Centre de Documentation Campus Montignies
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Lundi : 8h-18h30
Mardi : 8h-18h30
Mercredi 9h-16h30
Jeudi : 8h-18h30
Vendredi : 8h-16h30
Votre centre de documentation fermera à 17h30 ce mardi 4 juin.
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Développement d’un système mini-fluidique pour le diagnostic de la malaria / Sélimè OZVER
Titre : Développement d’un système mini-fluidique pour le diagnostic de la malaria Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Sélimè OZVER, Auteur Année de publication : 2014 Langues : Français (fre) Mots-clés : BIOLOGIE MÉDICALE UNIVERSITE DE MONS SYSTEME MINI-FLUIDIQUE MALARIA PALUDISME TRANSMISSION CLINIQUE TRAITEMENT PIGMENT MALARIQUE FROTTIS SANGUINS MICROSCOPIE GOUTTE EPAISSE BETA_HEMATINE CHROMATOGRAPHIE Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65420 Développement d’un système mini-fluidique pour le diagnostic de la malaria [TFE / Mémoire] / Sélimè OZVER, Auteur . - 2014.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : BIOLOGIE MÉDICALE UNIVERSITE DE MONS SYSTEME MINI-FLUIDIQUE MALARIA PALUDISME TRANSMISSION CLINIQUE TRAITEMENT PIGMENT MALARIQUE FROTTIS SANGUINS MICROSCOPIE GOUTTE EPAISSE BETA_HEMATINE CHROMATOGRAPHIE Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65420 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Évaluation d’un rôle cytoplasmique des protéines DUX4 et DUX4c, impliquées dans la dystrophie musculaire FSHD, par l’étude de partenaires protéiques et ARN / Maëlle Sciot
Titre : Évaluation d’un rôle cytoplasmique des protéines DUX4 et DUX4c, impliquées dans la dystrophie musculaire FSHD, par l’étude de partenaires protéiques et ARN Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Maëlle Sciot, Auteur ; Frédérick COPPEE, Directeur de la recherche Année de publication : 2017 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale Université de Mons laboratoire de biologie moléculaire. Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Remerciements
Présentation du lieu de stage
Introduction ........................................................................................................................ 9
Contexte théorique ............................................................................................................ 9
1. Muscle strié squelettique ............................................................................................ 9
1.1 Structure microscopique ..................................................................................... 9
1.2 Myoblastes ......................................................................................................... 10
2. FSHD .......................................................................................................................... 11
2.1 Signes cliniques .................................................................................................. 11
2.2 Traitement ......................................................................................................... 13
2.3 Cause génétique ................................................................................................ 13
2.3.1 La FSHD 1 ................................................................................................. 13
2.3.2 La FSHD 2 ................................................................................................. 14
2.3.3 Condition permissive : signal de polyadénylation en aval de D4Z4 ........ 16
3. Les gènes DUX4 ......................................................................................................... 17
4. Protéines partenaires de DUX4 et DUX4c ................................................................. 19
4.1 Protéines associées au cytosquelette ................................................................ 19
4.1.1 Desmine ................................................................................................... 19
4.1.2 Dynéine .................................................................................................... 20
4.2 Protéines associées aux ARN ............................................................................. 20
4.2.1 IGF2BP1 .................................................................................................... 21
5. Hypothèse du laboratoire sur le rôle cytoplasmique des protéines DUX ................. 23
Objectifs et stratégies....................................................................................................... 25
Matériel et méthode ........................................................................................................ 21
1.Culture cellulaire ........................................................................................................ 26
1.1 Culture de myoblastes in vitro ........................................................................... 26
1.2 Transfection de myoblastes immortalisés ......................................................... 27
1.3 Test mycoplasme ............................................................................................... 28
1.3.1 PCR ........................................................................................................... 28
1.3.2 Electrophorèse sur gel d’agarose ........................................................... 29
2. Immunofluorescence................................................................................................. 29
3. In situ PLA .................................................................................................................. 31
4. RT-qPCR ..................................................................................................................... 32
Résultats ........................................................................................................................... 34
1. Localisation des partenaires protéiques de DUX4 ................................................... 34
1.1 Localisation d’IGF2BP1 et de la dynéine dans les cellules musculaires saines . 34
1.1.1 Prolifération ............................................................................................. 34
1.1.2 Différenciation ......................................................................................... 34
1.2 Localisation d’IGF2BP1 et de la dynéine dans les cellules musculaires FSHD ... 36
1.2.1 Prolifération ............................................................................................. 36
1.2.2 Différenciation ......................................................................................... 36
2. Détermination du domaine d’interaction de DUX4 avec les partenaires protéiques IGF2BP1 et ILF3 .............................................................................................................. 38
2.1 IGF2BP1 .............................................................................................................. 39
2.1 ILF3 ..................................................................................................................... 40
3. Détermination des interactions protéiques (DUX4 et partenaires) dans les myotubes FSHD ............................................................................................................. 41
3.1 Interactions protéiques avec DUX4 endogène .................................................. 42
3.2 Interactions entre différentes protéines partenaires potentiels ...................... 43
