Centre de Documentation Campus Montignies
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Lundi : 8h-18h30
Mardi : 8h-18h30
Mercredi 9h-16h30
Jeudi : 8h-18h30
Vendredi : 8h-16h30
Votre centre de documentation fermera à 17h30 ce mardi 4 juin.
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Contribution à l'étude de phéromones sexuelles volatiles de papillons de l'espèce Bicyclus anyanana / Stéphanie DELCHAMBRE
Titre : Contribution à l'étude de phéromones sexuelles volatiles de papillons de l'espèce Bicyclus anyanana Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Stéphanie DELCHAMBRE, Auteur Année de publication : 2012 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : ZOOLOGIE , ENTOMOLOGIE , COMMUNICATION CHIMIQUE , PHEROMONES SEXUELLES VOLATILES ,LEPIDOPTERE , PAPILLONS , BICYCLUS ANYANANA , PIEGEAGE DYNAMIQUE Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65076 Contribution à l'étude de phéromones sexuelles volatiles de papillons de l'espèce Bicyclus anyanana [TFE / Mémoire] / Stéphanie DELCHAMBRE, Auteur . - 2012.
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Mots-clés : ZOOLOGIE , ENTOMOLOGIE , COMMUNICATION CHIMIQUE , PHEROMONES SEXUELLES VOLATILES ,LEPIDOPTERE , PAPILLONS , BICYCLUS ANYANANA , PIEGEAGE DYNAMIQUE Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65076 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Contribution à l'étude du rôle du facteur DMRT5 dans le développement du système olfactif chez l'embryon de souris / MAROT Jean-Nicolas
Titre : Contribution à l'étude du rôle du facteur DMRT5 dans le développement du système olfactif chez l'embryon de souris Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : MAROT Jean-Nicolas, Auteur Année de publication : 2011 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : EMBRYOLOGIE , BIOLOGIE MOLECULAIRE , GENE DMRT5 , SYSTEME OLFACTIF DE SOURIS , EMBRYOGENESE Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64906 Contribution à l'étude du rôle du facteur DMRT5 dans le développement du système olfactif chez l'embryon de souris [TFE / Mémoire] / MAROT Jean-Nicolas, Auteur . - 2011.
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Mots-clés : EMBRYOLOGIE , BIOLOGIE MOLECULAIRE , GENE DMRT5 , SYSTEME OLFACTIF DE SOURIS , EMBRYOGENESE Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64906 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire ^Contribution à l'étude du rôle de la protéine codée par le gène C16orf89 dans la thyroïde / Samir EL MAACHI
Titre : ^Contribution à l'étude du rôle de la protéine codée par le gène C16orf89 dans la thyroïde Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Samir EL MAACHI, Auteur Année de publication : 2012 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : BIOLOGIE CLINIQUE , ULB , IRIBHM , GENETIQUE , THYROÏDE , GENE C16orf89 / ROLE PROTEINE , EXPRESSION / SYNTHESE , HISTOLOGIE , IMMUNOHISTOCHIMIE , DOSAGE T4 / TSH BIOLOGIE MOLECULAIRE , PCR Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65101 ^Contribution à l'étude du rôle de la protéine codée par le gène C16orf89 dans la thyroïde [TFE / Mémoire] / Samir EL MAACHI, Auteur . - 2012.
