Centre de Documentation Campus Montignies
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Le Carnet Mémoire de Vie / BOURGAUX Virginie
Titre : Le Carnet Mémoire de Vie Autre titre : un support pour la communication avec les personnes âgées désorientées. Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : BOURGAUX Virginie, Editeur : Charleroi : Haute Ecole Charleroi Europe - ISC Année de publication : 2010 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Mots-clés : ASD = AIDE ET SOINS A DOMICILE AIDES FAMILIALES DU BRABANT WALLON NIVELLES BRAINE L'ALLEUD ASBL : CROIX JAUNE CENTRE DE SERVICES DE MAINTIEN A DOMICILE AIDES FAMILIALES / PERSONNE ÂGÉE AIDE DÉMENCES ALZHEIMER COMMUNICATION VERBALE COMMUNICATION NON VERBALE ÉCOUTE ACTIVE VALIDATION RÉCIT DE VIE DÉONTOLOGIE : AIDES FAMILIALES Index. décimale : TFE Social TFE Social Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=4954 Le Carnet Mémoire de Vie ; un support pour la communication avec les personnes âgées désorientées. [TFE / Mémoire] / BOURGAUX Virginie, . - Charleroi : Haute Ecole Charleroi Europe - ISC, 2010.
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Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Co-intervention en SPJ : « un outil enrichissant lorsque l’on navigue en eaux troubles… » / A. Duwez in Mille Lieux Ouverts, 58 (juin 2018)
[article]
Titre : Co-intervention en SPJ : « un outil enrichissant lorsque l’on navigue en eaux troubles… » Type de document : texte imprimé Auteurs : A. Duwez ; J. Vandecassye Année de publication : 2018 Article en page(s) : p. 13-17 Langues : Français (fre) Mots-clés : SPJ co-intervention Nivelles Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=58915
in Mille Lieux Ouverts > 58 (juin 2018) . - p. 13-17[article] Co-intervention en SPJ : « un outil enrichissant lorsque l’on navigue en eaux troubles… » [texte imprimé] / A. Duwez ; J. Vandecassye . - 2018 . - p. 13-17.
Langues : Français (fre)
in Mille Lieux Ouverts > 58 (juin 2018) . - p. 13-17
Mots-clés : SPJ co-intervention Nivelles Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=58915 Réservation
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Cote Support Localisation Section Disponibilité Revue Revue Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Armoires à volets Disponible
DisponibleConstruction génétique de la protéine C-GFP du virus BVDV / Virginie Coorens
Titre : Construction génétique de la protéine C-GFP du virus BVDV Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Virginie Coorens, Année de publication : 2016 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : Biologie médicale ASBL Culture in vivo Nivelles virus BVD flaviviridae génome viral cycle du virus traduction du génome du virus infection virale transmission virale vaccination transfection passage des cellules microscopie a fluorescence PCR électrophorèse sur gel d'agarose midiprep plasmide plasmide vecteur ligation bactéries compétentes transformation bactérienne miniprep Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Remerciements....................................................................................................................................... 3
Présentation de l’ASBL Culture in vivo .............................................................................................. 7
Introduction ........................................................................................................................................... 9
Partie théorique ................................................................................................................................... 11
1) Historique ................................................................................................................................. 11
2) Caractéristiques d’un virus .................................................................................................... 11
3) Structure du virus BVD .......................................................................................................... 12
3.1) Famille des Flaviviridae .................................................................................................... 12
3.2) Génome viral ..................................................................................................................... 14
3.3) Cycle du virus .................................................................................................................... 15
3.4) Traduction du génome du virus BVD................................................................................ 16
4) Description du virus BVD ....................................................................................................... 17
4.1) Différentes étapes d’une infection virale ........................................................................... 18
4.2) Transmission ..................................................................................................................... 18
4.3) Différence entre un animal infecté de manière permanente et transitoire ......................... 20
5) Diagnostic ................................................................................................................................. 20
6) Prévention ................................................................................................................................ 23
6.1) Prise en charge des bovins ..................................................................................................... 23
6.2) Vaccination ............................................................................................................................ 23
7) Présentation des plasmides utilisés ........................................................................................ 25
Partie pratique ..................................................................................................................................... 27
