de substrats destinés à la culture de champignons saprophytes comestibles.
L’objectif poursuivi est d’évaluer le potentiel d’utilisation de drêches de bière, de fibres de coco et d’écorces de fèves de cacao comme matières premières entrant dans
l’élaboration de ces substrats. Les recherches ont été menées sur six espèces de champignons basidiomycètes (Lentinula edodes, Pholiota nameko, Grifola frondosa,
Pleurotus eryngii, Pleurotus ostreatus, Agrocybe aegerita) cultivées par la coopérative « le Champignon de Bruxelles ».
La stratégie menée consistait à déterminer les différents paramètres pouvant influer la croissance des champignons, de préparer et traiter les substrats avant de les mettre en culture, puis de mesurer les rendements des récoltes afin de mettre en évidence les paramètres les plus probants.
Ce travail a permis de confirmer le succès des substrats à base de drêches de bières et de pellets de bois, qui s’avèrent tout à fait adaptés à la culture de champignons saprophytes. En effet, leur emploi permet une efficience de culture qui dépasse généralement l’efficience obtenue par des substrats élaborés à partir de recettes « traditionnelles ». En ce qui concerne l’utilisation de fibres de coco et d’écorces de fèves de cacao, il est encore trop tôt pour se prononcer étant donné que les substrats concernés sont toujours à l’étude.Note de contenu : Table des matières
Remerciements
Table des matières
Présentation du lieu de stage ........................................................................................... 7
Le Champignon de Bruxelles ....................................................................................... 7
Evolution de la recherche depuis les débuts de la coopérative ..................................... 9
Introduction ................................................................................................................... 11
Contexte .................................................................................................................. 12
1.1 L’agronomie urbaine ou la pratique agricole en ville ............................... 12
1.2 L’économie circulaire ............................................................................... 14
1.3 La place des champignons dans un système alimentaire durable ............. 19
1.4 Les champignons ....................................................................................... 20
1.4.1 Le règne des Fungi ................................................................................... 20
1.4.1.1 Généralités ........................................................................................... 20
1.4.1.2 Reproduction ........................................................................................ 21
1.4.1.3 Ecologie ............................................................................................... 22
1.4.2 Les Basidiomycètes .................................................................................. 23
1.4.2.1 Généralités ........................................................................................... 23
1.4.2.2 Croissance ............................................................................................ 24
1.4.2.3 Reproduction ........................................................................................ 25
1.5 La culture des Fungi .................................................................................. 27
1.5.1 Les champignons à l’accent bruxellois .................................................... 31
1.5.1.1 Shiitake (Lentinula edodes) ................................................................. 32
1.5.1.2 Nameko (Pholiota nameko) ................................................................. 32
1.5.1.3 Maitake (Grifola frondosa) .................................................................. 32
1.5.1.4 Eryngii (Pleurotus eryngii) .................................................................. 33
1.5.1.5 Pioppino (Agrocybe aegerita) .............................................................. 33
1.5.1.6 Pleurote huître (Pleurotus ostreatus) .................................................... 33
Objectifs de la recherche ........................................................................................ 34
Matériel et méthode ................................................................................................ 35
3.1 Mode « TEST » ......................................................................................... 36
3.1.1 L’objectif du mode « TEST » .................................................................. 36
3.1.2 Préparation des sacs de substrats .............................................................. 36
3.1.3 Pasteurisation ........................................................................................... 37
3.1.4 Inoculation ................................................................................................ 38
3.1.5 Incubation ................................................................................................. 38
3.1.6 Fructification ............................................................................................ 39
3.2 Mode PROD .............................................................................................. 40
3.2.1 L’objectif du mode « PROD » ................................................................. 40
3.2.2 Préparation des sacs de substrats .............................................................. 40
3.2.3 Pasteurisation ........................................................................................... 40
