Centre de Documentation Campus Montignies
Horaires :
Lundi : 8h-18h30
Mardi : 8h-18h30
Mercredi 9h-16h30
Jeudi : 8h-18h30
Vendredi : 8h-16h30
Votre centre de documentation fermera à 17h30 ce mardi 4 juin.
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Diatomées et criminalistique : comparaison et optimisation de procédés d’extraction / DELPHINE VAN BOSSCHE
Titre : Diatomées et criminalistique : comparaison et optimisation de procédés d’extraction Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : DELPHINE VAN BOSSCHE, Auteur Année de publication : 2016 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale Institut National de Criminalistique et de Criminologie INCC Bruxelles Diatomées criminalistique Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matière
Remerciements ..................................................................................................................................... 5
Présentation du lieu de stage .............................................................................................................. 11
Introduction générale .......................................................................................................................... 13
I. Contexte général .............................................................................................................................. 15
1. Les diatomées ................................................................................................................................... 15
1.1. Structure générale ..................................................................................................................... 15
1.2. Classification .............................................................................................................................. 17
Les centriques ou « Centrophycidées » .............................................................................. 17
Les pennées ou « Pennatophycidées » ............................................................................... 19
1.3. Reproduction ............................................................................................................................. 21
1.4. Écologie ...................................................................................................................................... 22
2. Intérêt de la recherche des diatomées dans le diagnostic de noyade............................................. 23
2.1. Contexte .................................................................................................................................... 23
2.2. Comment les diatomées peuvent-elles se retrouver dans les organes ? ................................ 23
2.2.1. Par inhalation ..................................................................................................................... 24
2.2.2. Par ingestion ...................................................................................................................... 24
2.3. Limites de la méthode ............................................................................................................... 24
3. Techniques d’extraction .................................................................................................................... 25
3.1. Extraction chimique .................................................................................................................. 26
3.1.1. Extraction chimique d’échantillons d’eau ......................................................................... 26
3.1.2. Extraction chimique d’échantillons d’organe ................................................................... 26
3.2. Extraction enzymatique ............................................................................................................ 27
3.2.1. Mode d’action .................................................................................................................... 27
Protéinase K .................................................................................................................... 27
Pepsine ............................................................................................................................ 28
Papaïne ............................................................................................................................ 28
Trypsine ........................................................................................................................... 28
3.3. Avantages et inconvénients ...................................................................................................... 29
4. Quantification des diatomées et rendement des extractions ......................................................... 29
5. Microscopie électronique à balayage : PhenomTM G2 pro .............................................................. 30
5.1. Définition ................................................................................................................................... 30
5.2. Principe du PhenomTM G2 pro ................................................................................................... 31
5.3. Composition .............................................................................................................................. 31
II. Objectifs et stratégies ...................................................................................................................... 33
III. Matériel et méthodes ..................................................................................................................... 35
1. Protocole d’extraction à partir d’échantillons d’eau ....................................................................... 35
1.1. Echantillons d’eaux ................................................................................................................... 35
1.2. Matériel et réactifs .................................................................................................................... 35
1.2.1. Matériel .............................................................................................................................. 35
1.2.2. Réactifs ............................................................................................................................... 36
1.3. Mise au point du protocole d’extraction .................................................................................. 36
1.3.1. Optimalisation de l’utilisation d’eau oxygénée (H2O2) pour l’élimination des matières organiques .................................................................................................................................... 37
1.3.2. Optimalisation de l’utilisation du HCl/Pyrophosphate et du Calgon pour l’élimination du calcaire et la défloculation des argiles et de l’utilisation ou non du polytungstate de sodium pour l’élimination des minéraux .................................................................................................. 37
1.3.3. Optimalisation des moments et du nombre de centrifugations entre les étapes de l’H2O2, du Calgon et du polytungstate de sodium ....................................................................... 39
2. Protocole d’extraction à partir d’échantillons d’organes ................................................................ 40
2.1. Echantillons ................................................................................................................................ 40