4. Expression de H19, ARN lié à IGF2BP1, dans les cellules musculaires saines et FSHD ....................................................................................................................................... 44
5. Validation d’amorces permettant l’amplification d’ARNs liés à IGF2BP1 ................. 45
Discussion ......................................................................................................................... 48
1. Localisation des partenaires protéiques de DUX4 ................................................... 48
2. Détermination du domaine d’interaction de DUX4 avec les partenaires protéiques IGF2BP1 et ILF3 .............................................................................................................. 49
2.1 IGF2BP1 .............................................................................................................. 49
2.1 ILF3 ..................................................................................................................... 50
3. Détermination des interactions protéiques (DUX4 et partenaires) dans les myotubes FSHD ............................................................................................................. 50
3.1 Interactions protéiques avec DUX4 endogène .................................................. 51
3.2 Interactions entre différentes protéines partenaires potentiels ...................... 51
4. Expression de H19, ARN lié à IGF2BP1, dans les cellules musculaires saines et FSHD ....................................................................................................................................... 52
5. Validation d’amorces permettant l’amplification d’ARNs liés à IGF2BP1 .................... 53
Conclusion ......................................................................................................................... 55
Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65852 Évaluation d’un rôle cytoplasmique des protéines DUX4 et DUX4c, impliquées dans la dystrophie musculaire FSHD, par l’étude de partenaires protéiques et ARN [TFE / Mémoire] / Maëlle Sciot, Auteur ; Frédérick COPPEE, Directeur de la recherche . - 2017.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : biologie médicale Université de Mons laboratoire de biologie moléculaire. Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Remerciements
Présentation du lieu de stage
Introduction ........................................................................................................................ 9
Contexte théorique ............................................................................................................ 9
1. Muscle strié squelettique ............................................................................................ 9
1.1 Structure microscopique ..................................................................................... 9
1.2 Myoblastes ......................................................................................................... 10
2. FSHD .......................................................................................................................... 11
2.1 Signes cliniques .................................................................................................. 11
2.2 Traitement ......................................................................................................... 13
2.3 Cause génétique ................................................................................................ 13
2.3.1 La FSHD 1 ................................................................................................. 13
2.3.2 La FSHD 2 ................................................................................................. 14
2.3.3 Condition permissive : signal de polyadénylation en aval de D4Z4 ........ 16
3. Les gènes DUX4 ......................................................................................................... 17
4. Protéines partenaires de DUX4 et DUX4c ................................................................. 19
4.1 Protéines associées au cytosquelette ................................................................ 19
4.1.1 Desmine ................................................................................................... 19
4.1.2 Dynéine .................................................................................................... 20
4.2 Protéines associées aux ARN ............................................................................. 20
4.2.1 IGF2BP1 .................................................................................................... 21
5. Hypothèse du laboratoire sur le rôle cytoplasmique des protéines DUX ................. 23
Objectifs et stratégies....................................................................................................... 25
Matériel et méthode ........................................................................................................ 21
1.Culture cellulaire ........................................................................................................ 26
1.1 Culture de myoblastes in vitro ........................................................................... 26
1.2 Transfection de myoblastes immortalisés ......................................................... 27
1.3 Test mycoplasme ............................................................................................... 28
1.3.1 PCR ........................................................................................................... 28
1.3.2 Electrophorèse sur gel d’agarose ........................................................... 29
2. Immunofluorescence................................................................................................. 29
3. In situ PLA .................................................................................................................. 31
4. RT-qPCR ..................................................................................................................... 32
Résultats ........................................................................................................................... 34
1. Localisation des partenaires protéiques de DUX4 ................................................... 34
1.1 Localisation d’IGF2BP1 et de la dynéine dans les cellules musculaires saines . 34
1.1.1 Prolifération ............................................................................................. 34
1.1.2 Différenciation ......................................................................................... 34
1.2 Localisation d’IGF2BP1 et de la dynéine dans les cellules musculaires FSHD ... 36
1.2.1 Prolifération ............................................................................................. 36
1.2.2 Différenciation ......................................................................................... 36
2. Détermination du domaine d’interaction de DUX4 avec les partenaires protéiques IGF2BP1 et ILF3 .............................................................................................................. 38
2.1 IGF2BP1 .............................................................................................................. 39
2.1 ILF3 ..................................................................................................................... 40
3. Détermination des interactions protéiques (DUX4 et partenaires) dans les myotubes FSHD ............................................................................................................. 41