3.2.4 Inoculation ................................................................................................ 41
3.2.5 Incubation et fructification ....................................................................... 41
3.3 Stratégie poursuivie ................................................................................... 42
3.4 Paramètres étudiés ..................................................................................... 43
3.4.1 Facteur 1 – la proportion optimale de drêches de bière et de pellets dans le
substrat ..................................................................................................... 43
3.4.2 Facteur 2 – le taux de mycélium introduit dans le substrat ...................... 44
3.4.3 Facteur 3 – l’influence du sac .................................................................. 44
3.4.4 Facteur 4 – la proportion optimale de paille bio précoupée dans le substrat
pour un pourcentage de drêches fixé à 40% ............................................. 45
3.4.5 Facteur 5 – la proportion optimale d’écorce de fève de cacao dans le
substrat pour un pourcentage de drêches fixé à 40% ............................... 46
3.4.6 Facteur 6 – la proportion optimale de fibre de coco dans le substrat pour
un pourcentage de drêches fixé à 40% ..................................................... 47
3.4.7 Facteur 7 – l’équilibre optimal entre la fibre de coco et l’écorce de fève de
cacao dans le substrat pour un pourcentage de drêches fixée à 40% ....... 48
3.5 Méthode d’analyses ................................................................................... 49
3.5.1 Encodage des données d’expériences ...................................................... 49
3.5.2 Encodage des résultats ............................................................................. 51
3.6 Résultats obtenus ....................................................................................... 52
3.6.1 Shiitake ..................................................................................................... 52
3.6.1.1 La proportion optimale de drêches de bière et de sciure de bois dans le
substrat ................................................................................................. 52
3.6.1.2 La proportion optimale de drêches de bière et de pellets de bois dans le
substrat ................................................................................................. 54
3.6.1.3 Le pH optimal pour le substrat ............................................................ 56
3.6.1.4 Les 3 meilleures efficiences de cultures pour le Shiitake .................... 57
3.6.2 Nameko .................................................................................................... 58
3.6.2.1 La proportion optimale de drêches de bière et de sciure de bois dans le
substrat ................................................................................................. 58
3.6.2.2 L’humidité optimale du substrat .......................................................... 59
3.6.2.3 Les 3 meilleures efficiences de cultures pour le Nameko.................... 60
Discussion .............................................................................................................. 61
4.1 Shiitake ...................................................................................................... 61
4.1.1 La proportion optimale de drêches de bière et de pellets de bois dans le
substrat ..................................................................................................... 61
4.1.2 Le pH optimal pour le substrat ................................................................. 61
4.1.3 Les 3 meilleures efficiences de cultures pour le Shiitake ........................ 62
4.2 Nameko ..................................................................................................... 63
4.2.1 L’humidité optimale du substrat .............................................................. 63
4.2.2 Les 3 meilleures efficiences de cultures pour le Nameko ........................ 63
4.3 La proportion optimale de drêches de bière et de sciure de bois dans le
substrat pour la culture de Shiitake et de Nameko ...................................................... 64
Conclusions générales et perspectives ........................................................................... 65
Références bibliographiques.......................................................................................... 67
AnnexesPermalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=79739 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Optimisation et mise en place de méthodes de caractérisation génétique d'Apis mellifera (Abeille mellifère) / Benjamin Wagner
Titre : Optimisation et mise en place de méthodes de caractérisation génétique d'Apis mellifera (Abeille mellifère) Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Benjamin Wagner, Auteur Editeur : Montignies-sur-Sambre : Helha. Agronomie Année de publication : 2019 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : Agronomie AIBT CRA-W d'Apis mellifera Abeille mellifère Index. décimale : TFE AIBT TFE Agro-industries et biotechnologies Résumé : Le 1er Janvier 2017, le Centre Wallon de Recherches Agronomiques de Gembloux (CRA-W) se lance dans le projet PolBEES, une des sections de ce projet se consacre à la caractérisation génétique du matériel biologique d’abeilles. La différenciation phénotypique des abeilles étant fort difficile, la possibilité de caractériser l’ADN maternel et nucléaire est de grande importance pour les apiculteurs d’Europe.
