Centre de Documentation Campus Montignies
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Lundi : 8h-18h30
Mardi : 8h-18h30
Mercredi 9h-16h30
Jeudi : 8h-18h30
Vendredi : 8h-16h30
Attention, votre centre de documentation sera fermé du 27/04 au 12/05 inclus.
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Contribution à l’étude des sémiochimiques impliqués dans la communication inter- et intra- spécifique chez les insectes / VINCENT DEHAUT
Titre : Contribution à l’étude des sémiochimiques impliqués dans la communication inter- et intra- spécifique chez les insectes Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : VINCENT DEHAUT, Auteur Année de publication : 2013 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : BIOLOGIE MÉDICALE SEMIOCHIMIQUE COMMUNICATION CHIMIQUE:INSECTES PHEROMONES ALLELOCHIMIE.PUCERONS FOURMIS CECIDOMYIE ÉQUESTRE COCCINELLE ASIATIQUE MICRO EXTRACTION EN PHASE SOLIDE SPME ESTÉRIFICATION SPECTROMÉTRIE DE MASSE Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65250 Contribution à l’étude des sémiochimiques impliqués dans la communication inter- et intra- spécifique chez les insectes [TFE / Mémoire] / VINCENT DEHAUT, Auteur . - 2013.
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Langues : Français (fre)
Mots-clés : BIOLOGIE MÉDICALE SEMIOCHIMIQUE COMMUNICATION CHIMIQUE:INSECTES PHEROMONES ALLELOCHIMIE.PUCERONS FOURMIS CECIDOMYIE ÉQUESTRE COCCINELLE ASIATIQUE MICRO EXTRACTION EN PHASE SOLIDE SPME ESTÉRIFICATION SPECTROMÉTRIE DE MASSE Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65250 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Contribution à la valorisation du xylose issu du végétal par synthèse de composés tensioactifs potentiels mono- et dicaténaires / LECUY Maxime
Titre : Contribution à la valorisation du xylose issu du végétal par synthèse de composés tensioactifs potentiels mono- et dicaténaires Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : LECUY Maxime, Année de publication : 2010 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Mots-clés : CHIMIE ORGANIQUE VALORISATION BIOMASSE LIGNOCELLULOSE XYLOSE BIORAFFINAGE AGENTS TENSIOACTIFS GLYCOLISATION ESTERIFICATION CHROMATOGRAPHIE RMN SPECTROMETRIE DE MASSE INFRAROUGE Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64735 Contribution à la valorisation du xylose issu du végétal par synthèse de composés tensioactifs potentiels mono- et dicaténaires [TFE / Mémoire] / LECUY Maxime, . - 2010.
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Mots-clés : CHIMIE ORGANIQUE VALORISATION BIOMASSE LIGNOCELLULOSE XYLOSE BIORAFFINAGE AGENTS TENSIOACTIFS GLYCOLISATION ESTERIFICATION CHROMATOGRAPHIE RMN SPECTROMETRIE DE MASSE INFRAROUGE Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64735 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Contrôle de la formule leucocytaire. Comparaison entre la méthode microscopique et la méthode par cytométrie en flux avec le CytoDiffTM de Beckman-Coulter / AURORE BOCKSTAEL
Titre : Contrôle de la formule leucocytaire. Comparaison entre la méthode microscopique et la méthode par cytométrie en flux avec le CytoDiffTM de Beckman-Coulter Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : AURORE BOCKSTAEL, Auteur Année de publication : 2013 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : BIOLOGIE MÉDICALE FORMULE LEUCOCYTAIRE MICROSCOPIE CYTOMETRIE DE FLUX CYTODIFF FROTTIS LEUCOCYTES AUTOMATE BECKMAN-COULTER Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65244 Contrôle de la formule leucocytaire. Comparaison entre la méthode microscopique et la méthode par cytométrie en flux avec le CytoDiffTM de Beckman-Coulter [TFE / Mémoire] / AURORE BOCKSTAEL, Auteur . - 2013.
