Centre de Documentation Campus Montignies
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Mardi 2 juillet : de 8h à 12h15
Mercredi 3 juillet : de 9h à 12h et de 12h30 à 15h15
Jeudi 4 juillet : de 8h à 12h30 et de 13h à 18h30
Lundi 8 juillet : de 8h à 12h et de 12h30 à 16h
Mardi 9 juillet : de 8h à 12h15
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[article] Mise au point d'une technique sélectionnée de dosage de l'acide urique dans le plasma et le sérum . Etude expérimentale et intérêt de la spectrophotométrie [texte imprimé] . - 1991 . - 214 - 223. in Annales de Biologie Clinique > 4 (1991) . - 214 - 223 | ![Mise au point d'une technique sélectionnée de dosage de l'acide urique dans le plasma et le sérum . Etude expérimentale et intérêt de la spectrophotométrie vignette](./images/vide.png) |
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Revue | Revue | Centre de Documentation HELHa Campus Montignies | Réserve | Consultable sur demande auprès des documentalistes Exclu du prêt |
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[article]
Titre : |
Comparaison entre la radiométrie et la spectrophotométrie pour la détermination de l’activité de l’enzyme de conversion de l’angiotensine dans le liquide céphalorachidien |
Type de document : |
texte imprimé |
Auteurs : |
Ludmia Taibi ; Bénédicte Bénéteau-Burnat ; Michel Vaubourdolle ; Bruno Baudin |
Année de publication : |
2023 |
Article en page(s) : |
p. 255-261 |
Note générale : |
https://doi.org/10.1684/abc.2023.1809 |
Langues : |
Français (fre) |
Mots-clés : |
enzyme de conversion de l’angiotensine neurosarcoïdose liquide céphalorachidien radiométrie spectrophotométrie dosage immuno-enzymatique (ELISA) |
Résumé : |
La détermination de l’activité de l’enzyme de conversion (ECA) dans le liquide cérébrospinal (LCS) peut aider à l’établissement du diagnostic de la neurosarcoïdose. Nous avons étudié les caractéristiques de la performance de deux essais pour la détermination de l’ECA dans 57 LCS, la radiométrie avec le [glycine-1-14C]benzoyl-L-histidyl-L-leucine et la spectrophotométrie avec le fuylacryloyl-phénylalanyl-L-glycyl-L-glycine (FAPGG) en tant que substrats. Nous avons comparé les deux essais cinétiques à un ELISA spécifique pour l’ECA humaine. Les imprécisions intra-essais et inter-essais étaient de 14-17 % pour la radiométrie, 6-19 % pour la spectrophotométrie et 5-8 % pour l’ELISA. La limite de détection était de 0,04 U/L pour la radiométrie, 1,0 U/L pour la spectrophotométrie et pas connue pour l’ELISA. Le domaine de quantification était de 0,06 U/L pour la radiométrie, 1,5-24 U/L pour la spectrophotométrie et 0,156-10 μg/L pour l’ELISA. La régression de Deming et les graphes de Bland-Altman montrent de bonnes corrélations entre les trois essais, mais avec des pentes élevées parce que les deux essais enzymatiques utilisent des substrats différents et que l’ELISA mesure la molécule ECA, et pas son activité. La radiométrie était plus sensible que la spectrophotométrie, qui a une limite de détection au-dessus de la plupart des niveaux pathologiques. L’ELISA pourrait être une alternative à la radiométrie mais seulement après une évaluation complète, comme la détermination des valeurs normales et l’assurance de sa valeur clinique. Nous réclamons une standardisation des méthodes de détermination de l’ECA aussi bien dans le sérum que dans les autres fluides biologiques, en particulier le LCS. |
Permalink : |
./index.php?lvl=notice_display&id=112370 |
in Annales de Biologie Clinique > Vol.81 N°3 (mai 2023) . - p. 255-261
[article] Comparaison entre la radiométrie et la spectrophotométrie pour la détermination de l’activité de l’enzyme de conversion de l’angiotensine dans le liquide céphalorachidien [texte imprimé] / Ludmia Taibi ; Bénédicte Bénéteau-Burnat ; Michel Vaubourdolle ; Bruno Baudin . - 2023 . - p. 255-261. https://doi.org/10.1684/abc.2023.1809 Langues : Français ( fre) in Annales de Biologie Clinique > Vol.81 N°3 (mai 2023) . - p. 255-261
Mots-clés : |
enzyme de conversion de l’angiotensine neurosarcoïdose liquide céphalorachidien radiométrie spectrophotométrie dosage immuno-enzymatique (ELISA) |
Résumé : |
La détermination de l’activité de l’enzyme de conversion (ECA) dans le liquide cérébrospinal (LCS) peut aider à l’établissement du diagnostic de la neurosarcoïdose. Nous avons étudié les caractéristiques de la performance de deux essais pour la détermination de l’ECA dans 57 LCS, la radiométrie avec le [glycine-1-14C]benzoyl-L-histidyl-L-leucine et la spectrophotométrie avec le fuylacryloyl-phénylalanyl-L-glycyl-L-glycine (FAPGG) en tant que substrats. Nous avons comparé les deux essais cinétiques à un ELISA spécifique pour l’ECA humaine. Les imprécisions intra-essais et inter-essais étaient de 14-17 % pour la radiométrie, 6-19 % pour la spectrophotométrie et 5-8 % pour l’ELISA. La limite de détection était de 0,04 U/L pour la radiométrie, 1,0 U/L pour la spectrophotométrie et pas connue pour l’ELISA. Le domaine de quantification était de 0,06 U/L pour la radiométrie, 1,5-24 U/L pour la spectrophotométrie et 0,156-10 μg/L pour l’ELISA. La régression de Deming et les graphes de Bland-Altman montrent de bonnes corrélations entre les trois essais, mais avec des pentes élevées parce que les deux essais enzymatiques utilisent des substrats différents et que l’ELISA mesure la molécule ECA, et pas son activité. La radiométrie était plus sensible que la spectrophotométrie, qui a une limite de détection au-dessus de la plupart des niveaux pathologiques. L’ELISA pourrait être une alternative à la radiométrie mais seulement après une évaluation complète, comme la détermination des valeurs normales et l’assurance de sa valeur clinique. Nous réclamons une standardisation des méthodes de détermination de l’ECA aussi bien dans le sérum que dans les autres fluides biologiques, en particulier le LCS. |