2.2. Matériels et réactifs .................................................................................................................. 41
2.2.1. Matériel .............................................................................................................................. 41
2.2.2. Réactifs ............................................................................................................................... 41
2.3. Techniques d’extraction des diatomées ................................................................................... 41
2.3.1. Digestion chimique des tissus à l’HCl ................................................................................ 42
2.3.2. Digestion chimique des tissus à l’H2O2 puis à l’HCl ........................................................... 42
2.3.3. Digestion enzymatique des tissus à la protéinase K ......................................................... 43
2.3.4. Digestions enzymatiques des tissus à la pepsine et à la papaïne avec ou sans ajout de DTT ................................................................................................................................................ 44
2.3.5. Digestion sur foie de porc .................................................................................................. 45
2.3.6. Digestion et extraction des diatomées sur poumon humain ........................................... 46
2.4. Méthode d’extraction utilisée pour calculer le rendement d’extraction sur poumon de porc ........................................................................................................................................................... 47
IV. Résultats et discussion ................................................................................................................... 49
1. Protocole d’extraction à partir d’échantillons d’eau ....................................................................... 49
1.1. Optimalisation de l’utilisation d’eau oxygénée (H2O2) pour l’élimination des matières organiques ........................................................................................................................................ 49
Discussion ................................................................................................................................. 51
1.2. Optimalisation de l’utilisation du HCl/Pyrophosphate de sodium et du Calgon pour l’élimination du calcaire et la défloculation des argiles et optimalisation de l’utilisation ou non du polytungstate de sodium pour l’élimination des minéraux ............................................................ 51
1.2.1. Choix de la concentration du Calgon ................................................................................. 51
Discussion ................................................................................................................................. 53
1.2.2. Choix du traitement au Calgon ou à l’HCl/pyrophosphate de sodium ............................. 54
Discussion ................................................................................................................................. 55
1.2.3. Choix de l’emploi ou non du polytungstate de sodium .................................................... 56
Discussion ................................................................................................................................. 57
1.3. Optimalisation des moments et du nombre de centrifugations entre les étapes d’H2O2, du Calgon et du polytungstate de sodium ............................................................................................ 58
Discussion ................................................................................................................................. 58
1.4. Conclusion .................................................................................................................................. 62
2. Protocole d’extraction à partir d’échantillons d’organes ................................................................ 62
2.1. Digestion à l’acide : HCl ............................................................................................................. 63
Discussion ................................................................................................................................. 64
2.2. Digestion enzymatique .............................................................................................................. 64
2.2.1. Digestion enzymatique des tissus à la protéinase K : détermination de la quantité de travail en protéinase K ................................................................................................................. 64
Discussion ................................................................................................................................. 66
2.2.2. Digestions enzymatiques à la pepsine et à la papaïne avec ou sans dithiothréitol (DTT) 67
2.2.3. Digestion de foie de porc à la pepsine, pepsine/papaïne, trypsine et protéinase K ....... 67
2.2.4. Digestion et extraction de diatomées sur poumon humain à la papaïne, pepsine/papaïne, protéinase K et trypsine ................................................................................. 68
2.3. Rendements des extractions à partir d’échantillons de poumon humain ou de porc avec le protocole mis au point ..................................................................................................................... 70
2.3.1. Vérification du nombre de diatomées dans 2g d’échantillon humain ............................. 70
Discussion ................................................................................................................................. 73
2.3.2. Comparaison de la digestion à l’HNO3 et à la pepsine-papaïne dans des récipients en verre et en plastique .................................................................................................................... 74
Discussion ................................................................................................................................. 74
2.3.3. Rendement des extractions sur du poumon de porc inoculé avec 3 souches de diatomées ..................................................................................................................................... 75
Discussion ................................................................................................................................. 76
2.3.4. Conclusion .......................................................................................................................... 77
Conclusion générale et perspectives.................................................................................................... 79
Liste des tableaux ................................................................................................................................ 81
Liste des figures ................................................................................................................................... 82
Bibliographie ....................................................................................................................................... 84
Annexe 1 : Préparation des solutions .................................................................................................. 87Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65697 Diatomées et criminalistique : comparaison et optimisation de procédés d’extraction [TFE / Mémoire] / DELPHINE VAN BOSSCHE, Auteur . - 2016.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : biologie médicale Institut National de Criminalistique et de Criminologie INCC Bruxelles Diatomées criminalistique Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matière