1) Objectif et stratégie ................................................................................................................. 27
2) Matériel et méthodes ............................................................................................................... 28
2.1) Techniques associées à la culture cellulaire ...................................................................... 28
a) Passage des cellules ............................................................................................................... 28
b) Transfection ........................................................................................................................... 28
c) Microscopie à fluorescence ................................................................................................... 29
2.2) Techniques associées à la biologie moléculaire ................................................................ 29
a) Midiprep ................................................................................................................................ 29
b) PCR : Polymerase Chain Reaction ........................................................................................ 29
c) Electrophorèse sur gel d’agarose ........................................................................................... 31
d) Préparation du plasmide vecteur pEGFP-N1 par BamHI et HindIII ..................................... 32
Vérification de la double digestion du plasmide pEGFP-N1 ................................................ 32
Préparation du plasmide vecteur ........................................................................................... 32
e) Concentration du plasmide vecteur pEFGP-N1 .................................................................... 32
f) Ligation ................................................................................................................................. 32
g) Préparation des bactéries compétentes .................................................................................. 32
h) Transformation bactérienne ................................................................................................... 32
i) Miniprep ................................................................................................................................ 33
3) Résultats ................................................................................................................................... 34
a) Stratégie de la construction génétique ................................................................................... 34
b) Vérification du plasmide pEGFP-N1 .................................................................................... 36
Transfection des cellules COS-7 ........................................................................................... 36
Electrophorèse sur gel d’agarose ........................................................................................... 36
Spectrophotométrie ............................................................................................................... 37
c) Amplification de l’insert (gène C) par PCR .......................................................................... 38
d) Double digestion du plasmide pEGFP-N1 par BamHI et HindIII ......................................... 39
e) Préparation du plasmide vecteur pEGFP-N1 par les enzymes de restriction BamHI et HindIII ………………………………………………………………………………………………………………………………………….40
f) Double digestion du produit PCR par BamHI et HindIII .......................................................... 41
g) Digestion enzymatique du produit PCR par BamHI et HindIII ............................................ 43
h) Ligation ................................................................................................................................. 44
i) Transformation bactérienne ................................................................................................... 45
j) Criblage par miniprep ............................................................................................................ 45
k) Transfection ........................................................................................................................... 49
4) Discussion ................................................................................................................................. 50
Conclusion et perspectives .................................................................................................................. 53
Annexes ................................................................................................................................................ 55
Annexe 1 : Carte du plasmide pEGFP-N1 ............................................................................ 55
Annexe 2 : Mode opératoire ................................................................................................... 56
Annexe 3 : Préparation de différentes solutions ................................................................... 64
Liste des figures ................................................................................................................................... 67
Liste des tableaux ................................................................................................................................ 69
Liste des abréviations .......................................................................................................................... 71
Bibliographie ........................................................................................................................................ 73Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65664 Construction génétique de la protéine C-GFP du virus BVDV [TFE / Mémoire] / Virginie Coorens, . - 2016.