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Revue | Revue | Centre de Documentation HELHa Campus Montignies | Armoires à volets | Disponible Disponible |
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Titre : |
Etude de la résistance à la Bléomycine induite par la protéine TMEM45A dans les cellules cancéreuses HepG2 |
Type de document : |
TFE / Mémoire |
Auteurs : |
SOPHIE CRÈVECOEUR, |
Année de publication : |
2016 |
Note générale : |
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. |
Langues : |
Français (fre) |
Mots-clés : |
Biologie médicale UNamur CBS URBC cancer hépatocarcinome radiothérapie traitement étoposide cisplatine bléomycine apoptose cellulaire caspases apoptose intrinsèque apoptose extrinsèque résistance cellulaire pompes à éfflux hypoxie hypoxie tumorale hypoxie chronique hypoxie aigüe HIF angiogenèse tumorale TMEM45A siRNA culture cellulaire comptage cellulaire activité métabolique spectrophotométrie étude cellulaire cytotoxicité LDH |
Index. décimale : |
TFE Bio Med TFE Biologie médicale |
Note de contenu : |
Table des matières
Remerciements
Présentation du lieu de stage ………………………………………………………………………………………………………………… 9
Introduction générale ……………………………………………………………………………………………………………………………11
Contexte général …………………………………………………………………………………………………………………………………. 13
1. Le cancer : généralités .................................................................................................................... 13
1.1. L’hépatocarcinome ................................................................................................................. 13
1.2. Les différents moyens de traitement ...................................................................................... 14
1.2.1. Chirurgie …………………………………………………………………………………………………………………………14
1.2.2. Radiothérapie ………………………………………………………………………………………………………………...14
1.2.3. Chimiothérapie ……………………………………………………………………………………………………………… 15
1.2.4. Thérapie ciblée ……………………………………………………………………………………………………………….16
1.3. Les molécules anticancéreuses ............................................................................................... 17
1.3.1. Etoposide ……………………………………………………………………………………………………………………….17
1.3.2. Cisplatine ……………………………………………………………………………………………………………………….17
1.3.3. Bléomycine …………………………………………………………………………………………………………………….18
2. L’apoptose cellulaire ....................................................................................................................... 19
2.1. L’apoptose ............................................................................................................................... 19
2.2. Les caspases ............................................................................................................................ 19
2.3. Les voies de signalisation de l’apoptose ................................................................................. 20
2.3.1. L'apoptose intrinsèque …………………………………………………………………………………………………..20
2.3.2. L'apoptose extrinsèque …………………………………………………………………………………………………. 20
2.4. L’apoptose et les cellules cancéreuses ................................................................................... 21
3. La résistance .................................................................................................................................... 21
3.1. Résistance cellulaire aux anticancéreux ................................................................................. 21
3.2. Mécanismes de résistance ...................................................................................................... 21
3.2.1. Les pompes à éfflux ………………………………………………………………………………………………………..22
3.2.2. Modification de la cible ………………………………………………………………………………………………….22
4. L’hypoxie et la résistance ................................................................................................................ 22
4.1. L’hypoxie ................................................................................................................................. 22
4.1.1. Hypoxie tumorale …………………………………………………………………………………………………………. 22
4.1.2. Hypoxie chronique ………………………………………………………………………………………………………… 23
6 | P a g e
4.1.3. Hypoxie aiguë ………………………………………………………………………………………………………………...25
4.2. HIF ........................................................................................................................................... 25
4.2.1. Caractéristiques …………………………………………………………………………………………………………….25
4.2.2. HIF, résistances et croissance tumorale ………………………………………………………………………….25
4.3. Angiogenèse tumorale ............................................................................................................ 26
4.4. Résistance en condition d’hypoxie ......................................................................................... 26
5. TMEM45A ....................................................................................................................................... 27
5.1. Découverte .............................................................................................................................. 27
5.2. Caractéristiques ...................................................................................................................... 28
5.3. TMEM45A et l’hypoxie ............................................................................................................ 28
5.4. TMEM45A et le cancer ............................................................................................................ 29
5.5. siRNA ....................................................................................................................................... 30
Objectifs et stratégies …………………………………………………………………………………………………………………………..33
Matériel et méthodes …………………………………………………………………………………………………………………………..35
1. Techniques de culture cellulaire ..................................................................................................... 35