Remerciements ..................................................................................................................................... 5
Présentation du lieu de stage .............................................................................................................. 11
Introduction générale .......................................................................................................................... 13
I. Contexte général .............................................................................................................................. 15
1. Les diatomées ................................................................................................................................... 15
1.1. Structure générale ..................................................................................................................... 15
1.2. Classification .............................................................................................................................. 17
Les centriques ou « Centrophycidées » .............................................................................. 17
Les pennées ou « Pennatophycidées » ............................................................................... 19
1.3. Reproduction ............................................................................................................................. 21
1.4. Écologie ...................................................................................................................................... 22
2. Intérêt de la recherche des diatomées dans le diagnostic de noyade............................................. 23
2.1. Contexte .................................................................................................................................... 23
2.2. Comment les diatomées peuvent-elles se retrouver dans les organes ? ................................ 23
2.2.1. Par inhalation ..................................................................................................................... 24
2.2.2. Par ingestion ...................................................................................................................... 24
2.3. Limites de la méthode ............................................................................................................... 24
3. Techniques d’extraction .................................................................................................................... 25
3.1. Extraction chimique .................................................................................................................. 26
3.1.1. Extraction chimique d’échantillons d’eau ......................................................................... 26
3.1.2. Extraction chimique d’échantillons d’organe ................................................................... 26
3.2. Extraction enzymatique ............................................................................................................ 27
3.2.1. Mode d’action .................................................................................................................... 27
Protéinase K .................................................................................................................... 27
Pepsine ............................................................................................................................ 28
Papaïne ............................................................................................................................ 28
Trypsine ........................................................................................................................... 28
3.3. Avantages et inconvénients ...................................................................................................... 29
4. Quantification des diatomées et rendement des extractions ......................................................... 29
5. Microscopie électronique à balayage : PhenomTM G2 pro .............................................................. 30
5.1. Définition ................................................................................................................................... 30
5.2. Principe du PhenomTM G2 pro ................................................................................................... 31
5.3. Composition .............................................................................................................................. 31
II. Objectifs et stratégies ...................................................................................................................... 33
III. Matériel et méthodes ..................................................................................................................... 35
1. Protocole d’extraction à partir d’échantillons d’eau ....................................................................... 35
1.1. Echantillons d’eaux ................................................................................................................... 35
1.2. Matériel et réactifs .................................................................................................................... 35
1.2.1. Matériel .............................................................................................................................. 35
1.2.2. Réactifs ............................................................................................................................... 36
1.3. Mise au point du protocole d’extraction .................................................................................. 36
1.3.1. Optimalisation de l’utilisation d’eau oxygénée (H2O2) pour l’élimination des matières organiques .................................................................................................................................... 37
1.3.2. Optimalisation de l’utilisation du HCl/Pyrophosphate et du Calgon pour l’élimination du calcaire et la défloculation des argiles et de l’utilisation ou non du polytungstate de sodium pour l’élimination des minéraux .................................................................................................. 37
1.3.3. Optimalisation des moments et du nombre de centrifugations entre les étapes de l’H2O2, du Calgon et du polytungstate de sodium ....................................................................... 39
2. Protocole d’extraction à partir d’échantillons d’organes ................................................................ 40
2.1. Echantillons ................................................................................................................................ 40
2.2. Matériels et réactifs .................................................................................................................. 41
2.2.1. Matériel .............................................................................................................................. 41
2.2.2. Réactifs ............................................................................................................................... 41
2.3. Techniques d’extraction des diatomées ................................................................................... 41