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Langues : Français (fre)
Mots-clés : Biologie médicale ASBL Culture in vivo Nivelles virus BVD flaviviridae génome viral cycle du virus traduction du génome du virus infection virale transmission virale vaccination transfection passage des cellules microscopie a fluorescence PCR électrophorèse sur gel d'agarose midiprep plasmide plasmide vecteur ligation bactéries compétentes transformation bactérienne miniprep Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Remerciements....................................................................................................................................... 3
Présentation de l’ASBL Culture in vivo .............................................................................................. 7
Introduction ........................................................................................................................................... 9
Partie théorique ................................................................................................................................... 11
1) Historique ................................................................................................................................. 11
2) Caractéristiques d’un virus .................................................................................................... 11
3) Structure du virus BVD .......................................................................................................... 12
3.1) Famille des Flaviviridae .................................................................................................... 12
3.2) Génome viral ..................................................................................................................... 14
3.3) Cycle du virus .................................................................................................................... 15
3.4) Traduction du génome du virus BVD................................................................................ 16
4) Description du virus BVD ....................................................................................................... 17
4.1) Différentes étapes d’une infection virale ........................................................................... 18
4.2) Transmission ..................................................................................................................... 18
4.3) Différence entre un animal infecté de manière permanente et transitoire ......................... 20
5) Diagnostic ................................................................................................................................. 20
6) Prévention ................................................................................................................................ 23
6.1) Prise en charge des bovins ..................................................................................................... 23
6.2) Vaccination ............................................................................................................................ 23
7) Présentation des plasmides utilisés ........................................................................................ 25
Partie pratique ..................................................................................................................................... 27
1) Objectif et stratégie ................................................................................................................. 27
2) Matériel et méthodes ............................................................................................................... 28
2.1) Techniques associées à la culture cellulaire ...................................................................... 28
a) Passage des cellules ............................................................................................................... 28
b) Transfection ........................................................................................................................... 28
c) Microscopie à fluorescence ................................................................................................... 29
2.2) Techniques associées à la biologie moléculaire ................................................................ 29
a) Midiprep ................................................................................................................................ 29
b) PCR : Polymerase Chain Reaction ........................................................................................ 29
c) Electrophorèse sur gel d’agarose ........................................................................................... 31
d) Préparation du plasmide vecteur pEGFP-N1 par BamHI et HindIII ..................................... 32
Vérification de la double digestion du plasmide pEGFP-N1 ................................................ 32
Préparation du plasmide vecteur ........................................................................................... 32
e) Concentration du plasmide vecteur pEFGP-N1 .................................................................... 32
f) Ligation ................................................................................................................................. 32
g) Préparation des bactéries compétentes .................................................................................. 32
h) Transformation bactérienne ................................................................................................... 32
i) Miniprep ................................................................................................................................ 33
3) Résultats ................................................................................................................................... 34
a) Stratégie de la construction génétique ................................................................................... 34
b) Vérification du plasmide pEGFP-N1 .................................................................................... 36
Transfection des cellules COS-7 ........................................................................................... 36
Electrophorèse sur gel d’agarose ........................................................................................... 36
Spectrophotométrie ............................................................................................................... 37
c) Amplification de l’insert (gène C) par PCR .......................................................................... 38
d) Double digestion du plasmide pEGFP-N1 par BamHI et HindIII ......................................... 39
e) Préparation du plasmide vecteur pEGFP-N1 par les enzymes de restriction BamHI et HindIII ………………………………………………………………………………………………………………………………………….40
f) Double digestion du produit PCR par BamHI et HindIII .......................................................... 41
g) Digestion enzymatique du produit PCR par BamHI et HindIII ............................................ 43
h) Ligation ................................................................................................................................. 44
i) Transformation bactérienne ................................................................................................... 45
j) Criblage par miniprep ............................................................................................................ 45
k) Transfection ........................................................................................................................... 49
4) Discussion ................................................................................................................................. 50
Conclusion et perspectives .................................................................................................................. 53
Annexes ................................................................................................................................................ 55
Annexe 1 : Carte du plasmide pEGFP-N1 ............................................................................ 55
Annexe 2 : Mode opératoire ................................................................................................... 56
Annexe 3 : Préparation de différentes solutions ................................................................... 64
Liste des figures ................................................................................................................................... 67
Liste des tableaux ................................................................................................................................ 69
Liste des abréviations .......................................................................................................................... 71
Bibliographie ........................................................................................................................................ 73Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65664 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Expression des protéines E2 et C recombinantes du virus BVDV dans un système de cellules de mammifères in vitro / Yohan Kellner
Titre : Expression des protéines E2 et C recombinantes du virus BVDV dans un système de cellules de mammifères in vitro Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Yohan Kellner, Auteur ; Bernard Couvreur, Directeur de la recherche Année de publication : 2015 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale ASBL CULTURE IN VIVO Nivelles Maladie : bovins BVDV Diarrhée bovine virales Virus Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Résumé
Le BVDV (Bovin Viral Diarrhea Virus) est responsable de la diarrhée bovine virale. Les virus BVDV comprend deux espèces qui sont le BVDV1 et le BVDV2. Ces deux espèces induisent la même pathologie. Le BVDV infecte les bovins via les fluides des bovins infectés ou par transmission transplacentaire. Les bovins adultes infectés n’ont généralement peu de symptômes mais certaines souches virulentes du BVDV2 induisent une thrombocytopénie. Les iPi (animal ayant développé une immunotolérance) possèdent une souche BVDV non cytopathogène qui mute en BVDV cytopathogène, ce qui induit la maladie des muqueuses mortelle pour le veau.