Ce travail a été réalisé au sein du laboratoire de biologie moléculaire de l’unité traçabilité et authentification du Département valorisation des productions agricoles. Il a pour objectif d’optimiser les méthodes d’analyse actuellement employées et de mettre en place une nouvelle méthode de caractérisation d’ADN nucléaire. Ceci implique de tester et comparer plusieurs kits d’extraction d’ADN et d’optimiser toutes les manipulations nécessaires à l’analyse de l’ADN mitochondrial des abeilles. Le but final de cette analyse est de déterminer la lignée d’une ruche (tant la lignée maternelle que paternelle). Pour ce faire, il est nécessaire de mettre en place une méthode caractérisant non plus uniquement l’ADN mitochondrial, mais également l’ADN nucléaire des abeilles. Cette méthode se base sur l’amplification de séquence contenant des marqueurs génétiques appelés microsatellites par la PCR, permettant ainsi de différencier les abeilles par leur ADN nucléaire.Note de contenu : PRÉSENTATION DU LIEU DE STAGE ...................................................................................................... 5
INTRODUCTION ............................................................................................................................... 7
1. ÉTAT DE L’ART ........................................................................................................................ 9
1.1. Les abeilles ................................................................................................................... 9
1.2. L’ADN mitochondrial (ADNmt) .................................................................................... 11
1.3. Les marqueurs génétiques ........................................................................................ 12
1.4. Les microsatellites. .................................................................................................... 12
2. OBJECTIFS DE L’ÉTUDE ............................................................................................................ 15
3. MATÉRIEL ET MÉTHODES ........................................................................................................ 16
3.1. Nettoyage et décontamination ................................................................................. 16
3.2. Réception et préparation des échantillons ............................................................... 16
3.3. Techniques d’extraction ............................................................................................ 18
3.4. Mesure de la quantité et de la qualité de l’ADN ....................................................... 21
3.5. Analyse PCR ............................................................................................................... 21
3.6. Digestion enzymatique .............................................................................................. 30
3.7. L’électrophorèse sur gel d’agarose ........................................................................... 31
3.8. QIAxcel ....................................................................................................................... 32
4. RÉSULTATS ET DISCUSSION ...................................................................................................... 33
4.1. Comparaison de kits d’extraction .............................................................................. 33
4.2. ADN mitochondrial .................................................................................................... 39
4.3. Microsatellites ........................................................................................................... 44
CONCLUSION GÉNÉRALE ET PERSPECTIVES .......................................................................................... 48
5. TABLE DES ILLUSTRATIONS ...................................................................................................... 50
6. TABLE DES TABLEAUX ............................................................................................................. 51
BIBLIOGRAPHIE ............................................................................................................................. 52
ANNEXES ..................................................................................................................................... 55Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=79732 Optimisation et mise en place de méthodes de caractérisation génétique d'Apis mellifera (Abeille mellifère) [TFE / Mémoire] / Benjamin Wagner, Auteur . - Montignies-sur-Sambre : Helha. Agronomie, 2019.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : Agronomie AIBT CRA-W d'Apis mellifera Abeille mellifère Index. décimale : TFE AIBT TFE Agro-industries et biotechnologies Résumé : Le 1er Janvier 2017, le Centre Wallon de Recherches Agronomiques de Gembloux (CRA-W) se lance dans le projet PolBEES, une des sections de ce projet se consacre à la caractérisation génétique du matériel biologique d’abeilles. La différenciation phénotypique des abeilles étant fort difficile, la possibilité de caractériser l’ADN maternel et nucléaire est de grande importance pour les apiculteurs d’Europe.