2.3.1. Digestion chimique des tissus à l’HCl ................................................................................ 42
2.3.2. Digestion chimique des tissus à l’H2O2 puis à l’HCl ........................................................... 42
2.3.3. Digestion enzymatique des tissus à la protéinase K ......................................................... 43
2.3.4. Digestions enzymatiques des tissus à la pepsine et à la papaïne avec ou sans ajout de DTT ................................................................................................................................................ 44
2.3.5. Digestion sur foie de porc .................................................................................................. 45
2.3.6. Digestion et extraction des diatomées sur poumon humain ........................................... 46
2.4. Méthode d’extraction utilisée pour calculer le rendement d’extraction sur poumon de porc ........................................................................................................................................................... 47
IV. Résultats et discussion ................................................................................................................... 49
1. Protocole d’extraction à partir d’échantillons d’eau ....................................................................... 49
1.1. Optimalisation de l’utilisation d’eau oxygénée (H2O2) pour l’élimination des matières organiques ........................................................................................................................................ 49
Discussion ................................................................................................................................. 51
1.2. Optimalisation de l’utilisation du HCl/Pyrophosphate de sodium et du Calgon pour l’élimination du calcaire et la défloculation des argiles et optimalisation de l’utilisation ou non du polytungstate de sodium pour l’élimination des minéraux ............................................................ 51
1.2.1. Choix de la concentration du Calgon ................................................................................. 51
Discussion ................................................................................................................................. 53
1.2.2. Choix du traitement au Calgon ou à l’HCl/pyrophosphate de sodium ............................. 54
Discussion ................................................................................................................................. 55
1.2.3. Choix de l’emploi ou non du polytungstate de sodium .................................................... 56
Discussion ................................................................................................................................. 57
1.3. Optimalisation des moments et du nombre de centrifugations entre les étapes d’H2O2, du Calgon et du polytungstate de sodium ............................................................................................ 58
Discussion ................................................................................................................................. 58
1.4. Conclusion .................................................................................................................................. 62
2. Protocole d’extraction à partir d’échantillons d’organes ................................................................ 62
2.1. Digestion à l’acide : HCl ............................................................................................................. 63
Discussion ................................................................................................................................. 64
2.2. Digestion enzymatique .............................................................................................................. 64
2.2.1. Digestion enzymatique des tissus à la protéinase K : détermination de la quantité de travail en protéinase K ................................................................................................................. 64
Discussion ................................................................................................................................. 66
2.2.2. Digestions enzymatiques à la pepsine et à la papaïne avec ou sans dithiothréitol (DTT) 67
2.2.3. Digestion de foie de porc à la pepsine, pepsine/papaïne, trypsine et protéinase K ....... 67
2.2.4. Digestion et extraction de diatomées sur poumon humain à la papaïne, pepsine/papaïne, protéinase K et trypsine ................................................................................. 68
2.3. Rendements des extractions à partir d’échantillons de poumon humain ou de porc avec le protocole mis au point ..................................................................................................................... 70
2.3.1. Vérification du nombre de diatomées dans 2g d’échantillon humain ............................. 70
Discussion ................................................................................................................................. 73
2.3.2. Comparaison de la digestion à l’HNO3 et à la pepsine-papaïne dans des récipients en verre et en plastique .................................................................................................................... 74
Discussion ................................................................................................................................. 74
2.3.3. Rendement des extractions sur du poumon de porc inoculé avec 3 souches de diatomées ..................................................................................................................................... 75
Discussion ................................................................................................................................. 76
2.3.4. Conclusion .......................................................................................................................... 77
Conclusion générale et perspectives.................................................................................................... 79
Liste des tableaux ................................................................................................................................ 81
Liste des figures ................................................................................................................................... 82
Bibliographie ....................................................................................................................................... 84
Annexe 1 : Préparation des solutions .................................................................................................. 87Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65697 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire La différentielle leucocytaire par immunophénotypage. Performance et intérêt dans un cadre hospitalier. / MASSON Caroline
Titre : La différentielle leucocytaire par immunophénotypage. Performance et intérêt dans un cadre hospitalier. Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : MASSON Caroline, Année de publication : 2008 Mots-clés : HEMATOLOGIE HEMATOPOÏESE FORMULE SANGUINE MICROSCOPE CYTOMETRIE DE FLUX TUBE CYTODIFF Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64438 La différentielle leucocytaire par immunophénotypage. Performance et intérêt dans un cadre hospitalier. [TFE / Mémoire] / MASSON Caroline, . - 2008.