3.1 Interactions protéiques avec DUX4 endogène .................................................. 42
3.2 Interactions entre différentes protéines partenaires potentiels ...................... 43
4. Expression de H19, ARN lié à IGF2BP1, dans les cellules musculaires saines et FSHD ....................................................................................................................................... 44
5. Validation d’amorces permettant l’amplification d’ARNs liés à IGF2BP1 ................. 45
Discussion ......................................................................................................................... 48
1. Localisation des partenaires protéiques de DUX4 ................................................... 48
2. Détermination du domaine d’interaction de DUX4 avec les partenaires protéiques IGF2BP1 et ILF3 .............................................................................................................. 49
2.1 IGF2BP1 .............................................................................................................. 49
2.1 ILF3 ..................................................................................................................... 50
3. Détermination des interactions protéiques (DUX4 et partenaires) dans les myotubes FSHD ............................................................................................................. 50
3.1 Interactions protéiques avec DUX4 endogène .................................................. 51
3.2 Interactions entre différentes protéines partenaires potentiels ...................... 51
4. Expression de H19, ARN lié à IGF2BP1, dans les cellules musculaires saines et FSHD ....................................................................................................................................... 52
5. Validation d’amorces permettant l’amplification d’ARNs liés à IGF2BP1 .................... 53
Conclusion ......................................................................................................................... 55
Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65852 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Mise au point et optimisation d’une méthode d’extraction sur culture cellulaire permettant l’analyse métabonomique des intermédiaires du cycle de krebs par spectrométrie de résonance magnétique nucléaire du proton / Sarah Storder
Titre : Mise au point et optimisation d’une méthode d’extraction sur culture cellulaire permettant l’analyse métabonomique des intermédiaires du cycle de krebs par spectrométrie de résonance magnétique nucléaire du proton Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Sarah Storder, Auteur ; J-M Colet, Directeur de la recherche Année de publication : 2017 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale Université de Mons laboratoire de biologie humaine et toxicologie. Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières :
Présentation du lieu de stage :......................................................................................................... 6
Introduction : .................................................................................................................................... 7
Problématique : .............................................................................................................................. 19
Matériel et Méthodes : .................................................................................................................. 23
Volet animal : ....................................................................................................................... 25
1) Animaux : espèces et souches : ........................................................................................ 25
2) Récolte des échantillons : ................................................................................................. 26
Volet Cellulaire : ................................................................................................................... 27
1) Décongélation : ................................................................................................................ 28
2) Entretien des Cultures : .................................................................................................... 29
3) Passage cellulaire : ........................................................................................................... 29
4) Récolte des échantillons cellulaires : Scraping ................................................................. 29
5) Extraction : ....................................................................................................................... 30
Volet préparation des échantillons : .................................................................................... 31
1) Urines : ............................................................................................................................. 31
2) Extractions cellulaires : ..................................................................................................... 31
3) Milieux de culture :........................................................................................................... 33
Volet analyse des spectres : ................................................................................................. 34
1) Acquisition des spectres : ................................................................................................. 34
2) Traitement des spectres : ................................................................................................. 34
Résultats : ....................................................................................................................................... 36
Analyse des spectres RMN des urines de rats contrôles : ................................................... 38
Libération des intermédiaires du cycle de Krebs : ............................................................... 40
1) Utilisation d’un pH de travail basique : ............................................................................ 41
2) Double procédure d’extraction : ...................................................................................... 41
Concentration des échantillons : .......................................................................................... 44
1) Utilisation de tubes microcapillaires : .............................................................................. 45
2) Augmentation du nombre de cellules : ............................................................................ 45
3) Influence du nombre de scans : ....................................................................................... 47
4) Analyse des milieux extracellulaires :............................................................................... 47
Discussion : ..................................................................................................................................... 50
Libération des intermédiaires du cycle de Krebs : ............................................................... 50
1) Utilisation de pH basique : ............................................................................................... 50
2) Double extraction : ........................................................................................................... 51