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Langues : Français (fre)
Mots-clés : BIOLOGIE MÉDICALE FORMULE LEUCOCYTAIRE MICROSCOPIE CYTOMETRIE DE FLUX CYTODIFF FROTTIS LEUCOCYTES AUTOMATE BECKMAN-COULTER Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65244 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire CONTRÔLE DE QUALITÉ MICROBIOLOGIQUE D’UNE LIGNÉE CELLULAIRE VERO ET ÉVALUATION DE SA SENSIBILITÉ AU VIRUS DE L’ORF / SANDY RIGOT
Titre : CONTRÔLE DE QUALITÉ MICROBIOLOGIQUE D’UNE LIGNÉE CELLULAIRE VERO ET ÉVALUATION DE SA SENSIBILITÉ AU VIRUS DE L’ORF Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : SANDY RIGOT, Auteur ; Rudiger Raue, Directeur de la recherche Année de publication : 2015 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale Zoetis Virus de l'ORF Lignée cellulaire Vero Cultures cellulaires Virologie Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : La culture cellulaire est à la base de nombreuses applications dans le domaine de la recherche et de l’industrie. Afin de pouvoir garantir l’exactitude des résultats expérimentaux ou la qualité d’une production, les lignées cellulaires utilisées doivent être certifiées exemptes de contamination.
Au cours de mon stage au sein du département de Recherche et Développement de la société pharmaceutique Zoetis, j’ai été amenée à amplifier des cellules Vero provenant de l’American Type Culture Collection (ATCC) afin d’en réaliser des banques de réserve et de travail, et à en réaliser le contrôle de qualité microbiologique suivant les recommandations de la Pharmacopée Européenne. Dans cette optique, la contamination par des mycoplasmes a été testée par PCR en temps réel, alors que la présence d’autres bactéries, de levures ou de champignons a été vérifiée par un test de stérilité. Au terme de l’expérience, les résultats obtenus ont montré l’absence de tout microorganisme précité.
La lignée cellulaire étant certifiée saine, nous avons voulu de plus vérifier la permissivité des cellules à deux souches de Parapoxvirus ovis, appelées D1701-B et D1701-V. La méthode de coloration immunohistochimique a montré des plages de lyse uniquement pour D1701-V. Ce résultat était attendu puisque D1701-V est une souche dérivée de D1701-B conçue spécifiquement pour proliférer dans les cellules Vero.
Enfin, dans le cadre des recherches effectuées au sein du laboratoire sur D1701-V (excellent candidat pour la création de vaccins recombinants), nous avons comparé l’efficacité de la propagation de la souche dans notre lignée d’intérêt avec deux autres lignées Vero (en provenance du Friedrich Loeffler Institute en Allemagne et du laboratoire de contrôle qualité de Zoetis). Après titrage de la souche pour les trois lignées et ce à des multiplicités d’infection de 0,5 et de 5, il s’est avéré que la lignée provenant de l’ATCC montrait une plus grande efficacité que les deux autres pour la multiplication virale.
En conclusion, nous avons obtenu une lignée cellulaire exempte de contamination et très efficace pour la prolifération de la souche D1701-V de Parapoxvirus ovis. Cette lignée pourra donc servir à la mise au point d’une méthode de titrage viral par culture cellulaire ainsi qu’à d’autres projets futurs au sein du département. De plus, elle pourra éventuellement remplacer l’utilisation des cellules Vero provenant du laboratoire QC pour la recherche sur D1701-V.Note de contenu : Table des matières
Présentation du lieu de stage ...................................................................................................... 6
Introduction générale.................................................................................................................... 7
Partie théorique .............................................................................................................................. 8
1. La culture cellulaire ...............................................................................................................8
1.1. Définition .........................................................................................................................8
1.2. Types de cultures cellulaires ............................................................................................8
1.3. Applications .....................................................................................................................9
1.4. Historique de la lignée cellulaire Vero ............................................................................9
2. La contamination des cultures cellulaires ............................................................................10
2.1. Types de contamination .................................................................................................10
2.1.1. Contamination chimique ........................................................................................10
2.1.2. Contamination biologique ......................................................................................10
2.2. Techniques aseptiques ...................................................................................................11
2.3. Contamination par les mycoplasmes .............................................................................11
2.3.1. Caractéristiques ......................................................................................................11
2.3.2. Sources de mycoplasmes dans les cultures cellulaires ...........................................12
2.3.3. Effets de la contamination sur les cellules .............................................................12
2.3.4. Détection des mycoplasmes ...................................................................................13
2.3.4.1. Méthodes de détection et recommandations de la Pharmacopée Européenne .13
2.3.4.2. Principe de la PCR en temps réel .....................................................................14
2.3.5. Elimination des mycoplasmes ................................................................................17
2.4. Contamination par les bactéries, levures ou champignons ............................................18
2.4.1. Visualisation de la contamination ..........................................................................18
2.4.2. Détection de la contamination par le test de stérilité ..............................................18
2.4.3. Elimination de la contamination.............................................................................19
3. Virologie : utilisation de deux souches de Parapoxvirus ovis .............................................19
Partie pratique .............................................................................................................................. 21
1. Objectifs et stratégie.............................................................................................................21
2. Matériel et méthodes ............................................................................................................22
2.1. Création de la « Master Cell Bank » (MCB) et de la « Working Cell Bank » (WCB) .22
2.1.1. Matériel et réactifs ..................................................................................................22
2.1.2. Préparation des milieux ..........................................................................................23
2.1.2.1. Milieu de maintenance .....................................................................................23
2.1.2.2. Milieu de congélation .......................................................................................23
2.1.3. Décongélation des cellules .....................................................................................23
2.1.4. Comptage cellulaire ................................................................................................23
2.1.4.1. Principe .............................................................................................................23
2.1.4.2. Méthode ............................................................................................................24
2.1.5. Passage des cellules ................................................................................................25
2.1.5.1. Principe .............................................................................................................25
2.1.5.2. Méthode ............................................................................................................25
2.1.6. Congélation des cellules (cryopréservation) ..........................................................26
2.1.6.1. Principe .............................................................................................................26
2.1.6.2. Méthode ............................................................................................................26
2.2. Détection de la contamination par les bactéries, levures ou champignons ....................27
2.2.1. Test de stérilité .......................................................................................................27
2.2.1.1. Matériel et réactifs ............................................................................................27
2.2.1.2. Principe et méthode ..........................................................................................27
2.2.2. Test de promotion de la croissance ........................................................................28
2.2.2.1. Matériel et réactifs ............................................................................................28
2.2.2.2. Principe et méthode ..........................................................................................29
2.3. Détection de la contamination par les mycoplasmes .....................................................30
2.3.1. Extraction de l’ADN des mycoplasmes .................................................................30
2.3.1.1. Matériel et réactifs ............................................................................................30
2.3.1.2. Méthode ............................................................................................................31
2.3.2. PCR en temps réel ..................................................................................................32
2.3.2.1. Matériel et réactifs ............................................................................................32
2.3.2.2. Méthode ............................................................................................................33
2.4. Virologie ........................................................................................................................35
2.4.1. Matériel et réactifs ..................................................................................................35
2.4.2. Comparaison de l’infection des cellules Vero ATCC par les virus D1701-V et D1701-B ...............................................................................................................................35
2.4.2.1. Inoculation des 2 souches virales sur les cellules Vero ATCC ........................35
2.4.2.2. Coloration immunohistochimique des plages de lyse ......................................36
2.4.3. Comparaison de l’infectivité du D1701-V sur différentes lignées cellulaires Vero….. ................................................................................................................................37
2.4.3.1. Inoculation des différentes lignées cellulaires Vero .........................................37
2.4.3.2. Titrage du virus par le calcul du nombre de plages de lyse sur cellules Vero ATCC…. ..........................................................................................................................37
3. Résultats et discussion .........................................................................................................38
3.1. Création de la « Master Cell Bank » et de la « Working Cell Bank » ...........................38
3.2. Détection de la contamination par des bactéries, levures ou champignons ...................39
3.2.1. Vérification de la stérilité de l’environnement de travail durant le test de stérilité39
3.2.2. Inoculation des différents milieux de culture .........................................................39
3.2.3. Test de promotion de la croissance ........................................................................40
3.2.4. Test de stérilité .......................................................................................................41
3.3. Détection de la contamination par des mycoplasmes ....................................................43
3.4. Virologie ........................................................................................................................46
3.4.1. Comparaison de l’infection des cellules Vero ATCC par les souches du virus de l’orf D1701-B et D1701-V ...................................................................................................46
3.4.2. Comparaison de l’infectivité de la souche D1701-V sur différentes lignées cellulaires Vero ....................................................................................................................47
Conclusion générale et perspectives ....................................................................................... 50
Liste des abréviations ................................................................................................................. 51
Bibliographie ................................................................................................................................ 53Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65173 CONTRÔLE DE QUALITÉ MICROBIOLOGIQUE D’UNE LIGNÉE CELLULAIRE VERO ET ÉVALUATION DE SA SENSIBILITÉ AU VIRUS DE L’ORF [TFE / Mémoire] / SANDY RIGOT, Auteur ; Rudiger Raue, Directeur de la recherche . - 2015.
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Langues : Français (fre)
Mots-clés : biologie médicale Zoetis Virus de l'ORF Lignée cellulaire Vero Cultures cellulaires Virologie Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : La culture cellulaire est à la base de nombreuses applications dans le domaine de la recherche et de l’industrie. Afin de pouvoir garantir l’exactitude des résultats expérimentaux ou la qualité d’une production, les lignées cellulaires utilisées doivent être certifiées exemptes de contamination.
Au cours de mon stage au sein du département de Recherche et Développement de la société pharmaceutique Zoetis, j’ai été amenée à amplifier des cellules Vero provenant de l’American Type Culture Collection (ATCC) afin d’en réaliser des banques de réserve et de travail, et à en réaliser le contrôle de qualité microbiologique suivant les recommandations de la Pharmacopée Européenne. Dans cette optique, la contamination par des mycoplasmes a été testée par PCR en temps réel, alors que la présence d’autres bactéries, de levures ou de champignons a été vérifiée par un test de stérilité. Au terme de l’expérience, les résultats obtenus ont montré l’absence de tout microorganisme précité.
La lignée cellulaire étant certifiée saine, nous avons voulu de plus vérifier la permissivité des cellules à deux souches de Parapoxvirus ovis, appelées D1701-B et D1701-V. La méthode de coloration immunohistochimique a montré des plages de lyse uniquement pour D1701-V. Ce résultat était attendu puisque D1701-V est une souche dérivée de D1701-B conçue spécifiquement pour proliférer dans les cellules Vero.
Enfin, dans le cadre des recherches effectuées au sein du laboratoire sur D1701-V (excellent candidat pour la création de vaccins recombinants), nous avons comparé l’efficacité de la propagation de la souche dans notre lignée d’intérêt avec deux autres lignées Vero (en provenance du Friedrich Loeffler Institute en Allemagne et du laboratoire de contrôle qualité de Zoetis). Après titrage de la souche pour les trois lignées et ce à des multiplicités d’infection de 0,5 et de 5, il s’est avéré que la lignée provenant de l’ATCC montrait une plus grande efficacité que les deux autres pour la multiplication virale.
En conclusion, nous avons obtenu une lignée cellulaire exempte de contamination et très efficace pour la prolifération de la souche D1701-V de Parapoxvirus ovis. Cette lignée pourra donc servir à la mise au point d’une méthode de titrage viral par culture cellulaire ainsi qu’à d’autres projets futurs au sein du département. De plus, elle pourra éventuellement remplacer l’utilisation des cellules Vero provenant du laboratoire QC pour la recherche sur D1701-V.Note de contenu : Table des matières
Présentation du lieu de stage ...................................................................................................... 6
Introduction générale.................................................................................................................... 7
Partie théorique .............................................................................................................................. 8
1. La culture cellulaire ...............................................................................................................8
1.1. Définition .........................................................................................................................8
1.2. Types de cultures cellulaires ............................................................................................8
1.3. Applications .....................................................................................................................9
1.4. Historique de la lignée cellulaire Vero ............................................................................9
2. La contamination des cultures cellulaires ............................................................................10
2.1. Types de contamination .................................................................................................10
2.1.1. Contamination chimique ........................................................................................10
2.1.2. Contamination biologique ......................................................................................10
2.2. Techniques aseptiques ...................................................................................................11
2.3. Contamination par les mycoplasmes .............................................................................11
2.3.1. Caractéristiques ......................................................................................................11
2.3.2. Sources de mycoplasmes dans les cultures cellulaires ...........................................12
2.3.3. Effets de la contamination sur les cellules .............................................................12
2.3.4. Détection des mycoplasmes ...................................................................................13
2.3.4.1. Méthodes de détection et recommandations de la Pharmacopée Européenne .13
2.3.4.2. Principe de la PCR en temps réel .....................................................................14
2.3.5. Elimination des mycoplasmes ................................................................................17
2.4. Contamination par les bactéries, levures ou champignons ............................................18
2.4.1. Visualisation de la contamination ..........................................................................18
2.4.2. Détection de la contamination par le test de stérilité ..............................................18
2.4.3. Elimination de la contamination.............................................................................19
3. Virologie : utilisation de deux souches de Parapoxvirus ovis .............................................19
Partie pratique .............................................................................................................................. 21
1. Objectifs et stratégie.............................................................................................................21
2. Matériel et méthodes ............................................................................................................22
2.1. Création de la « Master Cell Bank » (MCB) et de la « Working Cell Bank » (WCB) .22
2.1.1. Matériel et réactifs ..................................................................................................22
2.1.2. Préparation des milieux ..........................................................................................23
2.1.2.1. Milieu de maintenance .....................................................................................23
2.1.2.2. Milieu de congélation .......................................................................................23
2.1.3. Décongélation des cellules .....................................................................................23
2.1.4. Comptage cellulaire ................................................................................................23
2.1.4.1. Principe .............................................................................................................23
2.1.4.2. Méthode ............................................................................................................24
2.1.5. Passage des cellules ................................................................................................25
2.1.5.1. Principe .............................................................................................................25
2.1.5.2. Méthode ............................................................................................................25
2.1.6. Congélation des cellules (cryopréservation) ..........................................................26
2.1.6.1. Principe .............................................................................................................26
2.1.6.2. Méthode ............................................................................................................26
2.2. Détection de la contamination par les bactéries, levures ou champignons ....................27
2.2.1. Test de stérilité .......................................................................................................27
2.2.1.1. Matériel et réactifs ............................................................................................27
2.2.1.2. Principe et méthode ..........................................................................................27
2.2.2. Test de promotion de la croissance ........................................................................28
2.2.2.1. Matériel et réactifs ............................................................................................28
2.2.2.2. Principe et méthode ..........................................................................................29
2.3. Détection de la contamination par les mycoplasmes .....................................................30
2.3.1. Extraction de l’ADN des mycoplasmes .................................................................30
2.3.1.1. Matériel et réactifs ............................................................................................30
2.3.1.2. Méthode ............................................................................................................31
2.3.2. PCR en temps réel ..................................................................................................32
2.3.2.1. Matériel et réactifs ............................................................................................32
2.3.2.2. Méthode ............................................................................................................33
2.4. Virologie ........................................................................................................................35
2.4.1. Matériel et réactifs ..................................................................................................35
2.4.2. Comparaison de l’infection des cellules Vero ATCC par les virus D1701-V et D1701-B ...............................................................................................................................35
2.4.2.1. Inoculation des 2 souches virales sur les cellules Vero ATCC ........................35
2.4.2.2. Coloration immunohistochimique des plages de lyse ......................................36
2.4.3. Comparaison de l’infectivité du D1701-V sur différentes lignées cellulaires Vero….. ................................................................................................................................37
2.4.3.1. Inoculation des différentes lignées cellulaires Vero .........................................37
2.4.3.2. Titrage du virus par le calcul du nombre de plages de lyse sur cellules Vero ATCC…. ..........................................................................................................................37
3. Résultats et discussion .........................................................................................................38
3.1. Création de la « Master Cell Bank » et de la « Working Cell Bank » ...........................38
3.2. Détection de la contamination par des bactéries, levures ou champignons ...................39
3.2.1. Vérification de la stérilité de l’environnement de travail durant le test de stérilité39
3.2.2. Inoculation des différents milieux de culture .........................................................39
3.2.3. Test de promotion de la croissance ........................................................................40
3.2.4. Test de stérilité .......................................................................................................41
3.3. Détection de la contamination par des mycoplasmes ....................................................43
3.4. Virologie ........................................................................................................................46
3.4.1. Comparaison de l’infection des cellules Vero ATCC par les souches du virus de l’orf D1701-B et D1701-V ...................................................................................................46
3.4.2. Comparaison de l’infectivité de la souche D1701-V sur différentes lignées cellulaires Vero ....................................................................................................................47
Conclusion générale et perspectives ....................................................................................... 50
Liste des abréviations ................................................................................................................. 51
Bibliographie ................................................................................................................................ 53Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65173 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire La coqueluche : vers une optimalisation du diagnostic / Arnaud ROSOMME
Titre : La coqueluche : vers une optimalisation du diagnostic Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Arnaud ROSOMME, Auteur ; Patrick Vankerkhoven, Directeur de la recherche Année de publication : 2017 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale Clinique Notre Dame de Grace de gosselies laboratoire de microbiologie. Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Présentation du lieu de stage : 9
Introduction : 13
1 Partie théorique 15
1.1 Coqueluche : 15
1.1.1 Agent pathogène, réservoir, source 15
1.1.2 Pathogenèse 15
1.1.3 Epidémiologie générale 15
1.1.4 Viabilité, résistance physico-chimique 16
1.1.5 Incubation 16
1.1.6 Mode de transmission 16
1.1.7 Contagiosité 17
1.1.8 Diagnostic clinique 17
1.1.9 Diagnostique biologique 18
1.1.10 Population à risque 19
1.1.11 Prise en charge du patient 19
1.2 Vaccination 21
1.2.1 Vaccination à germes entiers 21
1.2.2 Vaccination acellulaire (antigènes purifiés) 22
1.3 La coqueluche : vers une optimalisation du diagnostic 22
1.3.1 PCR 22
1.3.2 Illumigen 22
1.4 Sérologie 28
1.4.1 ALEGRIA (CNDG) 28
1.4.2 Virion (ISP) 32
2 Partie pratique 35
2.1 Illumigene (CNDG) 35
2.1.1 But 35
2.1.2 Matériels et méthodes 35
2.1.3 Résultat 39
2.1.4 Discussion 41
2.2 ALEGRIA (CNDG) 42
2.2.1 But 42
2.2.2 Matériels et méthodes 43
2.2.3 Résultat 44
2.2.4 Discussion 47
Conclusion générale 51
Bibliographie 53
Annexe
Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65851 La coqueluche : vers une optimalisation du diagnostic [TFE / Mémoire] / Arnaud ROSOMME, Auteur ; Patrick Vankerkhoven, Directeur de la recherche . - 2017.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : biologie médicale Clinique Notre Dame de Grace de gosselies laboratoire de microbiologie. Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Présentation du lieu de stage : 9
Introduction : 13
1 Partie théorique 15
1.1 Coqueluche : 15
1.1.1 Agent pathogène, réservoir, source 15
1.1.2 Pathogenèse 15
1.1.3 Epidémiologie générale 15
1.1.4 Viabilité, résistance physico-chimique 16
1.1.5 Incubation 16
1.1.6 Mode de transmission 16
1.1.7 Contagiosité 17
1.1.8 Diagnostic clinique 17
1.1.9 Diagnostique biologique 18
1.1.10 Population à risque 19
1.1.11 Prise en charge du patient 19
1.2 Vaccination 21
1.2.1 Vaccination à germes entiers 21
1.2.2 Vaccination acellulaire (antigènes purifiés) 22
1.3 La coqueluche : vers une optimalisation du diagnostic 22
1.3.1 PCR 22
1.3.2 Illumigen 22
1.4 Sérologie 28
1.4.1 ALEGRIA (CNDG) 28
1.4.2 Virion (ISP) 32
2 Partie pratique 35
2.1 Illumigene (CNDG) 35
2.1.1 But 35
2.1.2 Matériels et méthodes 35
2.1.3 Résultat 39
2.1.4 Discussion 41
2.2 ALEGRIA (CNDG) 42
2.2.1 But 42
2.2.2 Matériels et méthodes 43
2.2.3 Résultat 44
2.2.4 Discussion 47
Conclusion générale 51
Bibliographie 53
Annexe
Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65851 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Création d’une matrice définissant l’ampleur de la qualification d’un système informatisé selon les critères déterminés lors de son analyse de risques / Ophélie Vaslin
PermalinkCytoDiff™ de la formule sanguine et comparaison par rapport aux méthodes de références / LEON NTHEUBISSE
PermalinkDépistage MDRO : quelles méthodes pour une détection rapide et efficace ? / Julie Charles
PermalinkDépistage du portage de bactéries productrices de carbapénémases de type KPC, NDM et OXA-48 par technique d’immunochromatographie latérale en plaque / Angélique DEPOUHON
PermalinkDépistage systématique des hémoglobinopathies chez les nouveaux-nés sur sang de cordon par Capillarys / BARREAU Dominique
PermalinkLe dépistage systématique des hémoglobinopathies sur sang de cordon par la méthode de Capillarys / Jullyan NITELET
PermalinkDétection de la carbapénèmase OXA- 48 par technique immunochromatographique : Influence de la variation de culture. / Michael DOSEN
PermalinkDétection de Clostridioides difficile dans les selles : réflexion sur l’organigramme décisionnel actuel / Laurane Chavée
PermalinkDétection du Clostridium difficile toxinogène : rapidité et efficacité, deux termes compatibles en 2012 / Caroline DE LEEUW
PermalinkDétection du facteur rhumatoîde : Waaler-Rose, ELISA, Néphélométrie : comparaison et corrélation / PERDIEU Jonathan
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