Mots-clés : HEMATOLOGIE HEMATOPOÏESE FORMULE SANGUINE MICROSCOPE CYTOMETRIE DE FLUX TUBE CYTODIFF Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64438 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Diseno y sintesis de nuevos derivados de selenocianato como potenciales agentes leishmanicidas / Denis SNEESSENS
Titre : Diseno y sintesis de nuevos derivados de selenocianato como potenciales agentes leishmanicidas Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Denis SNEESSENS, Auteur Année de publication : 2012 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : BIOLOGIE CLINIQUE , ERASMUS , ESPAGNE , ESPAGNOL , UNIVERSITE NAVARRE , DERIVES DE SELENOCYANATE / SYNTHESE , LEISHMANIA , RMN , SPECTROSCOPIE INFRAROUGE , SPECTROSCOPIE DE MASSE Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65119 Diseno y sintesis de nuevos derivados de selenocianato como potenciales agentes leishmanicidas [TFE / Mémoire] / Denis SNEESSENS, Auteur . - 2012.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur
Langues : Français (fre)
Mots-clés : BIOLOGIE CLINIQUE , ERASMUS , ESPAGNE , ESPAGNOL , UNIVERSITE NAVARRE , DERIVES DE SELENOCYANATE / SYNTHESE , LEISHMANIA , RMN , SPECTROSCOPIE INFRAROUGE , SPECTROSCOPIE DE MASSE Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65119 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Diversité du Streptococcus pyogenes isolé d'amygdales de l'enfnat / ASCENZO Sabrina
Titre : Diversité du Streptococcus pyogenes isolé d'amygdales de l'enfnat Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : ASCENZO Sabrina, Année de publication : 2010 Mots-clés : BIOLOGIE CLINIQUE MICROBIOLOGIE ULB / IBMM STREPTOCOCCUS PYOGENES (GAS) PATHOGENICITE VIRULENCE / GENES RESPONSABLES TYPAGE DIVERSITE MICROBIOLOGIQUE AMYGDALE RESISTANCE Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64719 Diversité du Streptococcus pyogenes isolé d'amygdales de l'enfnat [TFE / Mémoire] / ASCENZO Sabrina, . - 2010.
Mots-clés : BIOLOGIE CLINIQUE MICROBIOLOGIE ULB / IBMM STREPTOCOCCUS PYOGENES (GAS) PATHOGENICITE VIRULENCE / GENES RESPONSABLES TYPAGE DIVERSITE MICROBIOLOGIQUE AMYGDALE RESISTANCE Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64719 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Dosage de l’hémoglobine glyquée par électrophorèse capillaire : évaluation d’un automate et comparaison avec l’HPLC / Aurélie Van den Heuvel
Titre : Dosage de l’hémoglobine glyquée par électrophorèse capillaire : évaluation d’un automate et comparaison avec l’HPLC Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Aurélie Van den Heuvel, Auteur ; Jérôme Cornil, Directeur de la recherche Editeur : Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale Année de publication : 2021 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : Notre-Dame de Grâce hémoglobine glyquée diabète : dosage Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Le diabète étant une maladie touchant de plus en plus de monde, il est important pour le milieu hospitalier d’assurer le suivi des patients touchés par cette maladie. Le paramètre dosé pour assurer le suivi de ces patients est l’hémoglobine glyquée. A la Clinique de Notre-Dâme [SIC] de Grâce, ce dosage s’effectue via une chromatographie à haute performance par le biais de l’automate Arkray 8180-V de Menarini. Cependant, l’installation du Capillarys 3 Octa par Sebia (pour effectuer l’électrophorèse des protéines sériques principalement) a soulevé un potentiel intérêt pour le dosage de l’hémoglobine glyquée (HbA1C) par l’électrophorèse capillaire. Une évaluation de cette automate a donc vu le jour, afin d’évaluer les performances du Capillarys 3 Octa et de comparer les résultats obtenus sur les deux automates.
Les performances évaluées sont la reproductibilité, la répétabilité et l’efficacité du cycle de nettoyage des capillaires.
Un intérêt sera également apporté sur la capacité du Capillarys 3 Octa a apporté des renseignements supplémentaires (comme la présence d’un variant de l’hémoglobine, un taux d’HbA2 important). Le dernier point sera consacré aux avantages et inconvénients rencontrés lors de l’utilisation de ces deux automates.