1.1. Matériel biologique ................................................................................................................. 35
1.2. Travail en conditions stériles .................................................................................................. 36
1.3. Comptage cellulaire ................................................................................................................ 36
2. Techniques d’étude cellulaire ......................................................................................................... 37
2.1. Test d’activité métabolique ................................................................................................... 37
2.1.1. Test d'activité métabolique ; MTT .………………………………………………………………………………….37
2.1.2. But .……………………………………………………………………………………………………………………………….. 37
2.1.3. Principe …………………………………………………………………………………………………………………………..37
2.1.4. Spectrophotométrie ……………………………………………………………………………………………………….38
2.2. Test à l’Iodure de Propidium, IP .............................................................................................. 39
2.2.1. Test de résistance …………………………………………………………………………………………………………..39
2.2.2. But ………………………………………………………………………………………………………………………………… 39
2.2.3. Principe …………………………………………………………………………………………………………………………..39
2.2.4. Hypoxie …………………………………………………………………………………………………………………………. 40
2.2.5. Fluorimétrie ……………………………………………………………………………………………………………………41
2.3. LDH .......................................................................................................................................... 42
2.3.1. Test de cytotoxicité ………………………………………………………………………………………………………..42
7 | P a g e
2.3.2. But ……………………………………………………………………………………………………………………………….. 42
2.3.3. Principe ………………………………………………………………………………………………………………………….42
2.3.4. Lactate déshydrogénase …………………………………………………………………………………………………43
Résultats et discussion ………………………………………………………………………………………………………………………….45
1ère étape : établir la concentration de travail en Bléomycine : test MTT …………………………………………….45
1. Procédure générale ......................................................................................................................... 45
1.1. Jour 1 ....................................................................................................................................... 45
1.2. Jour 2 ....................................................................................................................................... 46
1.3. Jour 3 ....................................................................................................................................... 47
2. Conditions expérimentales ............................................................................................................. 47
3. Résultats .......................................................................................................................................... 48
2ème étape : mise en évidence d'une résistance via un test de viabilité cellulaire : Iodure de Propidium (IP) ………………………………………………………………………………………………………………………………………………………. 51
1. Procédure générale ......................................................................................................................... 51
1.1. Jour 1 ....................................................................................................................................... 51
1.2. Jour 2 ....................................................................................................................................... 51
1.3. Jour 3 ....................................................................................................................................... 51
2. Conditions expérimentales ............................................................................................................. 52
3. Résultats .......................................................................................................................................... 52
3ème étape : confirmation de la résistance via un test de cytotoxicité : LDH ………………………………………. 54
1. Procédure générale ......................................................................................................................... 54
1.1. Jour 1 ....................................................................................................................................... 54
1.2. Jour 2 ....................................................................................................................................... 54
1.3. Jour 3 ....................................................................................................................................... 54
2. Conditions expérimentales ............................................................................................................. 54
3. Résultats ........................................................................................................................................ 566
Conclusions ............................................................................................................................................. 59
Perspectives ............................................................................................................................................ 59
Table des abréviations …………………………………………………………………………………………………………………………. 63
Bibliographie ……………………………………………………………………………………………………………………………………….. 65
|
Permalink : |
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Etude de la résistance à la Bléomycine induite par la protéine TMEM45A dans les cellules cancéreuses HepG2 [TFE / Mémoire] / SOPHIE CRÈVECOEUR, . - 2016. Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français ( fre)
Mots-clés : |