Ce travail a été réalisé au sein du laboratoire de biologie moléculaire de l’unité traçabilité et authentification du Département valorisation des productions agricoles. Il a pour objectif d’optimiser les méthodes d’analyse actuellement employées et de mettre en place une nouvelle méthode de caractérisation d’ADN nucléaire. Ceci implique de tester et comparer plusieurs kits d’extraction d’ADN et d’optimiser toutes les manipulations nécessaires à l’analyse de l’ADN mitochondrial des abeilles. Le but final de cette analyse est de déterminer la lignée d’une ruche (tant la lignée maternelle que paternelle). Pour ce faire, il est nécessaire de mettre en place une méthode caractérisant non plus uniquement l’ADN mitochondrial, mais également l’ADN nucléaire des abeilles. Cette méthode se base sur l’amplification de séquence contenant des marqueurs génétiques appelés microsatellites par la PCR, permettant ainsi de différencier les abeilles par leur ADN nucléaire.Note de contenu : PRÉSENTATION DU LIEU DE STAGE ...................................................................................................... 5
INTRODUCTION ............................................................................................................................... 7
1. ÉTAT DE L’ART ........................................................................................................................ 9
1.1. Les abeilles ................................................................................................................... 9
1.2. L’ADN mitochondrial (ADNmt) .................................................................................... 11
1.3. Les marqueurs génétiques ........................................................................................ 12
1.4. Les microsatellites. .................................................................................................... 12
2. OBJECTIFS DE L’ÉTUDE ............................................................................................................ 15
3. MATÉRIEL ET MÉTHODES ........................................................................................................ 16
3.1. Nettoyage et décontamination ................................................................................. 16
3.2. Réception et préparation des échantillons ............................................................... 16
3.3. Techniques d’extraction ............................................................................................ 18
3.4. Mesure de la quantité et de la qualité de l’ADN ....................................................... 21
3.5. Analyse PCR ............................................................................................................... 21
3.6. Digestion enzymatique .............................................................................................. 30
3.7. L’électrophorèse sur gel d’agarose ........................................................................... 31
3.8. QIAxcel ....................................................................................................................... 32
4. RÉSULTATS ET DISCUSSION ...................................................................................................... 33
4.1. Comparaison de kits d’extraction .............................................................................. 33
4.2. ADN mitochondrial .................................................................................................... 39
4.3. Microsatellites ........................................................................................................... 44
CONCLUSION GÉNÉRALE ET PERSPECTIVES .......................................................................................... 48
5. TABLE DES ILLUSTRATIONS ...................................................................................................... 50
6. TABLE DES TABLEAUX ............................................................................................................. 51
BIBLIOGRAPHIE ............................................................................................................................. 52
ANNEXES ..................................................................................................................................... 55Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=79732 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Vérification et amélioration du système de maîtrise de la contamination par acrylamide / Cédric Van Bever
Titre : Vérification et amélioration du système de maîtrise de la contamination par acrylamide Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Cédric Van Bever, Auteur ; Myriam Kockerols, Directeur de publication, rédacteur en chef Editeur : Montignies-sur-Sambre : Helha. Agronomie Année de publication : 2019 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : Agronomie AIBT Nutradia Acrylamide ALIMENTATION // SANTÉ Index. décimale : TFE AIBT TFE Agro-industries et biotechnologies Résumé : D’après des recherches récentes, l’acrylamide un composé organique qui est pourtant probablement présent dans l’alimentation humaine depuis que celui-ci cuit sa nourriture, a été classé comme cancérogène probable pour l’homme. Il se développe dans des aliments riches en amidon, suite à une réaction chimique qui se déroule lors de processus de cuisson à haute température. La problématique posée chez diabeticom S.A., une entreprise fabricant des chips en utilisant une technique de cuisson à haute température, est de proposer une gamme de produit présentant un taux d’acrylamide en dessous de la norme légale et le plus bas possible.
Pour répondre à la problématique, une série d’analyses et de tests ont été effectués, dans le cadre d’une étude HACCP (Hazard Analysis Critical Control Point), dans le but de mettre en place des mesures de maîtrise. Les résultats obtenus de ces analyses ont permis de montrer que la société respecte la réglementation mise en place concernant les acrylamides pour la plus-part des produits fabriqués, les tests qu’en à eux ont permis d’isoler une série de paramètres qui pourrait permettre une baisse du taux acrylamide pour un mélange en particulier.