Les résultats de cette évaluation permettront d’effectuer un changement de méthode de manière sereine si tel serait le choix de la clinique.Note de contenu : Table des matières
Remerciements
Présentation du lieu de stage :................................................................................................... 7
Introduction................................................................................................................................ 9
Partie théorique : ..................................................................................................................... 10
1) Le diabète sucré ............................................................................................................... 11
1.1) Le diabète de type I .................................................................................................. 11
1.2) Le diabète de type II...................................................................................................... 12
1.3) Le diabète gestationnel ................................................................................................ 13
1.4) Causes et facteurs favorisants ...................................................................................... 13
1.5) Les complications dues au diabète ............................................................................... 15
1.6) Critères de l’Organisation Mondiale de la Santé de diagnostic du diabète ................. 15
2) L’hémoglobine glyquée ........................................................................................................ 16
2.1) L’hémoglobine............................................................................................................... 16
2.1.1) Structure................................................................................................................. 16
2.2) L’hémoglobine glyquée ................................................................................................. 18
2.2.2) L’HbA1c.................................................................................................................... 19
2.2.3) Intérêt du dosage de l’hémoglobine glyquée ........................................................ 20
3) Standardisation des résultats et valeurs de référence IFCC ................................................ 22
4) Méthodes de dosages .......................................................................................................... 22
4.1) HPLC : ............................................................................................................................ 24
4.1.1) Principe général ..................................................................................................... 24
4.2) Electrophorèse capillaire .............................................................................................. 26
4.2.1) Principe général ..................................................................................................... 26
7) Objectifs et stratégies .......................................................................................................... 29
Partie pratique :........................................................................................................................ 31
Matériel : Automates ............................................................................................................... 32
1)L’automate Arkray 8180-V Menarini ................................................................................ 32
2) L’automate Capillarys 3 Octa de Sebia............................................................................. 36
Evaluation des performances de la méthode capillaire........................................................... 40
1) Reproductibilité ............................................................................................................... 40
1.1) Contrôles du Capillarys 3 Octa............................................................................... 41
1.2) Contrôles de l’Arkray 8180-V ................................................................................. 43
2) Répétabilité ..................................................................................................................... 45
3) Contamination inter-échantillons ................................................................................... 48
4) Stabilité des échantillons au cours du temps .................................................................. 50
5) Comparaison de méthodes .............................................................................................. 52
6) Comparaison des tracés des deux automates pour les échantillons présentant un
variant de l’hémoglobine ou un taux d’hémoglobine glyquée supérieur à 1 % .................. 55
6.1) Discordances entre les alarmes des deux automates dû à un taux d’HbF supérieur à
1 % .................................................................................................................................... 55
6.2) Discordance pour échantillons possédant un variant de l’hémoglobine migrant au
même endroit que l‘Hb D :.............................................................................................. 56
6.3) Détection d’HbA2 supérieure à 3% ........................................................................... 58
6.4) Hb S/ Hb C ................................................................................................................. 58
7)Interférence analytique : Hb F ......................................................................................... 61
Evaluation pratique des automates ......................................................................................... 63
Automates et mises en route :............................................................................................. 63
Conclusion : .............................................................................................................................. 64
Bibliographie ............................................................................................................................ 70
Annexes : .................................................................................................................................. 73
Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=100298 Dosage de l’hémoglobine glyquée par électrophorèse capillaire : évaluation d’un automate et comparaison avec l’HPLC [TFE / Mémoire] / Aurélie Van den Heuvel, Auteur ; Jérôme Cornil, Directeur de la recherche . - Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale, 2021.
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Langues : Français (fre)
Mots-clés : Notre-Dame de Grâce hémoglobine glyquée diabète : dosage Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Le diabète étant une maladie touchant de plus en plus de monde, il est important pour le milieu hospitalier d’assurer le suivi des patients touchés par cette maladie. Le paramètre dosé pour assurer le suivi de ces patients est l’hémoglobine glyquée. A la Clinique de Notre-Dâme [SIC] de Grâce, ce dosage s’effectue via une chromatographie à haute performance par le biais de l’automate Arkray 8180-V de Menarini. Cependant, l’installation du Capillarys 3 Octa par Sebia (pour effectuer l’électrophorèse des protéines sériques principalement) a soulevé un potentiel intérêt pour le dosage de l’hémoglobine glyquée (HbA1C) par l’électrophorèse capillaire. Une évaluation de cette automate a donc vu le jour, afin d’évaluer les performances du Capillarys 3 Octa et de comparer les résultats obtenus sur les deux automates.
Les performances évaluées sont la reproductibilité, la répétabilité et l’efficacité du cycle de nettoyage des capillaires.
Un intérêt sera également apporté sur la capacité du Capillarys 3 Octa a apporté des renseignements supplémentaires (comme la présence d’un variant de l’hémoglobine, un taux d’HbA2 important). Le dernier point sera consacré aux avantages et inconvénients rencontrés lors de l’utilisation de ces deux automates.