Diverses mesures préventives ont été développées : isolement des bovins infectés, abattage, vaccination des bovins. Les vaccins à ADN montrent leur efficacité par la synthèse des protéines E2 du virus. Cette protéine est immunogène mais les deux espèces du virus BVDV synthétisent une E2 différente. Dans son génome, le virus BVDV contient la protéine de nucléocapside C qui est peu immunogène et ne varie pas selon les souches.
Au début, l’objectif était de construire un plasmide pCDNA3 recombinant gD-E2.1-E2.2, gD-E2.2-E2.1, C-E2, gD-E2.2t et gD2.1t. Les constructions génétiques de départ étaient gD-E2.1, gD-E2.2; la détection de la protéine E2 par les réactifs sérologiques disponibles au laboratoire ne peut pas se faire car ces réactifs ont une réactivité trop faible pour être utilisés. D’autres constructions ont été choisies : E2.1-gfp, E2.2-gfp, C-gfp et gD-gfp. Ces plasmides ont été choisis pour la synthèse d’une protéine fusion E2.1-GFP, E2.2-GFP, gD-GFP et C-GFP car le MCS se situe en aval du gène de la gfp, ce qui permet à la cellule de synthétiser une protéine fusion. La protéine fusion E2-GFP permettra de mettre en évidence la localisation de la protéine E2. La protéine fusion C-GFP permettra de vérifier son excrétion et la création d’une pseudo-particule. La détection des protéines fusions se fera par microscopie à fluorescence. La conception de la stratégie de clonage se fait par simulation informatique. La stratégie de clonage se porte sur la production d’insert par PCR. La fabrication du vecteur se fait par double digestion de pEGFP-N1 par restriction enzymatique.
Un essai de clonage du gène E2.2 dans pEGFP-N1 a été réalisé. Malheureusement aucun plasmide recombinant n’a été retenu. Le projet devrait être poursuivi en améliorant les conditions de PCR et les conditions de clonages. Les gènes viraux E2 et C mais non gD peuvent être amplifiés par PCR.Note de contenu : Table des matières :
REMERCIEMENTS ________________________________________________ 4
ASBL « CULTURE IN VIVO » _____________________________________ 5
INTRODUCTION : _________________________________________________ 6
1. PARTIE THÉORIQUE _________________________________________ 8
1.1. Flaviviridae _____________________________________________________ 8
1.2. Virus BVDV ____________________________________________________ 10
a. La pathologie du virus BVDV ______________________________________ 10
b. Génome viral __________________________________________________ 12
c. Cycle du virus __________________________________________________ 13
d. Traduction du génome viral _______________________________________ 14
1.3. Diagnostic du virus BVDV ________________________________________ 16
1.4. Prise en charge des cas positifs ____________________________________ 17
1.5. Prévention du virus BVDV ________________________________________ 17
1.6. Présentation des plasmides utilisés ________________________________ 19
2. PARTIE PRATIQUE _________________________________________ 20
2.1. Objectif et stratégie _____________________________________________ 20
2.2. Réactifs particuliers _____________________________________________ 21
2.3. Matériels et méthodes __________________________________________ 22
a. Culture cellulaire________________________________________________ 22
i) Passage de cellule. ____________________________________________ 22
ii) Transfection _________________________________________________ 23
iii) Mode opératoire _____________________________________________ 25
b. Microscopie fluorescente _________________________________________ 25
c. Programmes de bioinformatique ___________________________________ 26
d. Biologie moléculaire _____________________________________________ 27
i) PCR (polymerase chain reaction) _________________________________ 27
ii) Électrophorèse sur gel d’agarose _________________________________ 31