A partir de ces résultats, l’équipe mise en place dans le cadre de l’étude HACCP aura la possibilité de mettre en place les mesures permettant la maîtrise du danger acrylamide pour chaque mélange et de réaliser d’autres tests afin d’améliorer le niveau d’acrylamide dans leurs chips.Note de contenu : Présentation de l’entreprise ........................................................................................................................... 8
Introduction générale ................................................................................................................................... 10
Partie théorique. ........................................................................................................................................... 12
1. Qu’est-ce que l’acrylamide ? ............................................................................................................. 12
1.1. Définition .................................................................................................................................... 12
1.2. Facteurs de développement ....................................................................................................... 12
1.3. Conséquences sur la santé.......................................................................................................... 13
1.4. Réglementation & limites ........................................................................................................... 14
2. Système HACCP ................................................................................................................................. 15
2.1. Définition .................................................................................................................................... 15
2.2. Principes ...................................................................................................................................... 15
2.2.1. Principe 1 : Procéder à une analyse des risques ................................................................. 15
2.2.2. Principe 2 : déterminer les points critiques pour la maîtrise (CCP) .................................... 16
2.2.3. Principe 3 : Fixer le ou les seuil(s) critique(s) ...................................................................... 17
2.2.4. Principe 4 : Mettre en place un système de surveillance permettant de maîtriser les CCP 17
2.2.5. Principe 5 : Déterminer les mesures correctives à prendre lorsque la surveillance révèle qu’un CCP donné n’est pas maîtrisé ................................................................................................. 18
2.2.6. Principe 6 : Appliquer des procédures de vérification afin de confirmer que le système HACCP fonctionne efficacement ....................................................................................................... 18
2.2.7. Principe 7 : Constituer un dossier dans lequel figureront toutes les procédures et tous les relevés concernant ces principes et leur mise en application .......................................................... 19
2.3. Etapes .......................................................................................................................................... 19
2.3.1. Etape 1 : Constituer l’équipe HACCP ................................................................................... 19
2.3.2. Etape 2 : Décrire le produit ................................................................................................. 20
2.3.3. Etape 3 : Déterminer son utilisation prévue ....................................................................... 20
2.3.4. Etape 4 : Etablir un diagramme des opérations .................................................................. 20
2.3.5. Etape 5 : Confirmer sur place le diagramme des opérations .............................................. 20
3. Objectif et stratégie .......................................................................................................................... 21
Partie pratique .............................................................................................................................................. 22
1. Procédure HACCP de l’étape 1 à l’étape 5 ........................................................................................ 22
1.1. Etape 1 : Constituer l’équipe HACCP .......................................................................................... 22
1.2. Etape 2 : Décrire le produit ......................................................................................................... 23
1.3. Etape 3 : Déterminer son utilisation prévue ............................................................................... 23
1.4. Etape 4 : Etablir un diagramme des opérations ......................................................................... 24
1.5. Etape 5 : Confirmer sur place le diagramme des opérations ..................................................... 26
2. Procédure HACCP étape 6 : Enumérer tous les dangers potentiels associés à chacune des étapes, effectuer une analyse des risques et définir les mesures permettant de maîtriser les dangers ainsi identifiés .................................................................................................................................................... 26
2.1. Analyses d’humidité, paramètres de cuisson et résultats acrylamides ..................................... 27
2.1.1. Analyse sur l’humidification du pellet/grits ........................................................................ 27
2.1.1.1. Matériel ......................................................................................................................... 27
2.1.1.2. Méthode ........................................................................................................................ 27
2.1.1.3. Résultats ........................................................................................................................ 28
2.1.2. Estimation des limites d’humidification du pellet/grits pour chaque mélange étudiée et récolte de leurs paramètres de cuisson ............................................................................................ 28
2.1.3. Résultats des analyses acrylamide des années précédentes .............................................. 30
2.2. Amélioration d’un mélange dans le but de faire baisser le taux d’acrylamide .......................... 31