Les résultats de cette évaluation permettront d’effectuer un changement de méthode de manière sereine si tel serait le choix de la clinique.Note de contenu : Table des matières
Remerciements
Présentation du lieu de stage :................................................................................................... 7
Introduction................................................................................................................................ 9
Partie théorique : ..................................................................................................................... 10
1) Le diabète sucré ............................................................................................................... 11
1.1) Le diabète de type I .................................................................................................. 11
1.2) Le diabète de type II...................................................................................................... 12
1.3) Le diabète gestationnel ................................................................................................ 13
1.4) Causes et facteurs favorisants ...................................................................................... 13
1.5) Les complications dues au diabète ............................................................................... 15
1.6) Critères de l’Organisation Mondiale de la Santé de diagnostic du diabète ................. 15
2) L’hémoglobine glyquée ........................................................................................................ 16
2.1) L’hémoglobine............................................................................................................... 16
2.1.1) Structure................................................................................................................. 16
2.2) L’hémoglobine glyquée ................................................................................................. 18
2.2.2) L’HbA1c.................................................................................................................... 19
2.2.3) Intérêt du dosage de l’hémoglobine glyquée ........................................................ 20
3) Standardisation des résultats et valeurs de référence IFCC ................................................ 22
4) Méthodes de dosages .......................................................................................................... 22
4.1) HPLC : ............................................................................................................................ 24
4.1.1) Principe général ..................................................................................................... 24
4.2) Electrophorèse capillaire .............................................................................................. 26
4.2.1) Principe général ..................................................................................................... 26
7) Objectifs et stratégies .......................................................................................................... 29
Partie pratique :........................................................................................................................ 31
Matériel : Automates ............................................................................................................... 32
1)L’automate Arkray 8180-V Menarini ................................................................................ 32
2) L’automate Capillarys 3 Octa de Sebia............................................................................. 36
Evaluation des performances de la méthode capillaire........................................................... 40
1) Reproductibilité ............................................................................................................... 40
1.1) Contrôles du Capillarys 3 Octa............................................................................... 41
1.2) Contrôles de l’Arkray 8180-V ................................................................................. 43
2) Répétabilité ..................................................................................................................... 45
3) Contamination inter-échantillons ................................................................................... 48
4) Stabilité des échantillons au cours du temps .................................................................. 50
5) Comparaison de méthodes .............................................................................................. 52
6) Comparaison des tracés des deux automates pour les échantillons présentant un
variant de l’hémoglobine ou un taux d’hémoglobine glyquée supérieur à 1 % .................. 55
6.1) Discordances entre les alarmes des deux automates dû à un taux d’HbF supérieur à
1 % .................................................................................................................................... 55
6.2) Discordance pour échantillons possédant un variant de l’hémoglobine migrant au
même endroit que l‘Hb D :.............................................................................................. 56
6.3) Détection d’HbA2 supérieure à 3% ........................................................................... 58
6.4) Hb S/ Hb C ................................................................................................................. 58
7)Interférence analytique : Hb F ......................................................................................... 61
Evaluation pratique des automates ......................................................................................... 63
Automates et mises en route :............................................................................................. 63
Conclusion : .............................................................................................................................. 64
Bibliographie ............................................................................................................................ 70
Annexes : .................................................................................................................................. 73
Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=100298 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Dosage du méropénemn, de la piperacilline et de la ceftazidime par HPLC/MS-MS / Cédric GILLy
PermalinkEffects of prebiotics and symbiotics on the Met-enkephalin activity in the mice pancreas / MICHAUX Jennifer
PermalinkEffet d'un anticorps anti-sclerostine sur un modele murin d'osteogenese imparfaite de type III : étude morphologique de la colonne vertébrale / Pauline LANNOO
PermalinkEffet d’un anticorps antisclerostine sur le muscle squelettique de la souris OIM/OIM (ostéogenèse imparfaite) / LAURENT RAPPE
PermalinkEffet de l’invalidation de la cathepsine K chez les souris oim/oim (Osteogenesis imperfecta) : Etude morphologique de l’os long / Diane KENNE TAMETSA
PermalinkEffet de quelques plantes médicinales africaines sur la formation du pigment malarique / ZAÏNAB HADDADI
PermalinkEffets moléculaires et cellulaires des radiations ionisantes (R-X) sur la glande thyroîde chez la souris / NKUNDIRA Jean-Claude
PermalinkEffets des mutagenèses des Apol's sur l'activité trypanolytique / Sabrina DI TORE
PermalinkEffets de la surexpression du microARN-126 dans le contexte de la maladie de Marek / Pauline PELLIN
PermalinkElaboration et mise en place d'une procedure d'utilisation de temoins en immunohistochimie, au sein d'un laboratoire d'anatomie pathologique / Justine Guyaux
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