Centre de Documentation Campus Montignies
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3 résultat(s) recherche sur le mot-clé 'ostéoblastes'
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Caractérisation de pools de cellules souches dentaires en vue du développement de nouvelles procédures de régénération de la pulpe dentaire / SOPHIE LIGOT
Titre : Caractérisation de pools de cellules souches dentaires en vue du développement de nouvelles procédures de régénération de la pulpe dentaire Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : SOPHIE LIGOT, Auteur Année de publication : 2016 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale Louvain Drug Research Institute LDRI Woluwe-Saint-Lambert dent cellules souches émail dentine pulpe papille carie DPSCs SCAPs culture cellulaire pools FACS RT-PCR chondroblastes neurodifférenciation ostéoblastes Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Remerciements
Présentation du lieu de stage....................................................................................................8
Introduction.............................................................................................................................10
Contexte général......................................................................................................................12
1 La dent ............................................................................................................................... 12
1.1 Généralités ................................................................................................................. 12
1.1.1 Structure ............................................................................................................. 12
1.1.2 Développement .................................................................................................. 12
1.1.3 Eruption .............................................................................................................. 13
1.2 L'émail ........................................................................................................................ 15
1.3 La dentine .................................................................................................................. 16
1.4 La pulpe ...................................................................................................................... 17
1.5 La papille .................................................................................................................... 19
2 La carie .............................................................................................................................. 20
2.1 Généralités ................................................................................................................. 20
2.2 Pulpite et nécrose pulpaire ........................................................................................ 23
2.3 Traitement ................................................................................................................. 26
3 Les cellules souches ........................................................................................................... 27
3.1 Les cellules souches en général ................................................................................. 27
3.2 Les cellules souches dentaires ................................................................................... 29
3.2.1 DPSCs .................................................................................................................. 29
3.2.2 SCAPs .................................................................................................................. 30
3.2.3 Autres types de cellules souches dentaires ....................................................... 30
Objectifs...................................................................................................................................32
Matériels et méthodes.............................................................................................................34
1 Recueil et congélation des DPSCs et SCAPs ...................................................................... 34
2 Décongélation et culture cellulaire ................................................................................... 34
2.1 Matériels et réactifs ................................................................................................... 34
2.2 Méthode .................................................................................................................... 35
3 Comptage et passage des cellules..................................................................................... 35
3.1 Matériels et réactifs ................................................................................................... 35
3.2 Méthode .................................................................................................................... 36
4 Réalisation des pools de cellules ....................................................................................... 37
4.1 Matériels et réactifs ................................................................................................... 37
4.2 Méthode .................................................................................................................... 38
5 Congélation des pools ....................................................................................................... 38
5.1 Matériels et réactifs ................................................................................................... 38
5.2 Méthode .................................................................................................................... 38
6 FACS ................................................................................................................................... 39
6.1 Point théorique .......................................................................................................... 39
6.2 Matériels et réactifs ................................................................................................... 41
6.3 Méthode .................................................................................................................... 41
7 RT-PCR ............................................................................................................................... 42
7.1 Point théorique .......................................................................................................... 42
7.2 Matériels et réactifs ................................................................................................... 45
7.3 Méthode .................................................................................................................... 46
7.3.1 Extraction d'ARN ................................................................................................. 46
7.3.2 Préparation des cDNA : ...................................................................................... 47
7.3.3 RT-PCR : .............................................................................................................. 47
8 Différenciation en chondroblastes .................................................................................... 48
8.1 Matériels et réactifs ................................................................................................... 48
8.2 Méthode .................................................................................................................... 49
8.3 Enrobage, réalisation de coupes histologiques et colorations : ................................ 49
9 Neurodifférenciation ......................................................................................................... 50
9.1 Matériels et réactifs ................................................................................................... 50
9.2 Méthode .................................................................................................................... 51
9.3 Marquage panNeuroFilament : ................................................................................. 51
10 Différenciation en ostéoblastes ........................................................................................ 51
10.1 Matériels et réactifs ................................................................................................... 51
10.2 Méthode .................................................................................................................... 52
10.3 Marquage Alizarin Red : ............................................................................................. 52
Résultats..................................................................................................................................54