2.2.1. Matériel ............................................................................................................................... 32
2.2.2. Méthode .............................................................................................................................. 32
2.2.3. Résultats .............................................................................................................................. 34
2.2.3.1. Echantillon référence prélevé sur ligne......................................................................... 34
2.2.3.2. Test à 0% d’eau.............................................................................................................. 34
2.2.3.3. Test à 1% d’eau.............................................................................................................. 35
2.2.3.4. Test à 2% d’eau.............................................................................................................. 35
2.2.3.5. Test à 3% d’eau.............................................................................................................. 35
2.2.4. Résultats des analyses acrylamide. ..................................................................................... 36
3. Procédure HACCP de l’étape 7 à l’étape 12 ...................................................................................... 37
3.1. Etape 7 : Déterminer si la contamination, par acrylamide, est un point critique de contrôle. . 37
3.2. Etape 8 : Fixer des seuils critiques pour ce CCP. ......................................................................... 38
3.3. Etape 9 : Mettre en place un système de surveillance pour ce CCP. ......................................... 38
3.4. Etape 10 : Prendre des mesures correctives. ............................................................................. 38
3.5. Etape 11 : Instaurer des procédures de vérification. ................................................................. 38
3.6. Etape 12 : Constituer des dossiers et tenir des registres. .......................................................... 38
Conclusion générale (et perspectives) .......................................................................................................... 39
Glossaire ........................................................................................................................................................ 40
1. Définitions ......................................................................................................................................... 40
Bibliographie ................................................................................................................................................. 41
Annexes ......................................................................................................................................................... 41
Annexe 1 : annexe 1 de la règlement (UE) 2017/2158 de la commission du 20 novembre 2017 établissant des mesures d'atténuation et des teneurs de référence pour la réduction de la présence d'acrylamide dans les denrées alimentaires. ............................................................................................ 43
Annexe 2 : annexe 2 de la règlement (UE) 2017/2158 de la commission du 20 novembre 2017 établissant des mesures d'atténuation et des teneurs de référence pour la réduction de la présence d'acrylamide dans les denrées alimentaires ............................................................................................. 59
Annexe 3 : arbre de décision pour l’évaluation d’un CCP de Diabeticom S.A. ......................................... 62
Annexe 4 : mode d’emploi dessiccateur PMB 53. .................................................................................... 63
Annexe 5 : tableau 1 : Données humidification de la ligne de production n° 1. ...................................... 64
Annexe 6 : tableau 2 : Données humidification de la ligne de production n° 2. ...................................... 70
Annexe 7 : Procédure de mise en marche et d’arrêt. ............................................................................... 72
Annexe 8 : tableau 7 paramètres échantillon de référence.de référence. .............................................. 76
Annexe 9 : tableau 8 de test paramètres cuisson mélange 0% d’eau. ..................................................... 77
Annexe 10 : tableau 9 de test paramètres cuisson mélange 1% d’eau. ................................................... 80
Annexe 11 : tableau 10 de test paramètres cuisson mélange 2% d’eau. ................................................. 83
Annexe 12 : tableau 11 de test paramètres cuisson mélange 3% d’eau. ................................................. 90Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=79731 Vérification et amélioration du système de maîtrise de la contamination par acrylamide [TFE / Mémoire] / Cédric Van Bever, Auteur ; Myriam Kockerols, Directeur de publication, rédacteur en chef . - Montignies-sur-Sambre : Helha. Agronomie, 2019.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : Agronomie AIBT Nutradia Acrylamide ALIMENTATION // SANTÉ Index. décimale : TFE AIBT TFE Agro-industries et biotechnologies Résumé : D’après des recherches récentes, l’acrylamide un composé organique qui est pourtant probablement présent dans l’alimentation humaine depuis que celui-ci cuit sa nourriture, a été classé comme cancérogène probable pour l’homme. Il se développe dans des aliments riches en amidon, suite à une réaction chimique qui se déroule lors de processus de cuisson à haute température. La problématique posée chez diabeticom S.A., une entreprise fabricant des chips en utilisant une technique de cuisson à haute température, est de proposer une gamme de produit présentant un taux d’acrylamide en dessous de la norme légale et le plus bas possible.
Pour répondre à la problématique, une série d’analyses et de tests ont été effectués, dans le cadre d’une étude HACCP (Hazard Analysis Critical Control Point), dans le but de mettre en place des mesures de maîtrise. Les résultats obtenus de ces analyses ont permis de montrer que la société respecte la réglementation mise en place concernant les acrylamides pour la plus-part des produits fabriqués, les tests qu’en à eux ont permis d’isoler une série de paramètres qui pourrait permettre une baisse du taux acrylamide pour un mélange en particulier.
A partir de ces résultats, l’équipe mise en place dans le cadre de l’étude HACCP aura la possibilité de mettre en place les mesures permettant la maîtrise du danger acrylamide pour chaque mélange et de réaliser d’autres tests afin d’améliorer le niveau d’acrylamide dans leurs chips.Note de contenu : Présentation de l’entreprise ........................................................................................................................... 8
Introduction générale ................................................................................................................................... 10
Partie théorique. ........................................................................................................................................... 12
1. Qu’est-ce que l’acrylamide ? ............................................................................................................. 12
1.1. Définition .................................................................................................................................... 12
1.2. Facteurs de développement ....................................................................................................... 12
1.3. Conséquences sur la santé.......................................................................................................... 13
1.4. Réglementation & limites ........................................................................................................... 14
2. Système HACCP ................................................................................................................................. 15
2.1. Définition .................................................................................................................................... 15
2.2. Principes ...................................................................................................................................... 15
2.2.1. Principe 1 : Procéder à une analyse des risques ................................................................. 15
2.2.2. Principe 2 : déterminer les points critiques pour la maîtrise (CCP) .................................... 16
2.2.3. Principe 3 : Fixer le ou les seuil(s) critique(s) ...................................................................... 17
2.2.4. Principe 4 : Mettre en place un système de surveillance permettant de maîtriser les CCP 17
2.2.5. Principe 5 : Déterminer les mesures correctives à prendre lorsque la surveillance révèle qu’un CCP donné n’est pas maîtrisé ................................................................................................. 18
2.2.6. Principe 6 : Appliquer des procédures de vérification afin de confirmer que le système HACCP fonctionne efficacement ....................................................................................................... 18
2.2.7. Principe 7 : Constituer un dossier dans lequel figureront toutes les procédures et tous les relevés concernant ces principes et leur mise en application .......................................................... 19
2.3. Etapes .......................................................................................................................................... 19
2.3.1. Etape 1 : Constituer l’équipe HACCP ................................................................................... 19
2.3.2. Etape 2 : Décrire le produit ................................................................................................. 20
2.3.3. Etape 3 : Déterminer son utilisation prévue ....................................................................... 20
2.3.4. Etape 4 : Etablir un diagramme des opérations .................................................................. 20
2.3.5. Etape 5 : Confirmer sur place le diagramme des opérations .............................................. 20
3. Objectif et stratégie .......................................................................................................................... 21
Partie pratique .............................................................................................................................................. 22
1. Procédure HACCP de l’étape 1 à l’étape 5 ........................................................................................ 22
1.1. Etape 1 : Constituer l’équipe HACCP .......................................................................................... 22
1.2. Etape 2 : Décrire le produit ......................................................................................................... 23
1.3. Etape 3 : Déterminer son utilisation prévue ............................................................................... 23
1.4. Etape 4 : Etablir un diagramme des opérations ......................................................................... 24
1.5. Etape 5 : Confirmer sur place le diagramme des opérations ..................................................... 26
2. Procédure HACCP étape 6 : Enumérer tous les dangers potentiels associés à chacune des étapes, effectuer une analyse des risques et définir les mesures permettant de maîtriser les dangers ainsi identifiés .................................................................................................................................................... 26
2.1. Analyses d’humidité, paramètres de cuisson et résultats acrylamides ..................................... 27
2.1.1. Analyse sur l’humidification du pellet/grits ........................................................................ 27
2.1.1.1. Matériel ......................................................................................................................... 27
2.1.1.2. Méthode ........................................................................................................................ 27
2.1.1.3. Résultats ........................................................................................................................ 28
2.1.2. Estimation des limites d’humidification du pellet/grits pour chaque mélange étudiée et récolte de leurs paramètres de cuisson ............................................................................................ 28
2.1.3. Résultats des analyses acrylamide des années précédentes .............................................. 30
2.2. Amélioration d’un mélange dans le but de faire baisser le taux d’acrylamide .......................... 31
2.2.1. Matériel ............................................................................................................................... 32
2.2.2. Méthode .............................................................................................................................. 32
2.2.3. Résultats .............................................................................................................................. 34
2.2.3.1. Echantillon référence prélevé sur ligne......................................................................... 34
2.2.3.2. Test à 0% d’eau.............................................................................................................. 34
2.2.3.3. Test à 1% d’eau.............................................................................................................. 35
2.2.3.4. Test à 2% d’eau.............................................................................................................. 35
2.2.3.5. Test à 3% d’eau.............................................................................................................. 35
2.2.4. Résultats des analyses acrylamide. ..................................................................................... 36
3. Procédure HACCP de l’étape 7 à l’étape 12 ...................................................................................... 37
3.1. Etape 7 : Déterminer si la contamination, par acrylamide, est un point critique de contrôle. . 37
3.2. Etape 8 : Fixer des seuils critiques pour ce CCP. ......................................................................... 38
3.3. Etape 9 : Mettre en place un système de surveillance pour ce CCP. ......................................... 38
3.4. Etape 10 : Prendre des mesures correctives. ............................................................................. 38
3.5. Etape 11 : Instaurer des procédures de vérification. ................................................................. 38
3.6. Etape 12 : Constituer des dossiers et tenir des registres. .......................................................... 38
Conclusion générale (et perspectives) .......................................................................................................... 39
Glossaire ........................................................................................................................................................ 40
1. Définitions ......................................................................................................................................... 40
Bibliographie ................................................................................................................................................. 41
Annexes ......................................................................................................................................................... 41
Annexe 1 : annexe 1 de la règlement (UE) 2017/2158 de la commission du 20 novembre 2017 établissant des mesures d'atténuation et des teneurs de référence pour la réduction de la présence d'acrylamide dans les denrées alimentaires. ............................................................................................ 43
Annexe 2 : annexe 2 de la règlement (UE) 2017/2158 de la commission du 20 novembre 2017 établissant des mesures d'atténuation et des teneurs de référence pour la réduction de la présence d'acrylamide dans les denrées alimentaires ............................................................................................. 59
Annexe 3 : arbre de décision pour l’évaluation d’un CCP de Diabeticom S.A. ......................................... 62
Annexe 4 : mode d’emploi dessiccateur PMB 53. .................................................................................... 63
Annexe 5 : tableau 1 : Données humidification de la ligne de production n° 1. ...................................... 64
Annexe 6 : tableau 2 : Données humidification de la ligne de production n° 2. ...................................... 70
Annexe 7 : Procédure de mise en marche et d’arrêt. ............................................................................... 72
Annexe 8 : tableau 7 paramètres échantillon de référence.de référence. .............................................. 76
Annexe 9 : tableau 8 de test paramètres cuisson mélange 0% d’eau. ..................................................... 77
Annexe 10 : tableau 9 de test paramètres cuisson mélange 1% d’eau. ................................................... 80
Annexe 11 : tableau 10 de test paramètres cuisson mélange 2% d’eau. ................................................. 83
Annexe 12 : tableau 11 de test paramètres cuisson mélange 3% d’eau. ................................................. 90Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=79731 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Screening et caractérisation de virus de Fusarium spp. / Bryan Stiens
PermalinkAdaptation du système HACCP actuel de la brasserie L a Binchoise à son nouveau site de production / Baptiste Sion
PermalinkGestion de la qualité au laboratoire de Villers et recherche d’alternatives au dosage du chlore / Anne Quataert
PermalinkAmélioration des flux entrants et sortants de la zone de tranchage afin d’éviter les contaminations croisées par Listeria monocytogenes / Alessandra Parisi
PermalinkEvaluation de méthodes pour la détection d’organismes génétiquement modifiés / Nawal Agag
PermalinkLa bière de A à Z à la Manufacture Urbaine : Matières premières, fabrication, analyses / Romane Grégoire
PermalinkSuivi et quantification de l’inoculum aérien de Phytophthora infestans à l’aide de capteurs de spores / Marie Goormans
PermalinkImpact d’une structure agroforestière sur les propriétés physico-chimiques et biologiques d’un sol agricole / Brieuc Goffaux
PermalinkEtude des voies de sénescence induites lors de la sous-expression de UGT72A2 chez le peuplier / Rémy Demer
PermalinkExpérimentation de techniques intégrées de gestion et de restauration de la fertilité des sols au Sénégal. / Alexia Genco
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