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Mots-clés : BIOLOGIE CLINIQUE , ULB , IRIBHM , GENETIQUE , THYROÏDE , GENE C16orf89 / ROLE PROTEINE , EXPRESSION / SYNTHESE , HISTOLOGIE , IMMUNOHISTOCHIMIE , DOSAGE T4 / TSH BIOLOGIE MOLECULAIRE , PCR Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65101 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Contribution à l’étude du rôle des protéines DUX4 et DUX4c, impliquées dans la dystrophie musculaire facio-scapulo-humérale / NATHAN DEWIT
Titre : Contribution à l’étude du rôle des protéines DUX4 et DUX4c, impliquées dans la dystrophie musculaire facio-scapulo-humérale Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : NATHAN DEWIT, Année de publication : 2016 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : Biologie médicale UMONS service de Biologie Moléculaire muscle strié cellules satellites gène DUX4 gène DUX4c partenaire protéique cavéoles protéines cavéolaires myoblastes immortels congélation des cellules transfert inverse PCR électrophorèse sur gel d'agarose Western Blot électrophorèse sur gel de polyacrylamide blotting Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Remerciements ........................................................................................................................................ 3
INTRODUCTION ................................................................................................................................... 8
Contexte général .................................................................................................................................. 10
1. Le muscle strié squelettique .......................................................................................................... 10
1.1 Structure histologique ........................................................................................................ 10
1.2 Les cellules satellites ......................................................................................................... 11
2. La maladie ................................................................................................................................ 12
2.1 Généralités ......................................................................................................................... 12
2.2 Signes cliniques ................................................................................................................. 13
2.3 Aspects génétiques ............................................................................................................ 14
2.3.1 Le gène DUX4 ........................................................................................................... 15
2.3.2 Le gène DUX4c ......................................................................................................... 15
3. Les partenaires protéiques de DUX4 et DUX4c ...................................................................... 16
3.1 Généralités ......................................................................................................................... 16
3.2 Les partenaires protéiques associés aux ARN messagers.................................................. 16
3.3 Les partenaires protéiques associés au cytosquelette ........................................................ 18
4. Les cavéoles ............................................................................................................................. 18
4.1 Les radeaux lipidiques ....................................................................................................... 18
4.2 Les cavéoles ...................................................................................................................... 19
4.3 Les protéines cavéolaires ................................................................................................... 20
Objectifs et stratégies .......................................................................................................................... 22
Matériel et méthodes ........................................................................................................................... 23
1. Culture cellulaire ........................................................................................................................... 23
1.1 Culture de myoblastes immortels in vitro.......................................................................... 24
1.2 Différenciation de myoblastes in vitro .............................................................................. 25
1.3 Congélation de cellules ...................................................................................................... 26
1.4 Induction iC2C12-DUX4 .................................................................................................. 27
1.5 Transfection inverse des C2C12 ........................................................................................ 28
1.6 Test mycoplasme ............................................................................................................... 29
1.6.1 La Polymerase Chain Reaction (PCR) ...................................................................... 30
1.6.2 Electrophorèse sur gel d’agarose ............................................................................... 32
2. Immunodétection par Western blot .......................................................................................... 32
2.1 Extraits protéiques ............................................................................................................. 33
2.1.1 Extraction nucléaire ................................................................................................... 33
2.1.2 Extraction des protéines ............................................................................................ 34
2.1.3 Préparation des échantillons ...................................................................................... 34
2.2 Dosage protéique BCA ...................................................................................................... 35
2.3 Electrophorèse sur gel de polyacrylamide ......................................................................... 36
2.3.1 Préparation des gels ................................................................................................... 36
2.3.2 Electrophorèse ........................................................................................................... 37
2.4 Transfert sur membrane de nitrocellulose (Blotting)......................................................... 38
2.5 Immunodétection ............................................................................................................... 39
3. Immunofluorescence indirecte ................................................................................................. 42
4. In situ PLA ............................................................................................................................... 44
Résultats ............................................................................................................................................... 47
Partie 1: Validation des partenaires protéiques de DUX4 et DUX4c .................................................... 47
1. Co-immunofluorescence................................................................................................................ 47
1.1 ILF3 ................................................................................................................................... 47
1.1.1 Myoblastes ................................................................................................................. 47
1.1.2 Myoblastes en différenciation (3 jours) ..................................................................... 48
1.2 NF90 .................................................................................................................................. 51
1.2.1 Myoblastes ................................................................................................................. 51
1.2.2 Myoblastes en différenciation (3 jours) ..................................................................... 53
1.3 IGF2BP1 ............................................................................................................................ 55
1.3.1 Stade de prolifération ................................................................................................ 55
2. In situ PLA (Proximity Ligation Assay) .................................................................................. 55
2.1 Myoblastes sains (16 Ubic) sur-exprimant DUX4 ............................................................ 55
2.2 Myoblastes FSHD en différenciation (16 Abic) exprimant DUX4 de manière endogène 57
Partie 2 : la dérégulation des cavines .................................................................................................... 58
1. Induction des iC2C12-DUX4 (myoblastes) .................................................................................. 58
1.1 Immunofluorescence indirecte .......................................................................................... 58
1.1.1 Vérification des conditions d’induction de DUX4 .................................................... 58
1.1.2 La dérégulation des cavines ....................................................................................... 59
1.2 Immunodétection par Western blot ................................................................................... 60
1.2.1 Détection de DUX4 ................................................................................................... 60
1.2.2 Détection des cavines ................................................................................................ 61
2. Différenciation des iC2C12-DUX4 .......................................................................................... 63
3. C2C12 transfectées ................................................................................................................... 65
Discussions ........................................................................................................................................... 67
Partie 1 : les partenaires protéiques de DUX4 et DUX4c ..................................................................... 67
Partie 2 : la dérégulation des cavines .................................................................................................... 69
Conclusion et perspectives .................................................................................................................. 72
Lexique ................................................................................................................................................. 72
Bibliographie ........................................................................................................................................ 74
Annexes ................................................................................................................................................ 78Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65670 Contribution à l’étude du rôle des protéines DUX4 et DUX4c, impliquées dans la dystrophie musculaire facio-scapulo-humérale [TFE / Mémoire] / NATHAN DEWIT, . - 2016.