iii) Préparation des produits PCR à insérer dans le vecteur. _______________ 31
iv) Préparation du plasmide vecteur pEGFP-N1 ________________________ 32
v) Ligation _____________________________________________________ 32
vi) Transformation bactérienne. ____________________________________ 33
vii) Miniprep ____________________________________________________ 33
2.4. Résultats expérimentaux _________________________________________ 34
a. Vérification des plasmides contenant les différents gènes E2 et le plasmide pEGFP-N1. _________________________________________________________ 34
i) Plasmide pEGFP-N1 : __________________________________________ 34
ii) Tests sérologiques ____________________________________________ 36
b. Clonage des gènes viraux _________________________________________ 40
i) Conception des amorces PCR ____________________________________ 41
ii) PCR des gènes E2, C et gD ______________________________________ 42
iii) Préparation du plasmide vecteur pEGFP-N1 par HindIII et BamHI _______ 45
iv) Préparation du plasmide vecteur _________________________________ 46
v) Transformation des bactéries TG1 avec le produit de ligation __________ 48Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65488 Expression des protéines E2 et C recombinantes du virus BVDV dans un système de cellules de mammifères in vitro [TFE / Mémoire] / Yohan Kellner, Auteur ; Bernard Couvreur, Directeur de la recherche . - 2015.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : biologie médicale ASBL CULTURE IN VIVO Nivelles Maladie : bovins BVDV Diarrhée bovine virales Virus Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Résumé
Le BVDV (Bovin Viral Diarrhea Virus) est responsable de la diarrhée bovine virale. Les virus BVDV comprend deux espèces qui sont le BVDV1 et le BVDV2. Ces deux espèces induisent la même pathologie. Le BVDV infecte les bovins via les fluides des bovins infectés ou par transmission transplacentaire. Les bovins adultes infectés n’ont généralement peu de symptômes mais certaines souches virulentes du BVDV2 induisent une thrombocytopénie. Les iPi (animal ayant développé une immunotolérance) possèdent une souche BVDV non cytopathogène qui mute en BVDV cytopathogène, ce qui induit la maladie des muqueuses mortelle pour le veau.
Diverses mesures préventives ont été développées : isolement des bovins infectés, abattage, vaccination des bovins. Les vaccins à ADN montrent leur efficacité par la synthèse des protéines E2 du virus. Cette protéine est immunogène mais les deux espèces du virus BVDV synthétisent une E2 différente. Dans son génome, le virus BVDV contient la protéine de nucléocapside C qui est peu immunogène et ne varie pas selon les souches.
Au début, l’objectif était de construire un plasmide pCDNA3 recombinant gD-E2.1-E2.2, gD-E2.2-E2.1, C-E2, gD-E2.2t et gD2.1t. Les constructions génétiques de départ étaient gD-E2.1, gD-E2.2; la détection de la protéine E2 par les réactifs sérologiques disponibles au laboratoire ne peut pas se faire car ces réactifs ont une réactivité trop faible pour être utilisés. D’autres constructions ont été choisies : E2.1-gfp, E2.2-gfp, C-gfp et gD-gfp. Ces plasmides ont été choisis pour la synthèse d’une protéine fusion E2.1-GFP, E2.2-GFP, gD-GFP et C-GFP car le MCS se situe en aval du gène de la gfp, ce qui permet à la cellule de synthétiser une protéine fusion. La protéine fusion E2-GFP permettra de mettre en évidence la localisation de la protéine E2. La protéine fusion C-GFP permettra de vérifier son excrétion et la création d’une pseudo-particule. La détection des protéines fusions se fera par microscopie à fluorescence. La conception de la stratégie de clonage se fait par simulation informatique. La stratégie de clonage se porte sur la production d’insert par PCR. La fabrication du vecteur se fait par double digestion de pEGFP-N1 par restriction enzymatique.