Biologie médicale UNamur CBS URBC cancer hépatocarcinome radiothérapie traitement étoposide cisplatine bléomycine apoptose cellulaire caspases apoptose intrinsèque apoptose extrinsèque résistance cellulaire pompes à éfflux hypoxie hypoxie tumorale hypoxie chronique hypoxie aigüe HIF angiogenèse tumorale TMEM45A siRNA culture cellulaire comptage cellulaire activité métabolique spectrophotométrie étude cellulaire cytotoxicité LDH |
Index. décimale : |
TFE Bio Med TFE Biologie médicale |
Note de contenu : |
Table des matières
Remerciements
Présentation du lieu de stage ………………………………………………………………………………………………………………… 9
Introduction générale ……………………………………………………………………………………………………………………………11
Contexte général …………………………………………………………………………………………………………………………………. 13
1. Le cancer : généralités .................................................................................................................... 13
1.1. L’hépatocarcinome ................................................................................................................. 13
1.2. Les différents moyens de traitement ...................................................................................... 14
1.2.1. Chirurgie …………………………………………………………………………………………………………………………14
1.2.2. Radiothérapie ………………………………………………………………………………………………………………...14
1.2.3. Chimiothérapie ……………………………………………………………………………………………………………… 15
1.2.4. Thérapie ciblée ……………………………………………………………………………………………………………….16
1.3. Les molécules anticancéreuses ............................................................................................... 17
1.3.1. Etoposide ……………………………………………………………………………………………………………………….17
1.3.2. Cisplatine ……………………………………………………………………………………………………………………….17
1.3.3. Bléomycine …………………………………………………………………………………………………………………….18
2. L’apoptose cellulaire ....................................................................................................................... 19
2.1. L’apoptose ............................................................................................................................... 19
2.2. Les caspases ............................................................................................................................ 19
2.3. Les voies de signalisation de l’apoptose ................................................................................. 20
2.3.1. L'apoptose intrinsèque …………………………………………………………………………………………………..20
2.3.2. L'apoptose extrinsèque …………………………………………………………………………………………………. 20
2.4. L’apoptose et les cellules cancéreuses ................................................................................... 21
3. La résistance .................................................................................................................................... 21
3.1. Résistance cellulaire aux anticancéreux ................................................................................. 21
3.2. Mécanismes de résistance ...................................................................................................... 21
3.2.1. Les pompes à éfflux ………………………………………………………………………………………………………..22
3.2.2. Modification de la cible ………………………………………………………………………………………………….22
4. L’hypoxie et la résistance ................................................................................................................ 22
4.1. L’hypoxie ................................................................................................................................. 22
4.1.1. Hypoxie tumorale …………………………………………………………………………………………………………. 22
4.1.2. Hypoxie chronique ………………………………………………………………………………………………………… 23
6 | P a g e
4.1.3. Hypoxie aiguë ………………………………………………………………………………………………………………...25
4.2. HIF ........................................................................................................................................... 25
4.2.1. Caractéristiques …………………………………………………………………………………………………………….25
4.2.2. HIF, résistances et croissance tumorale ………………………………………………………………………….25
4.3. Angiogenèse tumorale ............................................................................................................ 26
4.4. Résistance en condition d’hypoxie ......................................................................................... 26
5. TMEM45A ....................................................................................................................................... 27
5.1. Découverte .............................................................................................................................. 27
5.2. Caractéristiques ...................................................................................................................... 28
5.3. TMEM45A et l’hypoxie ............................................................................................................ 28
5.4. TMEM45A et le cancer ............................................................................................................ 29
5.5. siRNA ....................................................................................................................................... 30
Objectifs et stratégies …………………………………………………………………………………………………………………………..33
Matériel et méthodes …………………………………………………………………………………………………………………………..35
1. Techniques de culture cellulaire ..................................................................................................... 35
1.1. Matériel biologique ................................................................................................................. 35
1.2. Travail en conditions stériles .................................................................................................. 36
1.3. Comptage cellulaire ................................................................................................................ 36
2. Techniques d’étude cellulaire ......................................................................................................... 37
2.1. Test d’activité métabolique ................................................................................................... 37