1 Recueil et congélation des DPSCs et SCAPs ...................................................................... 54
2 Réalisation des pools de cellules ....................................................................................... 54
2.1 DPSCs ......................................................................................................................... 54
2.2 SCAPs .......................................................................................................................... 54
3 Congélation des pools à P3 ............................................................................................... 55
3.1 DPSCs ......................................................................................................................... 55
3.2 SCAPs .......................................................................................................................... 55
4 FACS ................................................................................................................................... 56
4.1 DPSCs à P5 .................................................................................................................. 56
4.2 SCAPs à P5 .................................................................................................................. 56
4.3 DPSCs à P10 ................................................................................................................ 56
4.4 SCAPs à P10 ................................................................................................................ 56
4.5 Comparaison du pool DPSC à P5 et P10 .................................................................... 57
4.6 Comparaison du pool DPSC à P5 et P10 .................................................................... 57
5 RT-PCR ............................................................................................................................... 57
6 Différenciation en chondroblastes .................................................................................... 59
6.1 DPSCs à P5 .................................................................................................................. 59
6.2 SCAPs à P5 .................................................................................................................. 59
7 Neurodifférenciation des DPSCs et SCAPs à P5 ................................................................ 59
8 Différenciation en ostéoblastes ........................................................................................ 60
8.1 DPSCs à P5 .................................................................................................................. 60
8.2 SCAPs à P5 .................................................................................................................. 61
Discussion................................................................................................................................62
1 FACS ................................................................................................................................... 62
2 RT-PCR ............................................................................................................................... 62
3 Différenciation en chondroblastes .................................................................................... 63
4 Neurodifférenciation ......................................................................................................... 63
5 Différenciation en ostéoblastes ........................................................................................ 64
Conclusion................................................................................................................................66
Liste des abréviations...............................................................................................................68
Bibliographie............................................................................................................................70
AnnexesPermalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65680 Caractérisation de pools de cellules souches dentaires en vue du développement de nouvelles procédures de régénération de la pulpe dentaire [TFE / Mémoire] / SOPHIE LIGOT, Auteur . - 2016.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : biologie médicale Louvain Drug Research Institute LDRI Woluwe-Saint-Lambert dent cellules souches émail dentine pulpe papille carie DPSCs SCAPs culture cellulaire pools FACS RT-PCR chondroblastes neurodifférenciation ostéoblastes Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Remerciements
Présentation du lieu de stage....................................................................................................8
Introduction.............................................................................................................................10
Contexte général......................................................................................................................12
1 La dent ............................................................................................................................... 12
1.1 Généralités ................................................................................................................. 12
1.1.1 Structure ............................................................................................................. 12
1.1.2 Développement .................................................................................................. 12
1.1.3 Eruption .............................................................................................................. 13
1.2 L'émail ........................................................................................................................ 15
1.3 La dentine .................................................................................................................. 16
1.4 La pulpe ...................................................................................................................... 17
1.5 La papille .................................................................................................................... 19
2 La carie .............................................................................................................................. 20
2.1 Généralités ................................................................................................................. 20
2.2 Pulpite et nécrose pulpaire ........................................................................................ 23
2.3 Traitement ................................................................................................................. 26
3 Les cellules souches ........................................................................................................... 27
3.1 Les cellules souches en général ................................................................................. 27
3.2 Les cellules souches dentaires ................................................................................... 29
3.2.1 DPSCs .................................................................................................................. 29
3.2.2 SCAPs .................................................................................................................. 30
3.2.3 Autres types de cellules souches dentaires ....................................................... 30
Objectifs...................................................................................................................................32
Matériels et méthodes.............................................................................................................34
1 Recueil et congélation des DPSCs et SCAPs ...................................................................... 34
2 Décongélation et culture cellulaire ................................................................................... 34
2.1 Matériels et réactifs ................................................................................................... 34
2.2 Méthode .................................................................................................................... 35
3 Comptage et passage des cellules..................................................................................... 35
3.1 Matériels et réactifs ................................................................................................... 35
3.2 Méthode .................................................................................................................... 36
4 Réalisation des pools de cellules ....................................................................................... 37
4.1 Matériels et réactifs ................................................................................................... 37
4.2 Méthode .................................................................................................................... 38
5 Congélation des pools ....................................................................................................... 38
5.1 Matériels et réactifs ................................................................................................... 38
5.2 Méthode .................................................................................................................... 38
6 FACS ................................................................................................................................... 39
6.1 Point théorique .......................................................................................................... 39
6.2 Matériels et réactifs ................................................................................................... 41
6.3 Méthode .................................................................................................................... 41
7 RT-PCR ............................................................................................................................... 42
7.1 Point théorique .......................................................................................................... 42
7.2 Matériels et réactifs ................................................................................................... 45
7.3 Méthode .................................................................................................................... 46
7.3.1 Extraction d'ARN ................................................................................................. 46
7.3.2 Préparation des cDNA : ...................................................................................... 47
7.3.3 RT-PCR : .............................................................................................................. 47
8 Différenciation en chondroblastes .................................................................................... 48
8.1 Matériels et réactifs ................................................................................................... 48
8.2 Méthode .................................................................................................................... 49
8.3 Enrobage, réalisation de coupes histologiques et colorations : ................................ 49
9 Neurodifférenciation ......................................................................................................... 50
9.1 Matériels et réactifs ................................................................................................... 50
9.2 Méthode .................................................................................................................... 51
9.3 Marquage panNeuroFilament : ................................................................................. 51
10 Différenciation en ostéoblastes ........................................................................................ 51
10.1 Matériels et réactifs ................................................................................................... 51
10.2 Méthode .................................................................................................................... 52
10.3 Marquage Alizarin Red : ............................................................................................. 52
Résultats..................................................................................................................................54
1 Recueil et congélation des DPSCs et SCAPs ...................................................................... 54
2 Réalisation des pools de cellules ....................................................................................... 54
2.1 DPSCs ......................................................................................................................... 54
2.2 SCAPs .......................................................................................................................... 54
3 Congélation des pools à P3 ............................................................................................... 55
3.1 DPSCs ......................................................................................................................... 55
3.2 SCAPs .......................................................................................................................... 55
4 FACS ................................................................................................................................... 56
4.1 DPSCs à P5 .................................................................................................................. 56
4.2 SCAPs à P5 .................................................................................................................. 56
4.3 DPSCs à P10 ................................................................................................................ 56
4.4 SCAPs à P10 ................................................................................................................ 56
4.5 Comparaison du pool DPSC à P5 et P10 .................................................................... 57
4.6 Comparaison du pool DPSC à P5 et P10 .................................................................... 57
5 RT-PCR ............................................................................................................................... 57
6 Différenciation en chondroblastes .................................................................................... 59
6.1 DPSCs à P5 .................................................................................................................. 59
6.2 SCAPs à P5 .................................................................................................................. 59
7 Neurodifférenciation des DPSCs et SCAPs à P5 ................................................................ 59
8 Différenciation en ostéoblastes ........................................................................................ 60
8.1 DPSCs à P5 .................................................................................................................. 60
8.2 SCAPs à P5 .................................................................................................................. 61
Discussion................................................................................................................................62
1 FACS ................................................................................................................................... 62
2 RT-PCR ............................................................................................................................... 62
3 Différenciation en chondroblastes .................................................................................... 63
4 Neurodifférenciation ......................................................................................................... 63
5 Différenciation en ostéoblastes ........................................................................................ 64
Conclusion................................................................................................................................66
Liste des abréviations...............................................................................................................68
Bibliographie............................................................................................................................70
AnnexesPermalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65680 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Mechanical loading directly regulates the function of osteoblast in multiple ways / Y. Yang in Science & sports, Vol.38 N°8 (décembre 2023)
[article]
Titre : Mechanical loading directly regulates the function of osteoblast in multiple ways Type de document : texte imprimé Auteurs : Y. Yang ; L. Xiao ; Y. Wu ; Y. Xu ; Z. Xia ; S. Wang Année de publication : 2023 Article en page(s) : p. 760-768 Langues : Anglais (eng) Mots-clés : ostéoblastes Résumé : Introduction
Le mouvement et les vibrations sont utilisés pour améliorer la santé osseuse, en fonction de la réponse des cellules osseuses à la charge mécanique (ML). Les ostéoblastes sont des cellules osseuses fonctionnelles qui contrôlent la formation osseuse. Bien que les cellules osseuses soient les plus sensibles à la ML et régulent la fonction des ostéoblastes et des ostéoclastes, il est important de mettre en évidence une action directe de la ML sur les ostéoblastes.
Faits et résultats
Le système de culture des ostéoblastes, qui permet de mieux contrôler la nature de la ML et l’environnement biologique des ostéoblastes, joue un rôle important dans l’étude des mécanismes moléculaires par lesquels la ML agit sur les ostéoblastes. Notre revue décrit les modèles classiques de culture d’ostéoblastes correspondant à la ML provenant des activités quotidiennes et du traitement des vibrations. Nous avons également examiné la structure, la localisation et l’activité des récepteurs mécaniques dans les osteoblastes. ML peut stimuler directement les récepteurs mécaniques en modifiant la structure protéique de la membrane et le potentiel de celle-ci. Le flux de calcium, les signaux Akt, ERK et Rho/ROCK apparaissent après l’activation des récepteurs de force mécanique et régulent la transcription osseuse et la recombinaison cytosquelettique, ce qui influence la sensibilité, la différenciation et la prolifération des ostéoblastes à la force mécanique de la ML.
Conclusion
Ces faits soutiennent que la ML règle la fonction des ostéoblastes indépendamment d’autres facteurs biologiques et nous aident à mieux comprendre la ML dans l’étude des systèmes de culture et des mécanismes moléculaires, ce qui est important pour l’utilisation de la ML comme adjuvant dans le traitement de la santé osseuse.Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=114702
in Science & sports > Vol.38 N°8 (décembre 2023) . - p. 760-768[article] Mechanical loading directly regulates the function of osteoblast in multiple ways [texte imprimé] / Y. Yang ; L. Xiao ; Y. Wu ; Y. Xu ; Z. Xia ; S. Wang . - 2023 . - p. 760-768.
Langues : Anglais (eng)
in Science & sports > Vol.38 N°8 (décembre 2023) . - p. 760-768
Mots-clés : ostéoblastes Résumé : Introduction
Le mouvement et les vibrations sont utilisés pour améliorer la santé osseuse, en fonction de la réponse des cellules osseuses à la charge mécanique (ML). Les ostéoblastes sont des cellules osseuses fonctionnelles qui contrôlent la formation osseuse. Bien que les cellules osseuses soient les plus sensibles à la ML et régulent la fonction des ostéoblastes et des ostéoclastes, il est important de mettre en évidence une action directe de la ML sur les ostéoblastes.
Faits et résultats
Le système de culture des ostéoblastes, qui permet de mieux contrôler la nature de la ML et l’environnement biologique des ostéoblastes, joue un rôle important dans l’étude des mécanismes moléculaires par lesquels la ML agit sur les ostéoblastes. Notre revue décrit les modèles classiques de culture d’ostéoblastes correspondant à la ML provenant des activités quotidiennes et du traitement des vibrations. Nous avons également examiné la structure, la localisation et l’activité des récepteurs mécaniques dans les osteoblastes. ML peut stimuler directement les récepteurs mécaniques en modifiant la structure protéique de la membrane et le potentiel de celle-ci. Le flux de calcium, les signaux Akt, ERK et Rho/ROCK apparaissent après l’activation des récepteurs de force mécanique et régulent la transcription osseuse et la recombinaison cytosquelettique, ce qui influence la sensibilité, la différenciation et la prolifération des ostéoblastes à la force mécanique de la ML.
Conclusion
Ces faits soutiennent que la ML règle la fonction des ostéoblastes indépendamment d’autres facteurs biologiques et nous aident à mieux comprendre la ML dans l’étude des systèmes de culture et des mécanismes moléculaires, ce qui est important pour l’utilisation de la ML comme adjuvant dans le traitement de la santé osseuse.Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=114702 Exemplaires (1)
Cote Support Localisation Section Disponibilité Revue Revue Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Armoires à volets Document exclu du prêt - à consulter sur place
Exclu du prêtMécanismes physiopathologiques impliqués dans le développement des calcifications vasculaires / Lucie Hénaut in Annales de Biologie Clinique, 73/3 (Mai-Juin 2015)
[article]
Titre : Mécanismes physiopathologiques impliqués dans le développement des calcifications vasculaires Type de document : texte imprimé Auteurs : Lucie Hénaut, Auteur ; Romuald Mentaverri, Auteur ; Sophie Liabeuf, Auteur Année de publication : 2015 Article en page(s) : 271-287 Langues : Français (fre) Mots-clés : Calcifications vasculaires cellules musculaires lisses ostéoblastes intima media maladie rénale chronique diabète Résumé : Les calcifications vasculaires (CV) sont le résultat du dépôt pathologique d’une matrice osseuse minéralisée au sein de différentes structures vasculaires. Elles sont retrouvées dans la population générale, associées au vieillissement, mais leur développement est accéléré au cours de différentes maladies comme l’athérosclérose, le diabète, les pathologies inflammatoires, et la maladie rénale chronique. L’étendue et la sévérité des calcifications sont reconnues comme des facteurs de risque majeurs, prédictifs de morbidité et de mortalité cardiovasculaires. Bien que longtemps considérées comme résultant de dépôts passifs de calcium et de phosphates, il est aujourd’hui clairement établi que les CV sont la résultante d’un processus actif, impliquant la transdifférenciation des cellules musculaires lisses en cellules ostéogéniques dans un mécanisme partageant des similarités avec la formation osseuse. Cette revue fait état des connaissances actuelles concernant les modalités de formation des CV et présente les acteurs connus pour moduler ce processus. Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=66399
in Annales de Biologie Clinique > 73/3 (Mai-Juin 2015) . - 271-287[article] Mécanismes physiopathologiques impliqués dans le développement des calcifications vasculaires [texte imprimé] / Lucie Hénaut, Auteur ; Romuald Mentaverri, Auteur ; Sophie Liabeuf, Auteur . - 2015 . - 271-287.
Langues : Français (fre)
in Annales de Biologie Clinique > 73/3 (Mai-Juin 2015) . - 271-287
Mots-clés : Calcifications vasculaires cellules musculaires lisses ostéoblastes intima media maladie rénale chronique diabète Résumé : Les calcifications vasculaires (CV) sont le résultat du dépôt pathologique d’une matrice osseuse minéralisée au sein de différentes structures vasculaires. Elles sont retrouvées dans la population générale, associées au vieillissement, mais leur développement est accéléré au cours de différentes maladies comme l’athérosclérose, le diabète, les pathologies inflammatoires, et la maladie rénale chronique. L’étendue et la sévérité des calcifications sont reconnues comme des facteurs de risque majeurs, prédictifs de morbidité et de mortalité cardiovasculaires. Bien que longtemps considérées comme résultant de dépôts passifs de calcium et de phosphates, il est aujourd’hui clairement établi que les CV sont la résultante d’un processus actif, impliquant la transdifférenciation des cellules musculaires lisses en cellules ostéogéniques dans un mécanisme partageant des similarités avec la formation osseuse. Cette revue fait état des connaissances actuelles concernant les modalités de formation des CV et présente les acteurs connus pour moduler ce processus. Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=66399 Réservation
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