Un essai de clonage du gène E2.2 dans pEGFP-N1 a été réalisé. Malheureusement aucun plasmide recombinant n’a été retenu. Le projet devrait être poursuivi en améliorant les conditions de PCR et les conditions de clonages. Les gènes viraux E2 et C mais non gD peuvent être amplifiés par PCR.Note de contenu : Table des matières :
REMERCIEMENTS ________________________________________________ 4
ASBL « CULTURE IN VIVO » _____________________________________ 5
INTRODUCTION : _________________________________________________ 6
1. PARTIE THÉORIQUE _________________________________________ 8
1.1. Flaviviridae _____________________________________________________ 8
1.2. Virus BVDV ____________________________________________________ 10
a. La pathologie du virus BVDV ______________________________________ 10
b. Génome viral __________________________________________________ 12
c. Cycle du virus __________________________________________________ 13
d. Traduction du génome viral _______________________________________ 14
1.3. Diagnostic du virus BVDV ________________________________________ 16
1.4. Prise en charge des cas positifs ____________________________________ 17
1.5. Prévention du virus BVDV ________________________________________ 17
1.6. Présentation des plasmides utilisés ________________________________ 19
2. PARTIE PRATIQUE _________________________________________ 20
2.1. Objectif et stratégie _____________________________________________ 20
2.2. Réactifs particuliers _____________________________________________ 21
2.3. Matériels et méthodes __________________________________________ 22
a. Culture cellulaire________________________________________________ 22
i) Passage de cellule. ____________________________________________ 22
ii) Transfection _________________________________________________ 23
iii) Mode opératoire _____________________________________________ 25
b. Microscopie fluorescente _________________________________________ 25
c. Programmes de bioinformatique ___________________________________ 26
d. Biologie moléculaire _____________________________________________ 27
i) PCR (polymerase chain reaction) _________________________________ 27
ii) Électrophorèse sur gel d’agarose _________________________________ 31
iii) Préparation des produits PCR à insérer dans le vecteur. _______________ 31
iv) Préparation du plasmide vecteur pEGFP-N1 ________________________ 32
v) Ligation _____________________________________________________ 32
vi) Transformation bactérienne. ____________________________________ 33
vii) Miniprep ____________________________________________________ 33
2.4. Résultats expérimentaux _________________________________________ 34
a. Vérification des plasmides contenant les différents gènes E2 et le plasmide pEGFP-N1. _________________________________________________________ 34
i) Plasmide pEGFP-N1 : __________________________________________ 34
ii) Tests sérologiques ____________________________________________ 36
b. Clonage des gènes viraux _________________________________________ 40
i) Conception des amorces PCR ____________________________________ 41
ii) PCR des gènes E2, C et gD ______________________________________ 42
iii) Préparation du plasmide vecteur pEGFP-N1 par HindIII et BamHI _______ 45
iv) Préparation du plasmide vecteur _________________________________ 46
v) Transformation des bactéries TG1 avec le produit de ligation __________ 48Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65488 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Mise en place d’une plateforme de détection des mycoplasmes contaminants des cultures de cellules par PCR « end point » / Amin SAIDOUN
Titre : Mise en place d’une plateforme de détection des mycoplasmes contaminants des cultures de cellules par PCR « end point » Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Amin SAIDOUN, Auteur Année de publication : 2014 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : BIOLOGIE MÉDICALE CULTURE IN VIVO NIVELLES MYCOPLASMES CONTAMINATION CULTURES DE CELLULES PCR TD-PCR ELECTROPHORESE ADN COS 7 VERO Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65409 Mise en place d’une plateforme de détection des mycoplasmes contaminants des cultures de cellules par PCR « end point » [TFE / Mémoire] / Amin SAIDOUN, Auteur . - 2014.
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Mots-clés : BIOLOGIE MÉDICALE CULTURE IN VIVO NIVELLES MYCOPLASMES CONTAMINATION CULTURES DE CELLULES PCR TD-PCR ELECTROPHORESE ADN COS 7 VERO Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65409 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Les Services d'Aide à l'Intégration et l'intégration scolaire. La réalité du terrain. / Quentin VERDA
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