Concentration des échantillons : .......................................................................................... 51
1) Utilisation de microcapillaires : ........................................................................................ 51
Les intermédiaires du cycle de Krebs ne sont pas non plus visualisés sur le spectre obtenu au moyen d’une analyse en microcapillaire. Toutefois l’amélioration flagrante du signal obtenu dans cette condition est très encourageante. ......................................................... 51
2) Concentration des flasques : ............................................................................................ 52
3) Influence du nombre de scans : ....................................................................................... 53
4) Milieux extracellulaires : .................................................................................................. 53
Conclusion : .................................................................................................................................... 54
Perspectives : ................................................................................................................................. 55
Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65853 Mise au point et optimisation d’une méthode d’extraction sur culture cellulaire permettant l’analyse métabonomique des intermédiaires du cycle de krebs par spectrométrie de résonance magnétique nucléaire du proton [TFE / Mémoire] / Sarah Storder, Auteur ; J-M Colet, Directeur de la recherche . - 2017.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : biologie médicale Université de Mons laboratoire de biologie humaine et toxicologie. Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières :
Présentation du lieu de stage :......................................................................................................... 6
Introduction : .................................................................................................................................... 7
Problématique : .............................................................................................................................. 19
Matériel et Méthodes : .................................................................................................................. 23
Volet animal : ....................................................................................................................... 25
1) Animaux : espèces et souches : ........................................................................................ 25
2) Récolte des échantillons : ................................................................................................. 26
Volet Cellulaire : ................................................................................................................... 27
1) Décongélation : ................................................................................................................ 28
2) Entretien des Cultures : .................................................................................................... 29
3) Passage cellulaire : ........................................................................................................... 29
4) Récolte des échantillons cellulaires : Scraping ................................................................. 29
5) Extraction : ....................................................................................................................... 30
Volet préparation des échantillons : .................................................................................... 31
1) Urines : ............................................................................................................................. 31
2) Extractions cellulaires : ..................................................................................................... 31
3) Milieux de culture :........................................................................................................... 33
Volet analyse des spectres : ................................................................................................. 34
1) Acquisition des spectres : ................................................................................................. 34
2) Traitement des spectres : ................................................................................................. 34
Résultats : ....................................................................................................................................... 36
Analyse des spectres RMN des urines de rats contrôles : ................................................... 38
Libération des intermédiaires du cycle de Krebs : ............................................................... 40
1) Utilisation d’un pH de travail basique : ............................................................................ 41
2) Double procédure d’extraction : ...................................................................................... 41
Concentration des échantillons : .......................................................................................... 44
1) Utilisation de tubes microcapillaires : .............................................................................. 45
2) Augmentation du nombre de cellules : ............................................................................ 45
3) Influence du nombre de scans : ....................................................................................... 47
4) Analyse des milieux extracellulaires :............................................................................... 47
Discussion : ..................................................................................................................................... 50
Libération des intermédiaires du cycle de Krebs : ............................................................... 50
1) Utilisation de pH basique : ............................................................................................... 50
2) Double extraction : ........................................................................................................... 51
Concentration des échantillons : .......................................................................................... 51
1) Utilisation de microcapillaires : ........................................................................................ 51
Les intermédiaires du cycle de Krebs ne sont pas non plus visualisés sur le spectre obtenu au moyen d’une analyse en microcapillaire. Toutefois l’amélioration flagrante du signal obtenu dans cette condition est très encourageante. ......................................................... 51
2) Concentration des flasques : ............................................................................................ 52
3) Influence du nombre de scans : ....................................................................................... 53
4) Milieux extracellulaires : .................................................................................................. 53
Conclusion : .................................................................................................................................... 54
Perspectives : ................................................................................................................................. 55
Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65853 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire