Centre de Documentation Campus Montignies
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Lundi : 8h-18h30
Mardi : 8h-18h30
Mercredi 9h-16h30
Jeudi : 8h-18h30
Vendredi : 8h-16h30
Attention, votre centre de documentation sera fermé du 27/04 au 12/05 inclus.
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2 résultat(s) recherche sur le mot-clé 'Clinique Notre Dame Grâce Gosselies'
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La protéine S100B; vaut-elle le « coup » ? Comparaison de deux méthodes de dosages pour des patients atteints de traumatismes cérébraux / Guillaume Masquillier
Titre : La protéine S100B; vaut-elle le « coup » ? Comparaison de deux méthodes de dosages pour des patients atteints de traumatismes cérébraux Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Guillaume Masquillier, Auteur ; Q. Delefortire, Directeur de la recherche ; S. Moerman, Directeur de la recherche ; Patrick Vankerkhoven, Directeur de la recherche Année de publication : 2015 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale CNDG Clinique Notre Dame Grâce Gosselies Traumatisme crânien : marqueur biologique protéine S100B Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Résumé :
En Belgique il y a en moyenne, par an, 100 à 250 cas de traumatismes crânien par 100 000 habitants, parmi ceux-ci, seulement 90 à 95 % sont des traumatismes crâniens légers. Cependant, chaque patient admis pour une suspicion de traumatisme crânien subit un scanner cérébral. Celui-ci soumet le patient à des radiations et induit un coup non négligeable pour la sécurité sociale.
La protéine S100β est fréquemment dosée dans les hôpitaux afin de déterminer la nécessité d’un scanner cérébral pour des patients chez qui on suspecte un tel traumatisme. En effet grâce au cut off établi pour le dosage de cette protéine, nous pouvons exclure un scanner cérébral.
La protéine S100B permet donc aux patients d’éviter un scanner mais surtout d’être exposé à des radiations néfastes pour l’organisme.
Cette étude a pour but de démontrer le rôle joué par le dosage de la protéine S100B et l’influence des conditions de conservation des échantillons.
Pour ce faire nous avons congelé les échantillons à moins -28°C durant un laps de temps déterminé et nous avons mesuré la différence entre le dosage au temps initial et le dosage après congélation.
Nous avons ensuite comparé les différences de dosage entre le kit Roche ® et Diasorin ® en mesurant, en parallèle, les mêmes échantillons de patients, au même moment et par une même personne afin d’obtenir la meilleure reproductibilité possible.
Pour finir nous avons réalisé une comparaison entre les résultats cliniques des patients et les résultats fournis par les différents kits. Ceux-ci nous on permit de démontrer l’utilité du dosage de la protéine S100B lors de traumatisme crânien.
Ce travail de fin d’étude met donc en évidence l’influence ou non de la congélation dans nos conditions, une potentielle différence entre Roche ® et Diasorin ® et permet de démontrer le rôle du dosage de la protéine S100B lors de suspicion de traumatisme crânien.
Note de contenu : Table des matières
Partie théorique : 7
1) Caractéristiques de la protéine S100β 7
1.1) Structure et rôle physiologique ; 7
1.2) Synthèse ; 10
1.3) Voie d’élimination ; 10
1.4) Variation de la concentration en S100β ; 10
2) Intérêt du dosage de la protéine S100β 12
2.1) Relation entre le scanner cérébrale et la concentration en S100β ; 12
2.2) Progression de la protéine S100béta à partir des cellules gliales; 12
2.3) Intérêt du dosage de la protéine ; 13
2.4) Dosage de la protéine S100β 17
2.4.1) Dosage de la S100β chez les enfants ; 17
2.4.2) Dosage de la S100β chez les adultes ; 18
3) Technique de dosage ; Roche – Diasorin 19
3.1) Réaction antigène-anticorps rappel ; 20
3.1.1) Les anticorps polyclonaux ; 20
3.1.2) Les anticorps monoclonaux ; 20
3.1.3) Cinétique ; 21
3.2) Conditions pré-analytiques ; 21
3.3) Principe du kit Roche S100 ®; 22
3.3.1) l’électrochimie luminescence ; 22
3.3.2) principe du dosage utilisé par le kit ; 23
3.4) principe du kit Diasorin S100 ® ; 25
3.4.1) chimiluminescence ; 25
3.4.2) Principe du dosage utilisé par le kit ; 25
3.5) différence entre Roche® et Diasorin ® ; 27
3.6) Autres techniques de dosage ; 28
4) Autres marqueurs influencés lors d’un traumatisme crânien 32
5) Matériels et méthode 33
5.1) Matériel : 33
5.2) Réactifs : 33
5.3) Composition des kits : 34
5.3.1) Liaison ® 34
5.3.2) Roche ® 35
5.4) Conservation : 35
5.4.1) Liaison ® 35
5.4.2) Roche ® 36
5.5) Méthode 36
5.5.1) Liaison vert – Diasorin ® 36
5.5.2) Cobas – Roche ® 38
5.6) Préparation des échantillons 39
5.7) Choix des échantillons ; 39
5.8) But de cette étude : 40
5.9) Avant-propos : 40
6) Analyse statistique 41
6.1) Comparaison du dosage de la S100B avant et après la congélation avec le kit Roche®. 41
6.1.1) Statistique descriptive : 41
6.1.2) Statistiques inférentielles 44
6.1.3) En conclusion 46
6.2) Comparaison entre le kit Roche ® et Diasorin ® après congélation des échantillons 47
6.2.1) Statistique descriptive : 47
6.2.2) Statistique interférentielle ; 50
6.2.3) Conclusion : 51
6.3) Population étudiée : 52
En conclusion les kits ont tout deux une VPN de 100% et une sensibilité de 100% ils détectent donc tous les patients n’ayant aucun traumatisme crânien, ceux-ci évitent dès lors l’exposition aux radiations. 53
7) Conclusion générale 53
Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64251 La protéine S100B; vaut-elle le « coup » ? Comparaison de deux méthodes de dosages pour des patients atteints de traumatismes cérébraux [TFE / Mémoire] / Guillaume Masquillier, Auteur ; Q. Delefortire, Directeur de la recherche ; S. Moerman, Directeur de la recherche ; Patrick Vankerkhoven, Directeur de la recherche . - 2015.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : biologie médicale CNDG Clinique Notre Dame Grâce Gosselies Traumatisme crânien : marqueur biologique protéine S100B Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Résumé :
En Belgique il y a en moyenne, par an, 100 à 250 cas de traumatismes crânien par 100 000 habitants, parmi ceux-ci, seulement 90 à 95 % sont des traumatismes crâniens légers. Cependant, chaque patient admis pour une suspicion de traumatisme crânien subit un scanner cérébral. Celui-ci soumet le patient à des radiations et induit un coup non négligeable pour la sécurité sociale.
La protéine S100β est fréquemment dosée dans les hôpitaux afin de déterminer la nécessité d’un scanner cérébral pour des patients chez qui on suspecte un tel traumatisme. En effet grâce au cut off établi pour le dosage de cette protéine, nous pouvons exclure un scanner cérébral.
La protéine S100B permet donc aux patients d’éviter un scanner mais surtout d’être exposé à des radiations néfastes pour l’organisme.
Cette étude a pour but de démontrer le rôle joué par le dosage de la protéine S100B et l’influence des conditions de conservation des échantillons.
Pour ce faire nous avons congelé les échantillons à moins -28°C durant un laps de temps déterminé et nous avons mesuré la différence entre le dosage au temps initial et le dosage après congélation.
Nous avons ensuite comparé les différences de dosage entre le kit Roche ® et Diasorin ® en mesurant, en parallèle, les mêmes échantillons de patients, au même moment et par une même personne afin d’obtenir la meilleure reproductibilité possible.
Pour finir nous avons réalisé une comparaison entre les résultats cliniques des patients et les résultats fournis par les différents kits. Ceux-ci nous on permit de démontrer l’utilité du dosage de la protéine S100B lors de traumatisme crânien.
Ce travail de fin d’étude met donc en évidence l’influence ou non de la congélation dans nos conditions, une potentielle différence entre Roche ® et Diasorin ® et permet de démontrer le rôle du dosage de la protéine S100B lors de suspicion de traumatisme crânien.
Note de contenu : Table des matières
Partie théorique : 7
1) Caractéristiques de la protéine S100β 7
1.1) Structure et rôle physiologique ; 7
1.2) Synthèse ; 10
1.3) Voie d’élimination ; 10
1.4) Variation de la concentration en S100β ; 10
2) Intérêt du dosage de la protéine S100β 12
2.1) Relation entre le scanner cérébrale et la concentration en S100β ; 12
2.2) Progression de la protéine S100béta à partir des cellules gliales; 12
2.3) Intérêt du dosage de la protéine ; 13
2.4) Dosage de la protéine S100β 17
2.4.1) Dosage de la S100β chez les enfants ; 17
2.4.2) Dosage de la S100β chez les adultes ; 18
3) Technique de dosage ; Roche – Diasorin 19
3.1) Réaction antigène-anticorps rappel ; 20
3.1.1) Les anticorps polyclonaux ; 20
3.1.2) Les anticorps monoclonaux ; 20
3.1.3) Cinétique ; 21
3.2) Conditions pré-analytiques ; 21
3.3) Principe du kit Roche S100 ®; 22
3.3.1) l’électrochimie luminescence ; 22
3.3.2) principe du dosage utilisé par le kit ; 23
3.4) principe du kit Diasorin S100 ® ; 25
3.4.1) chimiluminescence ; 25
3.4.2) Principe du dosage utilisé par le kit ; 25
3.5) différence entre Roche® et Diasorin ® ; 27
3.6) Autres techniques de dosage ; 28
4) Autres marqueurs influencés lors d’un traumatisme crânien 32
5) Matériels et méthode 33
5.1) Matériel : 33
5.2) Réactifs : 33
5.3) Composition des kits : 34
5.3.1) Liaison ® 34
5.3.2) Roche ® 35
5.4) Conservation : 35
5.4.1) Liaison ® 35
5.4.2) Roche ® 36
5.5) Méthode 36
5.5.1) Liaison vert – Diasorin ® 36
5.5.2) Cobas – Roche ® 38
5.6) Préparation des échantillons 39
5.7) Choix des échantillons ; 39
5.8) But de cette étude : 40
5.9) Avant-propos : 40
6) Analyse statistique 41
6.1) Comparaison du dosage de la S100B avant et après la congélation avec le kit Roche®. 41
6.1.1) Statistique descriptive : 41
6.1.2) Statistiques inférentielles 44
6.1.3) En conclusion 46
6.2) Comparaison entre le kit Roche ® et Diasorin ® après congélation des échantillons 47
6.2.1) Statistique descriptive : 47
6.2.2) Statistique interférentielle ; 50
6.2.3) Conclusion : 51
6.3) Population étudiée : 52
En conclusion les kits ont tout deux une VPN de 100% et une sensibilité de 100% ils détectent donc tous les patients n’ayant aucun traumatisme crânien, ceux-ci évitent dès lors l’exposition aux radiations. 53
7) Conclusion générale 53
Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64251 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Mise en routine d’un nouvel automate d’hématologie : l’Unicel® DxH 800 (Coulter® Cellular Analysis System) / SOPHIE LUMAY
Titre : Mise en routine d’un nouvel automate d’hématologie : l’Unicel® DxH 800 (Coulter® Cellular Analysis System) Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : SOPHIE LUMAY, Auteur ; Patrick Vankerkhoven, Directeur de la recherche Année de publication : 2015 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale CNDG Clinique Notre Dame Grâce Gosselies hématologie : automate Unicel® DxH 800 Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Ce travail de fin d’études, plonge au coeur d’un service d’hématologie en pleine réorganisation.
En effet, cette année se marque par un virage important au sein du service.
De nouveaux logiciels, automates et techniques font leur apparition afin de faciliter le travail des techniciens.
La facilité d’exécution des programmes et le gain de temps considérable apporté sont les premières répercutions observés!
Mais le centre d’intérêt de ce travail et qui sera évoqué plus en profondeur est l’installation d’un nouvel automate de numération hématologique avec les différents tests visant à valider en routine tous les résultats donnée par ce dernier.
En effet, cet automate est le point névralgique du service, en moyenne 300 tubes y passent chaque jour. Il est donc essentiel de s’assurer de la bonne mise en routine et de la fiabilité de ce dernier.
Le nouvel automate choisi est l’Unicel® DxH 800 de chez Beckman Coulter®.
Utilisant cinq techniques de mesure différentes en plus d’une réputation évoquant de très bons résultats pour l’hémoglobine et le MCHC.
Nous nous sommes lancés dans l’apprentissage de cette machine afin de prouver ces dires et de l’utiliser comme automate de routine au sein du service.
En lisant ce travail de fin d’étude, vous serez fixé sur la qualité des résultats rapporté par l’automate et de son efficacité au coeur du laboratoire.Note de contenu : Table des matières
Remerciements ...................................................................................................................... 3
Présentation du lieu de stage ................................................................................................ 5
Introduction ........................................................................................................................... 6
1. Partie théorique ............................................................................................................. 7
1.1 Le bilan d’hématologie ........................................................................................... 7
1.2 Méthodes de mesure ............................................................................................ 13
1.2.1 Optique .......................................................................................................... 13
1.2.2 Impédance ..................................................................................................... 15
1.2.3 Spectrophotométrie d’absorption ................................................................ 17
1.2.4 Fluorescence .................................................................................................. 21
1.3 Calculs des constantes érythrocytaires ................................................................ 24
1.3.1 Le MCV ........................................................................................................... 24
1.3.2 Le MCH........................................................................................................... 25
1.3.3 Le MCHC ........................................................................................................ 25
1.3.4 Rapport entre les constantes érythrocytaires ............................................... 25
2. Partie pratique ............................................................................................................. 26
2.1 But ......................................................................................................................... 26
2.2 Mise en oeuvre ...................................................................................................... 26
2.2.1 1ére étape : apprentissage de la machine ...................................................... 26
2.2.2 2ème étape : Valider le bon fonctionnement de la machine .......................... 28
2.2.3 3ème étape : valider les résultats .................................................................... 32
2.2.3.1 La reproductibilité ...................................................................................... 33
2.2.3.2 La répétabilité ............................................................................................ 34
2.2.3.3 L’adéquation des alarmes .......................................................................... 34
2.2.3.4 Les interférences analytiques .................................................................... 37
2.2.3.5 Les contaminations .................................................................................... 38
2.2.4 4ème étape : comparaison de l’Unicel® DxH 800 avec le Cell-Dyn Sapphire .. 39
2.2.4.1 L’étude statistique ..................................................................................... 39
2.2.4.2 La corrélation ............................................................................................. 41
2.2.5 5ème étape : réorganisation du laboratoire ................................................... 42
2.3 Discussion ............................................................................................................. 47
Conclusion ........................................................................................................................... 49
Perspectives ......................................................................................................................... 51
Glossaire .............................................................................................................................. 52
Liste des figures ................................................................................................................... 53
Liste des tableaux ................................................................................................................ 54
Abréviations ......................................................................................................................... 55
Bibliographie ........................................................................................................................ 57Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65034 Mise en routine d’un nouvel automate d’hématologie : l’Unicel® DxH 800 (Coulter® Cellular Analysis System) [TFE / Mémoire] / SOPHIE LUMAY, Auteur ; Patrick Vankerkhoven, Directeur de la recherche . - 2015.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : biologie médicale CNDG Clinique Notre Dame Grâce Gosselies hématologie : automate Unicel® DxH 800 Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Ce travail de fin d’études, plonge au coeur d’un service d’hématologie en pleine réorganisation.
En effet, cette année se marque par un virage important au sein du service.
De nouveaux logiciels, automates et techniques font leur apparition afin de faciliter le travail des techniciens.
La facilité d’exécution des programmes et le gain de temps considérable apporté sont les premières répercutions observés!
Mais le centre d’intérêt de ce travail et qui sera évoqué plus en profondeur est l’installation d’un nouvel automate de numération hématologique avec les différents tests visant à valider en routine tous les résultats donnée par ce dernier.
En effet, cet automate est le point névralgique du service, en moyenne 300 tubes y passent chaque jour. Il est donc essentiel de s’assurer de la bonne mise en routine et de la fiabilité de ce dernier.
Le nouvel automate choisi est l’Unicel® DxH 800 de chez Beckman Coulter®.
Utilisant cinq techniques de mesure différentes en plus d’une réputation évoquant de très bons résultats pour l’hémoglobine et le MCHC.
Nous nous sommes lancés dans l’apprentissage de cette machine afin de prouver ces dires et de l’utiliser comme automate de routine au sein du service.
En lisant ce travail de fin d’étude, vous serez fixé sur la qualité des résultats rapporté par l’automate et de son efficacité au coeur du laboratoire.Note de contenu : Table des matières
Remerciements ...................................................................................................................... 3
Présentation du lieu de stage ................................................................................................ 5
Introduction ........................................................................................................................... 6
1. Partie théorique ............................................................................................................. 7
1.1 Le bilan d’hématologie ........................................................................................... 7
1.2 Méthodes de mesure ............................................................................................ 13
1.2.1 Optique .......................................................................................................... 13
1.2.2 Impédance ..................................................................................................... 15
1.2.3 Spectrophotométrie d’absorption ................................................................ 17
1.2.4 Fluorescence .................................................................................................. 21
1.3 Calculs des constantes érythrocytaires ................................................................ 24
1.3.1 Le MCV ........................................................................................................... 24
1.3.2 Le MCH........................................................................................................... 25
1.3.3 Le MCHC ........................................................................................................ 25
1.3.4 Rapport entre les constantes érythrocytaires ............................................... 25
2. Partie pratique ............................................................................................................. 26
2.1 But ......................................................................................................................... 26
2.2 Mise en oeuvre ...................................................................................................... 26
2.2.1 1ére étape : apprentissage de la machine ...................................................... 26
2.2.2 2ème étape : Valider le bon fonctionnement de la machine .......................... 28
2.2.3 3ème étape : valider les résultats .................................................................... 32
2.2.3.1 La reproductibilité ...................................................................................... 33
2.2.3.2 La répétabilité ............................................................................................ 34
2.2.3.3 L’adéquation des alarmes .......................................................................... 34
2.2.3.4 Les interférences analytiques .................................................................... 37
2.2.3.5 Les contaminations .................................................................................... 38
2.2.4 4ème étape : comparaison de l’Unicel® DxH 800 avec le Cell-Dyn Sapphire .. 39
2.2.4.1 L’étude statistique ..................................................................................... 39
2.2.4.2 La corrélation ............................................................................................. 41
2.2.5 5ème étape : réorganisation du laboratoire ................................................... 42
2.3 Discussion ............................................................................................................. 47
Conclusion ........................................................................................................................... 49
Perspectives ......................................................................................................................... 51
Glossaire .............................................................................................................................. 52
Liste des figures ................................................................................................................... 53
Liste des tableaux ................................................................................................................ 54
Abréviations ......................................................................................................................... 55
Bibliographie ........................................................................................................................ 57Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65034 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire