Centre de Documentation Campus Montignies
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Lundi : 8h-18h30
Mardi : 8h-18h30
Mercredi 9h-16h30
Jeudi : 8h-18h30
Vendredi : 8h-16h30
Votre centre de documentation fermera à 17h30 ce mardi 4 juin.
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Implémentation du dosage d’ADAMTS13 dans un laboratoire / Sébastien SEMPO
Titre : Implémentation du dosage d’ADAMTS13 dans un laboratoire Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Sébastien SEMPO, Auteur Année de publication : 2014 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : BIOLOGIE MÉDICALE HOPITAL ERASME ULB BRUXELLES ADAMTS13 HEMOSTASE VWF PATHOLOGIE ELISA FRETS TECHNOCLONE TECHNOZYM Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65411 Implémentation du dosage d’ADAMTS13 dans un laboratoire [TFE / Mémoire] / Sébastien SEMPO, Auteur . - 2014.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur
Langues : Français (fre)
Mots-clés : BIOLOGIE MÉDICALE HOPITAL ERASME ULB BRUXELLES ADAMTS13 HEMOSTASE VWF PATHOLOGIE ELISA FRETS TECHNOCLONE TECHNOZYM Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65411 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire L’implémentation du dosage de la CDT par l’électrophorèse capillaire / Samia Oulhaj
Titre : L’implémentation du dosage de la CDT par l’électrophorèse capillaire Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Samia Oulhaj, Auteur ; Jérôme Cornil, Directeur de la recherche Editeur : Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale Année de publication : 2022 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : CDT IFCC transferrine standardisation implémentation électrophorèse capillaire Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : L’intérêt principal de ce travail de fin d’étude est l’implémentation du dosage de la CDT par électrophorèse capillaire dans le laboratoire su CHRSM du site de la Sambre. La CDT ( carbohydrate-deficient transferrine) est un marqueur d’éthylisme chronique, avec une meilleur sensibilité et spécificité que les autre marqueurs biologiques historiques citée dans ce travail. La consommation d’alcool altère la métabolisation de la transferrine, en altérant des enzymes hépatique, le pourcentage en CDT se voit alors augmenté. Le dosage de la CDT est prescrit pour détecter une consommation précoce d’un éthylisme chronique pour prévenir des complication hépatique par exemple, le suivi de sevrage à l’alcool, dans la médecine de travail, comme pour l’obtention d’un certificat de pilote d’avion, ou encore la réattribution ou suspension du permis de conduite. La standardisation mis en place par l’IFCC, ne contribue pas qu’à l’étalonnage du dosage, mais aussi à la redéfinition de CDT, seul la disialotransferrine sera dosée, l’asialotransferrine ne sera plus compris dans la valeurs de CDT due à son instabilité. La standardisation du dosage de la CDT montre d’excellent résultats de répétabilité et de reproductibilité par rapport aux résultats du dosage non calibrée. Les limites de dosage manipulations ont mis en évidence l’interférence par le pics monoclonaux ou polyclonaux rencontrés lors de électrophorèses des protéines sériques. Note de contenu : Présentation du lieu de stage ............................................................................................. 4
Introduction générale......................................................................................................... 5
Contexte général ................................................................................................................ 6
1. Chapitre 1 : La CDT .............................................................................................................. 6
1.1. Consommation d’alcool .................................................................................................................. 6
1.2. L’alcool ............................................................................................................................................ 7
1.3. Marqueurs biologiques d’éthylisme ............................................................................................... 8
1.4. La Transferrine et ses isoformes ................................................................................................... 10
1.5. L’alcool et la transferrine .............................................................................................................. 12
1.6. La CDT ........................................................................................................................................... 13
2. Chapitre 2 : L’électrophorèse capillaire ............................................................................. 25
2.1. Principe ......................................................................................................................................... 25
2.2. Composition .................................................................................................................................. 26
2.3. Exemples de dosage ...................................................................................................................... 27
Objectifs et stratégie ........................................................................................................ 31
Matériels et méthodes ..................................................................................................... 32
1. Réactifs ............................................................................................................................. 32
1.1. Kit capillarys® CDT ......................................................................................................................... 32
1.2. Autres réactifs, contrôles et calibreur........................................................................................... 33
2. Matériels et appareils ....................................................................................................... 33
2.1. Matériels ....................................................................................................................................... 33
2.2. Appareil ......................................................................................................................................... 34
3. Échantillons ...................................................................................................................... 35
4. Implémentation du dosage ............................................................................................... 35
5. Calibration ........................................................................................................................ 36
6. Contrôle normal et pathologique ...................................................................................... 37
7. La fidélité .......................................................................................................................... 37
8. La répétabilité ................................................................................................................... 38
9. La reproductibilité ............................................................................................................. 38
10. La stabilité .................................................................................................................... 38
11. Interférences du dosage ................................................................................................ 39
11.1. L’hémolyse .................................................................................................................................... 39
11.2. Variantes génétiques de la transferrine ........................................................................................ 39
11.3. Lésions hépatiques (maladie grave en phase terminale). ............................................................. 39
11.4. Les composants monoclonaux ou fraction polyclonale élevée ..................................................... 40
Résultats .......................................................................................................................... 41
1. Calibration ........................................................................................................................ 41
1.1. Calibration à l’installation ............................................................................................................. 41
1.2. Calibration changement de lot...................................................................................................... 41
3
2. Évaluation de la répétabilité ............................................................................................. 42
2.1. Répétabilité .................................................................................................................. 42
2.2. Répétabilité du POOL bas ............................................................................................................. 43
2.3. Répétabilité du POOL intermédiaire ............................................................................................ 44
2.4. Répétabilité du POOL intermédiaire ............................................................................................ 45
2.5. Répétabilité du POOL haut ........................................................................................................... 46
2.6. Répétabilité du POOL haut ........................................................................................................... 47
3. Évaluation de la reproductibilité ....................................................................................... 48
3.1. Reproductibilité « Contrôle normal » ........................................................................................... 48
3.2. Reproductibilité « Contrôle pathologique » ................................................................................. 49
3.3. Reproductibilité « contrôle normal » inter lot .............................................................................. 50
4. Stabilité du sérum pour le dosage de la CDT ...................................................................... 51
5. Interférences .................................................................................................................... 54
5.1. Variants transferrines ................................................................................................................... 54
5.2. L’hémolyse .................................................................................................................................... 55
5.3. Analyse d’interférences apporté par les blocs beta- gamma des électrogrammes des protéines
sérique 56
5.4. Analyse d’interférences apporté par des pics monoclonaux ou polyclonaux des électrogrammes
des protéines sérique .................................................................................................................................. 57
6. Comparaison des résultats avec le laboratoire sous-traitant. ............................................ 60
7. Résultats d’échantillon du laboratoire partenaire ............................................................. 62
8. Exemples de dosage de CDT de patients en urgence .......................................................... 62
9. Suivi de patient éthylique lors d’une hospitalisation ......................................................... 63
Discussion ........................................................................................................................ 64
1. La calibration (Point 1 page 40) ......................................................................................... 64
2. Évaluation de la répétabilité et la reproductivité de la CDT et CDT-IFCC (Point 2 et 3 pages
41-46 et 47-49) .......................................................................................................................... 65
4.1. Variants transferrine (Point 5.1 pages 53) .................................................................................... 67
4.2. L’hémolyse. (Point 5.2 pages 54) .................................................................................................. 67
4.3. Analyse d’interférences apporté par des blocs beta-gamma des électrogrammes des protéines
sérique (Point 5.3 page 55) ......................................................................................................................... 69
5. Comparaison des résultats avec le laboratoire sous-traitant. (Point 6 pages 59-60) ........... 70
6. Comparaison des résultats avec le laboratoire partenaire. (Point 7 des résultats à la page
61) 71
7. Dosage de la CDT de patients en urgences. (Point 8 des résultats à la page 61) ................. 71
8. Suivi de patient éthylique lors d’une hospitalisation (Point 9 des résultats de la page 62) . 71
Conclusion........................................................................................................................ 73
Liste des figures ............................................................................................................... 74
Liste des tables ................................................................................................................. 76
Bibliographie ................................................................................................................... 77
Annexes ........................................................................................................................... 80
Résumé ............................................................................................................................ 83Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=105748 L’implémentation du dosage de la CDT par l’électrophorèse capillaire [TFE / Mémoire] / Samia Oulhaj, Auteur ; Jérôme Cornil, Directeur de la recherche . - Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale, 2022.
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Langues : Français (fre)
Mots-clés : CDT IFCC transferrine standardisation implémentation électrophorèse capillaire Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : L’intérêt principal de ce travail de fin d’étude est l’implémentation du dosage de la CDT par électrophorèse capillaire dans le laboratoire su CHRSM du site de la Sambre. La CDT ( carbohydrate-deficient transferrine) est un marqueur d’éthylisme chronique, avec une meilleur sensibilité et spécificité que les autre marqueurs biologiques historiques citée dans ce travail. La consommation d’alcool altère la métabolisation de la transferrine, en altérant des enzymes hépatique, le pourcentage en CDT se voit alors augmenté. Le dosage de la CDT est prescrit pour détecter une consommation précoce d’un éthylisme chronique pour prévenir des complication hépatique par exemple, le suivi de sevrage à l’alcool, dans la médecine de travail, comme pour l’obtention d’un certificat de pilote d’avion, ou encore la réattribution ou suspension du permis de conduite. La standardisation mis en place par l’IFCC, ne contribue pas qu’à l’étalonnage du dosage, mais aussi à la redéfinition de CDT, seul la disialotransferrine sera dosée, l’asialotransferrine ne sera plus compris dans la valeurs de CDT due à son instabilité. La standardisation du dosage de la CDT montre d’excellent résultats de répétabilité et de reproductibilité par rapport aux résultats du dosage non calibrée. Les limites de dosage manipulations ont mis en évidence l’interférence par le pics monoclonaux ou polyclonaux rencontrés lors de électrophorèses des protéines sériques. Note de contenu : Présentation du lieu de stage ............................................................................................. 4
Introduction générale......................................................................................................... 5
Contexte général ................................................................................................................ 6
1. Chapitre 1 : La CDT .............................................................................................................. 6
1.1. Consommation d’alcool .................................................................................................................. 6
1.2. L’alcool ............................................................................................................................................ 7
1.3. Marqueurs biologiques d’éthylisme ............................................................................................... 8
1.4. La Transferrine et ses isoformes ................................................................................................... 10
1.5. L’alcool et la transferrine .............................................................................................................. 12
1.6. La CDT ........................................................................................................................................... 13
2. Chapitre 2 : L’électrophorèse capillaire ............................................................................. 25
2.1. Principe ......................................................................................................................................... 25
2.2. Composition .................................................................................................................................. 26
2.3. Exemples de dosage ...................................................................................................................... 27
Objectifs et stratégie ........................................................................................................ 31
Matériels et méthodes ..................................................................................................... 32
1. Réactifs ............................................................................................................................. 32
1.1. Kit capillarys® CDT ......................................................................................................................... 32
1.2. Autres réactifs, contrôles et calibreur........................................................................................... 33
2. Matériels et appareils ....................................................................................................... 33
2.1. Matériels ....................................................................................................................................... 33
2.2. Appareil ......................................................................................................................................... 34
3. Échantillons ...................................................................................................................... 35
4. Implémentation du dosage ............................................................................................... 35
5. Calibration ........................................................................................................................ 36
6. Contrôle normal et pathologique ...................................................................................... 37
7. La fidélité .......................................................................................................................... 37
8. La répétabilité ................................................................................................................... 38
9. La reproductibilité ............................................................................................................. 38
10. La stabilité .................................................................................................................... 38
11. Interférences du dosage ................................................................................................ 39
11.1. L’hémolyse .................................................................................................................................... 39
11.2. Variantes génétiques de la transferrine ........................................................................................ 39
11.3. Lésions hépatiques (maladie grave en phase terminale). ............................................................. 39
11.4. Les composants monoclonaux ou fraction polyclonale élevée ..................................................... 40
Résultats .......................................................................................................................... 41
1. Calibration ........................................................................................................................ 41
1.1. Calibration à l’installation ............................................................................................................. 41
1.2. Calibration changement de lot...................................................................................................... 41
3
2. Évaluation de la répétabilité ............................................................................................. 42
2.1. Répétabilité .................................................................................................................. 42
2.2. Répétabilité du POOL bas ............................................................................................................. 43
2.3. Répétabilité du POOL intermédiaire ............................................................................................ 44
2.4. Répétabilité du POOL intermédiaire ............................................................................................ 45
2.5. Répétabilité du POOL haut ........................................................................................................... 46
2.6. Répétabilité du POOL haut ........................................................................................................... 47
3. Évaluation de la reproductibilité ....................................................................................... 48
3.1. Reproductibilité « Contrôle normal » ........................................................................................... 48
3.2. Reproductibilité « Contrôle pathologique » ................................................................................. 49
3.3. Reproductibilité « contrôle normal » inter lot .............................................................................. 50
4. Stabilité du sérum pour le dosage de la CDT ...................................................................... 51
5. Interférences .................................................................................................................... 54
5.1. Variants transferrines ................................................................................................................... 54
5.2. L’hémolyse .................................................................................................................................... 55
5.3. Analyse d’interférences apporté par les blocs beta- gamma des électrogrammes des protéines
sérique 56
5.4. Analyse d’interférences apporté par des pics monoclonaux ou polyclonaux des électrogrammes
des protéines sérique .................................................................................................................................. 57
6. Comparaison des résultats avec le laboratoire sous-traitant. ............................................ 60
7. Résultats d’échantillon du laboratoire partenaire ............................................................. 62
8. Exemples de dosage de CDT de patients en urgence .......................................................... 62
9. Suivi de patient éthylique lors d’une hospitalisation ......................................................... 63
Discussion ........................................................................................................................ 64
1. La calibration (Point 1 page 40) ......................................................................................... 64
2. Évaluation de la répétabilité et la reproductivité de la CDT et CDT-IFCC (Point 2 et 3 pages
41-46 et 47-49) .......................................................................................................................... 65
4.1. Variants transferrine (Point 5.1 pages 53) .................................................................................... 67
4.2. L’hémolyse. (Point 5.2 pages 54) .................................................................................................. 67
4.3. Analyse d’interférences apporté par des blocs beta-gamma des électrogrammes des protéines
sérique (Point 5.3 page 55) ......................................................................................................................... 69
5. Comparaison des résultats avec le laboratoire sous-traitant. (Point 6 pages 59-60) ........... 70
6. Comparaison des résultats avec le laboratoire partenaire. (Point 7 des résultats à la page
61) 71
7. Dosage de la CDT de patients en urgences. (Point 8 des résultats à la page 61) ................. 71
8. Suivi de patient éthylique lors d’une hospitalisation (Point 9 des résultats de la page 62) . 71
Conclusion........................................................................................................................ 73
Liste des figures ............................................................................................................... 74
Liste des tables ................................................................................................................. 76
Bibliographie ................................................................................................................... 77
Annexes ........................................................................................................................... 80
Résumé ............................................................................................................................ 83Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=105748 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Implication de l'hyaluronidase Hyal-2 dans le comportement tumoral / BACCARI Donia
Titre : Implication de l'hyaluronidase Hyal-2 dans le comportement tumoral Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : BACCARI Donia, Année de publication : 2009 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Mots-clés : CANCEROLOGIE HYALURONIDASE HYAL-2 CANCER DU SEIN ARN EXPRESSION TRANSFECTION RESISTANCE A L'APOPTOSE INVASION SUPPRESSEUR TUMORAL Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64540 Implication de l'hyaluronidase Hyal-2 dans le comportement tumoral [TFE / Mémoire] / BACCARI Donia, . - 2009.
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Mots-clés : CANCEROLOGIE HYALURONIDASE HYAL-2 CANCER DU SEIN ARN EXPRESSION TRANSFECTION RESISTANCE A L'APOPTOSE INVASION SUPPRESSEUR TUMORAL Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64540 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Implication des lymphocytes T gamma delta dans les maladies auto-immunes etles affections rhumatologiques / TIELS Séverine
Titre : Implication des lymphocytes T gamma delta dans les maladies auto-immunes etles affections rhumatologiques Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : TIELS Séverine, Année de publication : 2009 Mots-clés : LYMPHOCYTES T MALADIES AUTO-IMMUNES AFFECTIONS RHUMATOLOGIQUES IMMUNITE CYTOMETRIE EN FLUX FLUOROCHROMES LYMPHOCYTES GAMMA DELTA Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64577 Implication des lymphocytes T gamma delta dans les maladies auto-immunes etles affections rhumatologiques [TFE / Mémoire] / TIELS Séverine, . - 2009.
Mots-clés : LYMPHOCYTES T MALADIES AUTO-IMMUNES AFFECTIONS RHUMATOLOGIQUES IMMUNITE CYTOMETRIE EN FLUX FLUOROCHROMES LYMPHOCYTES GAMMA DELTA Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64577 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Les infections virales respiratoires en début de vie : Suivi de l'infection et de la vaccination et impact de la supplémentation maternelle en probiotiques / Zoé Leloup
Titre : Les infections virales respiratoires en début de vie : Suivi de l'infection et de la vaccination et impact de la supplémentation maternelle en probiotiques Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Zoé Leloup ; Véronique Flamand, Promoteur du mémoire ; Manuel Constant, Promoteur du mémoire Editeur : Montignies-sur-Sambre : Haute Ecole Louvain en Hainaut Année de publication : 2023 Importance : 67p. Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur . Langues : Français (fre) Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Au cours des premiers stades de la vie d'un nouveau-né, son système immunitaire est en plein développement. Les protections fournies par la mère, que ce soit à travers le placenta ou l'allaitement, commencent à diminuer, et la capacité de défense du nouveau-né n'est pas encore pleinement développée. Le premier objectif de ce travail de fin d'études est de mettre au point un modèle d'infection des nouveau-nés murins par le Pneumovirus et d'étudier les effets de la supplémentation maternelle en probiotiques (Lactobacillus rhamnosus et Bifidobacterium lactis) sur les nouveau-nés infectés. Pour ce faire, nous mesurons la charge virale dans les poumons des nouveau-nés prélevés à l'aide de la technique de RT-qPCR. Cependant, les résultats obtenus ne sont pas conformes à nos attentes. En effet, les deux souches de probiotiques ont des effets opposés : l'une augmente la charge virale dans les poumons, tandis que l'autre la diminue. Pour de futures expériences, il serait intéressant d'adapter le modèle afin de mesurer la charge virale dans le nez des nouveau-nés infectés plutôt que dans les poumons.
Le deuxième objectif de notre étude est de développer un vaccin à partir d'une protéine de l'Influenza virus A, connue sous le nom d'hémagglutinine. Nous souhaitons comparer la réponse humorale induite par ce vaccin "maison" avec celle obtenue par la vaccination avec le vaccin commercial VaxigripTetra®. Afin de réaliser cette comparaison, nous avons mis au point un test ELISA pour doser les immunoglobulines (IgG1 et Ig totales) présentes dans le sérum des souris vaccinées avec l'un des deux vaccins. Cependant, la comparaison s'avère complexe. En raison des difficultés liées à l'établissement d'un standard commun pour les deux types d'immunoglobulines, seules les IgG1 ont été dosées pour le vaccin "maison", tandis que les Ig totales ont été mesurées pour VaxigripTetra®. Dans de futures expériences, la mise en place d'un standard adéquat permettra de doser les Ig totales dans le sérum des souris vaccinées avec le vaccin "maison". Ces résultats initiaux soulignent l'importance de poursuivre les recherches pour améliorer notre compréhension des mécanismes d'infection et de protection immunitaire chez les nouveau-nés. Les ajustements et les nouvelles stratégies développées dans le cadre de ce travail offrent des perspectives passionnantes pour la prévention et le traitement des infections respiratoires chez les nourrissonsPermalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=114754 Les infections virales respiratoires en début de vie : Suivi de l'infection et de la vaccination et impact de la supplémentation maternelle en probiotiques [TFE / Mémoire] / Zoé Leloup ; Véronique Flamand, Promoteur du mémoire ; Manuel Constant, Promoteur du mémoire . - Montignies-sur-Sambre : Haute Ecole Louvain en Hainaut, 2023 . - 67p.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur .
Langues : Français (fre)
Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Au cours des premiers stades de la vie d'un nouveau-né, son système immunitaire est en plein développement. Les protections fournies par la mère, que ce soit à travers le placenta ou l'allaitement, commencent à diminuer, et la capacité de défense du nouveau-né n'est pas encore pleinement développée. Le premier objectif de ce travail de fin d'études est de mettre au point un modèle d'infection des nouveau-nés murins par le Pneumovirus et d'étudier les effets de la supplémentation maternelle en probiotiques (Lactobacillus rhamnosus et Bifidobacterium lactis) sur les nouveau-nés infectés. Pour ce faire, nous mesurons la charge virale dans les poumons des nouveau-nés prélevés à l'aide de la technique de RT-qPCR. Cependant, les résultats obtenus ne sont pas conformes à nos attentes. En effet, les deux souches de probiotiques ont des effets opposés : l'une augmente la charge virale dans les poumons, tandis que l'autre la diminue. Pour de futures expériences, il serait intéressant d'adapter le modèle afin de mesurer la charge virale dans le nez des nouveau-nés infectés plutôt que dans les poumons.
Le deuxième objectif de notre étude est de développer un vaccin à partir d'une protéine de l'Influenza virus A, connue sous le nom d'hémagglutinine. Nous souhaitons comparer la réponse humorale induite par ce vaccin "maison" avec celle obtenue par la vaccination avec le vaccin commercial VaxigripTetra®. Afin de réaliser cette comparaison, nous avons mis au point un test ELISA pour doser les immunoglobulines (IgG1 et Ig totales) présentes dans le sérum des souris vaccinées avec l'un des deux vaccins. Cependant, la comparaison s'avère complexe. En raison des difficultés liées à l'établissement d'un standard commun pour les deux types d'immunoglobulines, seules les IgG1 ont été dosées pour le vaccin "maison", tandis que les Ig totales ont été mesurées pour VaxigripTetra®. Dans de futures expériences, la mise en place d'un standard adéquat permettra de doser les Ig totales dans le sérum des souris vaccinées avec le vaccin "maison". Ces résultats initiaux soulignent l'importance de poursuivre les recherches pour améliorer notre compréhension des mécanismes d'infection et de protection immunitaire chez les nouveau-nés. Les ajustements et les nouvelles stratégies développées dans le cadre de ce travail offrent des perspectives passionnantes pour la prévention et le traitement des infections respiratoires chez les nourrissonsPermalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=114754 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Influence du contexte insecte dans le réassortiment entre deux Simbuvirus apparentés au virus de Schmallenberg / ANNE-‐CECILE PAY
PermalinkInfluence de la déacétylase SIRT1 dans la production de l’interleukine-21 par les lymphocytes T helper / Florian VISEE
PermalinkInfluence épitranscriptomique sur la distribution cellulaire des ARN messagers / Jérémy Blondeau
PermalinkInfluence du métabolisme de la nicotine sur les paramètres biologiques du stress oxydatif chez les fumeurs / Loïc DELREE
PermalinkInfluence du sulfate de dextran sur les tests anti-Xa et le test de génération de thrombine après neutralisation de l’héparine / Antoine De Liège
PermalinkInteractions entre le lysozyme et les cyclodextrines / ROBERT Sébastien
PermalinkIntérêt de la cytométrie en flux dans l’identification et la caractérisation des lymphomes non hodgkiniens B / Mathieu SCREVE
PermalinkIntérêt du dosage de la vitamine D.Comparaison de quatre méthodes de dosage / BOSMANS Geoffrey
PermalinkIntérêt de la méthode MLVA (Multi Locus VNTR Analysis) pour la caracterisation moléculaire des Escherichia Coli O157 / THIRIONET Marie
PermalinkIntérêt de nutriments prébiotiques dans les désordres inflammatoires associés aux maladies cardiovasculaires / Amandine Mousset
PermalinkIntérêt du typage de certaines gammapathies monoclonales par immunofixation en gel d'agarose comme complément à l'immunosoustraction en capillaire / Eloïse MASCAUX
PermalinkMécanismes de résistance aux aminoglycosides : le rôle du polyphosphate / Margaux Etienne
PermalinkMécanismes de résistance aux aminoglycosides : le rôle du polyphosphate / Myriam Belmahi
PermalinkMéthode de validation de l’automate Vision Hema ® dans l’analyse de formules leucocytaires rejetées par le cell-Dyn Sapphire ® / FIONA BURNOTTE
PermalinkMéthodes de caractérisation d’hydrolysats de gluten et étude de leurs propriétés filmogènes / Bahia TCHAMEKH
PermalinkLe microARN miR-210 : étude de son expression par hybridation in situ dans les tumeurs du sein, et dans les ganglions lymphatiques / Dilara GEMICI
PermalinkMicrobiologie revisitée : quels avantages des panels multiplex pour le diagnostic des entéropathogènes ? / Wythney Fostier
PermalinkMise en conformité de l'automate Liaison de Diasorin dans le système qualité du laboratoire et tests de comparaison statistique avec d'autres machines pour différents paramètres / PECKSTADT William
PermalinkMise en conformité de l'HPLC 'Agilent Technologies 1200 series' dans le système qualité du laboratoire / BAU Jonathan
PermalinkMise en évidence d'hémoglobinopathies : Comparaison des méthodes électrophorèses et HPLC / BLAIRON Julie
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