2.1.1. Test d'activité métabolique ; MTT .………………………………………………………………………………….37
2.1.2. But .……………………………………………………………………………………………………………………………….. 37
2.1.3. Principe …………………………………………………………………………………………………………………………..37
2.1.4. Spectrophotométrie ……………………………………………………………………………………………………….38
2.2. Test à l’Iodure de Propidium, IP .............................................................................................. 39
2.2.1. Test de résistance …………………………………………………………………………………………………………..39
2.2.2. But ………………………………………………………………………………………………………………………………… 39
2.2.3. Principe …………………………………………………………………………………………………………………………..39
2.2.4. Hypoxie …………………………………………………………………………………………………………………………. 40
2.2.5. Fluorimétrie ……………………………………………………………………………………………………………………41
2.3. LDH .......................................................................................................................................... 42
2.3.1. Test de cytotoxicité ………………………………………………………………………………………………………..42
7 | P a g e
2.3.2. But ……………………………………………………………………………………………………………………………….. 42
2.3.3. Principe ………………………………………………………………………………………………………………………….42
2.3.4. Lactate déshydrogénase …………………………………………………………………………………………………43
Résultats et discussion ………………………………………………………………………………………………………………………….45
1ère étape : établir la concentration de travail en Bléomycine : test MTT …………………………………………….45
1. Procédure générale ......................................................................................................................... 45
1.1. Jour 1 ....................................................................................................................................... 45
1.2. Jour 2 ....................................................................................................................................... 46
1.3. Jour 3 ....................................................................................................................................... 47
2. Conditions expérimentales ............................................................................................................. 47
3. Résultats .......................................................................................................................................... 48
2ème étape : mise en évidence d'une résistance via un test de viabilité cellulaire : Iodure de Propidium (IP) ………………………………………………………………………………………………………………………………………………………. 51
1. Procédure générale ......................................................................................................................... 51
1.1. Jour 1 ....................................................................................................................................... 51
1.2. Jour 2 ....................................................................................................................................... 51
1.3. Jour 3 ....................................................................................................................................... 51
2. Conditions expérimentales ............................................................................................................. 52
3. Résultats .......................................................................................................................................... 52
3ème étape : confirmation de la résistance via un test de cytotoxicité : LDH ………………………………………. 54
1. Procédure générale ......................................................................................................................... 54
1.1. Jour 1 ....................................................................................................................................... 54
1.2. Jour 2 ....................................................................................................................................... 54
1.3. Jour 3 ....................................................................................................................................... 54
2. Conditions expérimentales ............................................................................................................. 54
3. Résultats ........................................................................................................................................ 566
Conclusions ............................................................................................................................................. 59
Perspectives ............................................................................................................................................ 59
Table des abréviations …………………………………………………………………………………………………………………………. 63
Bibliographie ……………………………………………………………………………………………………………………………………….. 65
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Exemplaires
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40 EXPERIENCES ILLUSTREES DE CHIMIE GENERALE ET ORGANIQUE : LA CHIMIE, UNE SCIENCE EXPERIMENTALE [texte imprimé] / MARTINAND-LURIN Elodie ; GRUBER Raymond, . - 1ère édition . - 2012. ISSN : ISBN 978-2-8041-7154-4 Langues : Français ( fre) | ![40 EXPERIENCES ILLUSTREES DE CHIMIE GENERALE ET ORGANIQUE vignette](./images/vide.png) |
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542 MAR Q | Livre | Centre de Documentation HELHa Campus Montignies | Etagères livres | Disponible Disponible |
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[article] Analyse critique des différentes méthodes utilisées pour le dépistage toxicologique dans un laboratoire d'urgence [texte imprimé] . - 1999 . - 525 - 537. in Annales de Biologie Clinique > 5 (1999) . - 525 - 537 | ![Analyse critique des différentes méthodes utilisées pour le dépistage toxicologique dans un laboratoire d'urgence vignette](./images/vide.png) |
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