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Mots-clés : Biologie médicale UMONS service de Biologie Moléculaire muscle strié cellules satellites gène DUX4 gène DUX4c partenaire protéique cavéoles protéines cavéolaires myoblastes immortels congélation des cellules transfert inverse PCR électrophorèse sur gel d'agarose Western Blot électrophorèse sur gel de polyacrylamide blotting Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Remerciements ........................................................................................................................................ 3
INTRODUCTION ................................................................................................................................... 8
Contexte général .................................................................................................................................. 10
1. Le muscle strié squelettique .......................................................................................................... 10
1.1 Structure histologique ........................................................................................................ 10
1.2 Les cellules satellites ......................................................................................................... 11
2. La maladie ................................................................................................................................ 12
2.1 Généralités ......................................................................................................................... 12
2.2 Signes cliniques ................................................................................................................. 13
2.3 Aspects génétiques ............................................................................................................ 14
2.3.1 Le gène DUX4 ........................................................................................................... 15
2.3.2 Le gène DUX4c ......................................................................................................... 15
3. Les partenaires protéiques de DUX4 et DUX4c ...................................................................... 16
3.1 Généralités ......................................................................................................................... 16
3.2 Les partenaires protéiques associés aux ARN messagers.................................................. 16
3.3 Les partenaires protéiques associés au cytosquelette ........................................................ 18
4. Les cavéoles ............................................................................................................................. 18
4.1 Les radeaux lipidiques ....................................................................................................... 18
4.2 Les cavéoles ...................................................................................................................... 19
4.3 Les protéines cavéolaires ................................................................................................... 20
Objectifs et stratégies .......................................................................................................................... 22
Matériel et méthodes ........................................................................................................................... 23
1. Culture cellulaire ........................................................................................................................... 23
1.1 Culture de myoblastes immortels in vitro.......................................................................... 24
1.2 Différenciation de myoblastes in vitro .............................................................................. 25
1.3 Congélation de cellules ...................................................................................................... 26
1.4 Induction iC2C12-DUX4 .................................................................................................. 27
1.5 Transfection inverse des C2C12 ........................................................................................ 28
1.6 Test mycoplasme ............................................................................................................... 29
1.6.1 La Polymerase Chain Reaction (PCR) ...................................................................... 30
1.6.2 Electrophorèse sur gel d’agarose ............................................................................... 32
2. Immunodétection par Western blot .......................................................................................... 32
2.1 Extraits protéiques ............................................................................................................. 33
2.1.1 Extraction nucléaire ................................................................................................... 33
2.1.2 Extraction des protéines ............................................................................................ 34
2.1.3 Préparation des échantillons ...................................................................................... 34
2.2 Dosage protéique BCA ...................................................................................................... 35
2.3 Electrophorèse sur gel de polyacrylamide ......................................................................... 36
2.3.1 Préparation des gels ................................................................................................... 36
2.3.2 Electrophorèse ........................................................................................................... 37
2.4 Transfert sur membrane de nitrocellulose (Blotting)......................................................... 38
2.5 Immunodétection ............................................................................................................... 39
3. Immunofluorescence indirecte ................................................................................................. 42
4. In situ PLA ............................................................................................................................... 44
Résultats ............................................................................................................................................... 47
Partie 1: Validation des partenaires protéiques de DUX4 et DUX4c .................................................... 47
1. Co-immunofluorescence................................................................................................................ 47
1.1 ILF3 ................................................................................................................................... 47
1.1.1 Myoblastes ................................................................................................................. 47
1.1.2 Myoblastes en différenciation (3 jours) ..................................................................... 48
1.2 NF90 .................................................................................................................................. 51
1.2.1 Myoblastes ................................................................................................................. 51
1.2.2 Myoblastes en différenciation (3 jours) ..................................................................... 53
1.3 IGF2BP1 ............................................................................................................................ 55
1.3.1 Stade de prolifération ................................................................................................ 55
2. In situ PLA (Proximity Ligation Assay) .................................................................................. 55
2.1 Myoblastes sains (16 Ubic) sur-exprimant DUX4 ............................................................ 55
2.2 Myoblastes FSHD en différenciation (16 Abic) exprimant DUX4 de manière endogène 57
Partie 2 : la dérégulation des cavines .................................................................................................... 58
1. Induction des iC2C12-DUX4 (myoblastes) .................................................................................. 58
1.1 Immunofluorescence indirecte .......................................................................................... 58
1.1.1 Vérification des conditions d’induction de DUX4 .................................................... 58
1.1.2 La dérégulation des cavines ....................................................................................... 59
1.2 Immunodétection par Western blot ................................................................................... 60
1.2.1 Détection de DUX4 ................................................................................................... 60
1.2.2 Détection des cavines ................................................................................................ 61
2. Différenciation des iC2C12-DUX4 .......................................................................................... 63
3. C2C12 transfectées ................................................................................................................... 65
Discussions ........................................................................................................................................... 67
Partie 1 : les partenaires protéiques de DUX4 et DUX4c ..................................................................... 67
Partie 2 : la dérégulation des cavines .................................................................................................... 69
Conclusion et perspectives .................................................................................................................. 72
Lexique ................................................................................................................................................. 72
Bibliographie ........................................................................................................................................ 74
Annexes ................................................................................................................................................ 78Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65670 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Contribution à l'étude du rôle du récepteur P2Y6 dans la biologie des macrophages : incorporation de LDL et expression de gènes athérogènes / JADOUILLE Maïté
Titre : Contribution à l'étude du rôle du récepteur P2Y6 dans la biologie des macrophages : incorporation de LDL et expression de gènes athérogènes Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : JADOUILLE Maïté, Auteur Année de publication : 2011 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : BIOLOGIE MOLECULAIRE , MALADIE CARDIOVASCULAIRE , PLAQUES ATHEROMATEUSES , LDL , MACROPHAGES , CELLULES SPUMEUSES , RECEPTEUR P2Y6 , GENE ATHEROGENE Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64905 Contribution à l'étude du rôle du récepteur P2Y6 dans la biologie des macrophages : incorporation de LDL et expression de gènes athérogènes [TFE / Mémoire] / JADOUILLE Maïté, Auteur . - 2011.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur
Langues : Français (fre)
Mots-clés : BIOLOGIE MOLECULAIRE , MALADIE CARDIOVASCULAIRE , PLAQUES ATHEROMATEUSES , LDL , MACROPHAGES , CELLULES SPUMEUSES , RECEPTEUR P2Y6 , GENE ATHEROGENE Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64905 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Contribution à l’étude des sémiochimiques impliqués dans la communication inter- et intra- spécifique chez les insectes / VINCENT DEHAUT
PermalinkContribution à la valorisation du xylose issu du végétal par synthèse de composés tensioactifs potentiels mono- et dicaténaires / LECUY Maxime
PermalinkContrôle de la formule leucocytaire. Comparaison entre la méthode microscopique et la méthode par cytométrie en flux avec le CytoDiffTM de Beckman-Coulter / AURORE BOCKSTAEL
PermalinkCONTRÔLE DE QUALITÉ MICROBIOLOGIQUE D’UNE LIGNÉE CELLULAIRE VERO ET ÉVALUATION DE SA SENSIBILITÉ AU VIRUS DE L’ORF / SANDY RIGOT
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PermalinkCréation d’une matrice définissant l’ampleur de la qualification d’un système informatisé selon les critères déterminés lors de son analyse de risques / Ophélie Vaslin
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PermalinkDétermination de l’impact du taux d’anticorps anti-SARS-CoV-2 sur les effets indésirables post- vaccinations et la standardisation du dosage sur le Cobas 8000, Atellica et ETI-MAX3000 / Sara Esen
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PermalinkDéveloppement d’un modèle de sénescence induite par les rayons X / Nicolas Lemaitre
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PermalinkDéveloppement de techniques nécessaires à la transformation génétique du rotifère bdelloïde Adineta vaga / LUDOVIC HERTER
PermalinkDéveloppement d'un test de détection de spermatozoïdes par microscopie en fluorescence : comparaison et optimisation de trois lectines (PSA, PNA et Con A) et d'un inhibiteur de protéase (SBTI) / Christophe Holleville
PermalinkDéveloppement d'un test ELISA de détection du facteur von Willebrand actif et application de la méthode à un échantillon de population TAVI / Manuel CERBAN-BAUTISTA
PermalinkDéveloppement et validation d’une méthode bioanalytique pour la détermination de la base libre de l’adrogolide dans les matrices biologiques / HANDAN ATA
PermalinkDéveloppement et validation d'une méthode de dosage en milieu plasmatique de l'apixaban par UHPLC-MS/MS / AUDREY OKARMUS
PermalinkDéveloppement et validation d’une PCR visant à détecter les gènes impliqués dans la résistance aux antibiotiques chez les entérobactéries / Stéphane TCHATCHOUANG NJINANG
PermalinkDiagnostic de Neisseria gonorrhoeae et Chlamydia trachomatis en routine : étude comparative de trois techniques de biologie moléculaire / Yseure Lucas
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