Centre de Documentation Campus Montignies
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13 résultat(s) recherche sur le mot-clé 'électrophorèse capillaire'
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L’implémentation du dosage de la CDT par l’électrophorèse capillaire / Samia Oulhaj
Titre : L’implémentation du dosage de la CDT par l’électrophorèse capillaire Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Samia Oulhaj, Auteur ; Jérôme Cornil, Directeur de la recherche Editeur : Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale Année de publication : 2022 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : CDT IFCC transferrine standardisation implémentation électrophorèse capillaire Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : L’intérêt principal de ce travail de fin d’étude est l’implémentation du dosage de la CDT par électrophorèse capillaire dans le laboratoire su CHRSM du site de la Sambre. La CDT ( carbohydrate-deficient transferrine) est un marqueur d’éthylisme chronique, avec une meilleur sensibilité et spécificité que les autre marqueurs biologiques historiques citée dans ce travail. La consommation d’alcool altère la métabolisation de la transferrine, en altérant des enzymes hépatique, le pourcentage en CDT se voit alors augmenté. Le dosage de la CDT est prescrit pour détecter une consommation précoce d’un éthylisme chronique pour prévenir des complication hépatique par exemple, le suivi de sevrage à l’alcool, dans la médecine de travail, comme pour l’obtention d’un certificat de pilote d’avion, ou encore la réattribution ou suspension du permis de conduite. La standardisation mis en place par l’IFCC, ne contribue pas qu’à l’étalonnage du dosage, mais aussi à la redéfinition de CDT, seul la disialotransferrine sera dosée, l’asialotransferrine ne sera plus compris dans la valeurs de CDT due à son instabilité. La standardisation du dosage de la CDT montre d’excellent résultats de répétabilité et de reproductibilité par rapport aux résultats du dosage non calibrée. Les limites de dosage manipulations ont mis en évidence l’interférence par le pics monoclonaux ou polyclonaux rencontrés lors de électrophorèses des protéines sériques. Note de contenu : Présentation du lieu de stage ............................................................................................. 4
Introduction générale......................................................................................................... 5
Contexte général ................................................................................................................ 6
1. Chapitre 1 : La CDT .............................................................................................................. 6
1.1. Consommation d’alcool .................................................................................................................. 6
1.2. L’alcool ............................................................................................................................................ 7
1.3. Marqueurs biologiques d’éthylisme ............................................................................................... 8
1.4. La Transferrine et ses isoformes ................................................................................................... 10
1.5. L’alcool et la transferrine .............................................................................................................. 12
1.6. La CDT ........................................................................................................................................... 13
2. Chapitre 2 : L’électrophorèse capillaire ............................................................................. 25
2.1. Principe ......................................................................................................................................... 25
2.2. Composition .................................................................................................................................. 26
2.3. Exemples de dosage ...................................................................................................................... 27
Objectifs et stratégie ........................................................................................................ 31
Matériels et méthodes ..................................................................................................... 32
1. Réactifs ............................................................................................................................. 32
1.1. Kit capillarys® CDT ......................................................................................................................... 32
1.2. Autres réactifs, contrôles et calibreur........................................................................................... 33
2. Matériels et appareils ....................................................................................................... 33
2.1. Matériels ....................................................................................................................................... 33
2.2. Appareil ......................................................................................................................................... 34
3. Échantillons ...................................................................................................................... 35
4. Implémentation du dosage ............................................................................................... 35
5. Calibration ........................................................................................................................ 36
6. Contrôle normal et pathologique ...................................................................................... 37
7. La fidélité .......................................................................................................................... 37
8. La répétabilité ................................................................................................................... 38
9. La reproductibilité ............................................................................................................. 38
10. La stabilité .................................................................................................................... 38
11. Interférences du dosage ................................................................................................ 39
11.1. L’hémolyse .................................................................................................................................... 39
11.2. Variantes génétiques de la transferrine ........................................................................................ 39
11.3. Lésions hépatiques (maladie grave en phase terminale). ............................................................. 39
11.4. Les composants monoclonaux ou fraction polyclonale élevée ..................................................... 40
Résultats .......................................................................................................................... 41
1. Calibration ........................................................................................................................ 41
1.1. Calibration à l’installation ............................................................................................................. 41
1.2. Calibration changement de lot...................................................................................................... 41
3
2. Évaluation de la répétabilité ............................................................................................. 42
2.1. Répétabilité .................................................................................................................. 42
2.2. Répétabilité du POOL bas ............................................................................................................. 43
2.3. Répétabilité du POOL intermédiaire ............................................................................................ 44
2.4. Répétabilité du POOL intermédiaire ............................................................................................ 45
2.5. Répétabilité du POOL haut ........................................................................................................... 46
2.6. Répétabilité du POOL haut ........................................................................................................... 47
3. Évaluation de la reproductibilité ....................................................................................... 48
3.1. Reproductibilité « Contrôle normal » ........................................................................................... 48
3.2. Reproductibilité « Contrôle pathologique » ................................................................................. 49
3.3. Reproductibilité « contrôle normal » inter lot .............................................................................. 50
4. Stabilité du sérum pour le dosage de la CDT ...................................................................... 51
5. Interférences .................................................................................................................... 54
5.1. Variants transferrines ................................................................................................................... 54
5.2. L’hémolyse .................................................................................................................................... 55
5.3. Analyse d’interférences apporté par les blocs beta- gamma des électrogrammes des protéines
sérique 56
5.4. Analyse d’interférences apporté par des pics monoclonaux ou polyclonaux des électrogrammes
des protéines sérique .................................................................................................................................. 57
6. Comparaison des résultats avec le laboratoire sous-traitant. ............................................ 60
7. Résultats d’échantillon du laboratoire partenaire ............................................................. 62
8. Exemples de dosage de CDT de patients en urgence .......................................................... 62
9. Suivi de patient éthylique lors d’une hospitalisation ......................................................... 63
Discussion ........................................................................................................................ 64
1. La calibration (Point 1 page 40) ......................................................................................... 64
2. Évaluation de la répétabilité et la reproductivité de la CDT et CDT-IFCC (Point 2 et 3 pages
41-46 et 47-49) .......................................................................................................................... 65
4.1. Variants transferrine (Point 5.1 pages 53) .................................................................................... 67
4.2. L’hémolyse. (Point 5.2 pages 54) .................................................................................................. 67
4.3. Analyse d’interférences apporté par des blocs beta-gamma des électrogrammes des protéines
sérique (Point 5.3 page 55) ......................................................................................................................... 69
5. Comparaison des résultats avec le laboratoire sous-traitant. (Point 6 pages 59-60) ........... 70
6. Comparaison des résultats avec le laboratoire partenaire. (Point 7 des résultats à la page
61) 71
7. Dosage de la CDT de patients en urgences. (Point 8 des résultats à la page 61) ................. 71
8. Suivi de patient éthylique lors d’une hospitalisation (Point 9 des résultats de la page 62) . 71
Conclusion........................................................................................................................ 73
Liste des figures ............................................................................................................... 74
Liste des tables ................................................................................................................. 76
Bibliographie ................................................................................................................... 77
Annexes ........................................................................................................................... 80
Résumé ............................................................................................................................ 83Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=105748 L’implémentation du dosage de la CDT par l’électrophorèse capillaire [TFE / Mémoire] / Samia Oulhaj, Auteur ; Jérôme Cornil, Directeur de la recherche . - Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale, 2022.
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Langues : Français (fre)
Mots-clés : CDT IFCC transferrine standardisation implémentation électrophorèse capillaire Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : L’intérêt principal de ce travail de fin d’étude est l’implémentation du dosage de la CDT par électrophorèse capillaire dans le laboratoire su CHRSM du site de la Sambre. La CDT ( carbohydrate-deficient transferrine) est un marqueur d’éthylisme chronique, avec une meilleur sensibilité et spécificité que les autre marqueurs biologiques historiques citée dans ce travail. La consommation d’alcool altère la métabolisation de la transferrine, en altérant des enzymes hépatique, le pourcentage en CDT se voit alors augmenté. Le dosage de la CDT est prescrit pour détecter une consommation précoce d’un éthylisme chronique pour prévenir des complication hépatique par exemple, le suivi de sevrage à l’alcool, dans la médecine de travail, comme pour l’obtention d’un certificat de pilote d’avion, ou encore la réattribution ou suspension du permis de conduite. La standardisation mis en place par l’IFCC, ne contribue pas qu’à l’étalonnage du dosage, mais aussi à la redéfinition de CDT, seul la disialotransferrine sera dosée, l’asialotransferrine ne sera plus compris dans la valeurs de CDT due à son instabilité. La standardisation du dosage de la CDT montre d’excellent résultats de répétabilité et de reproductibilité par rapport aux résultats du dosage non calibrée. Les limites de dosage manipulations ont mis en évidence l’interférence par le pics monoclonaux ou polyclonaux rencontrés lors de électrophorèses des protéines sériques. Note de contenu : Présentation du lieu de stage ............................................................................................. 4
Introduction générale......................................................................................................... 5
Contexte général ................................................................................................................ 6
1. Chapitre 1 : La CDT .............................................................................................................. 6
1.1. Consommation d’alcool .................................................................................................................. 6
1.2. L’alcool ............................................................................................................................................ 7
1.3. Marqueurs biologiques d’éthylisme ............................................................................................... 8
1.4. La Transferrine et ses isoformes ................................................................................................... 10
1.5. L’alcool et la transferrine .............................................................................................................. 12
1.6. La CDT ........................................................................................................................................... 13
2. Chapitre 2 : L’électrophorèse capillaire ............................................................................. 25
2.1. Principe ......................................................................................................................................... 25
2.2. Composition .................................................................................................................................. 26
2.3. Exemples de dosage ...................................................................................................................... 27
Objectifs et stratégie ........................................................................................................ 31
Matériels et méthodes ..................................................................................................... 32
1. Réactifs ............................................................................................................................. 32
1.1. Kit capillarys® CDT ......................................................................................................................... 32
1.2. Autres réactifs, contrôles et calibreur........................................................................................... 33
2. Matériels et appareils ....................................................................................................... 33
2.1. Matériels ....................................................................................................................................... 33
2.2. Appareil ......................................................................................................................................... 34
3. Échantillons ...................................................................................................................... 35
4. Implémentation du dosage ............................................................................................... 35
5. Calibration ........................................................................................................................ 36
6. Contrôle normal et pathologique ...................................................................................... 37
7. La fidélité .......................................................................................................................... 37
8. La répétabilité ................................................................................................................... 38
9. La reproductibilité ............................................................................................................. 38
10. La stabilité .................................................................................................................... 38
11. Interférences du dosage ................................................................................................ 39
11.1. L’hémolyse .................................................................................................................................... 39
11.2. Variantes génétiques de la transferrine ........................................................................................ 39
11.3. Lésions hépatiques (maladie grave en phase terminale). ............................................................. 39
11.4. Les composants monoclonaux ou fraction polyclonale élevée ..................................................... 40
Résultats .......................................................................................................................... 41
1. Calibration ........................................................................................................................ 41
1.1. Calibration à l’installation ............................................................................................................. 41
1.2. Calibration changement de lot...................................................................................................... 41
3
2. Évaluation de la répétabilité ............................................................................................. 42
2.1. Répétabilité .................................................................................................................. 42
2.2. Répétabilité du POOL bas ............................................................................................................. 43
2.3. Répétabilité du POOL intermédiaire ............................................................................................ 44
2.4. Répétabilité du POOL intermédiaire ............................................................................................ 45
2.5. Répétabilité du POOL haut ........................................................................................................... 46
2.6. Répétabilité du POOL haut ........................................................................................................... 47
3. Évaluation de la reproductibilité ....................................................................................... 48
3.1. Reproductibilité « Contrôle normal » ........................................................................................... 48
3.2. Reproductibilité « Contrôle pathologique » ................................................................................. 49
3.3. Reproductibilité « contrôle normal » inter lot .............................................................................. 50
4. Stabilité du sérum pour le dosage de la CDT ...................................................................... 51
5. Interférences .................................................................................................................... 54
5.1. Variants transferrines ................................................................................................................... 54
5.2. L’hémolyse .................................................................................................................................... 55
5.3. Analyse d’interférences apporté par les blocs beta- gamma des électrogrammes des protéines
sérique 56
5.4. Analyse d’interférences apporté par des pics monoclonaux ou polyclonaux des électrogrammes
des protéines sérique .................................................................................................................................. 57
6. Comparaison des résultats avec le laboratoire sous-traitant. ............................................ 60
7. Résultats d’échantillon du laboratoire partenaire ............................................................. 62
8. Exemples de dosage de CDT de patients en urgence .......................................................... 62
9. Suivi de patient éthylique lors d’une hospitalisation ......................................................... 63
Discussion ........................................................................................................................ 64
1. La calibration (Point 1 page 40) ......................................................................................... 64
2. Évaluation de la répétabilité et la reproductivité de la CDT et CDT-IFCC (Point 2 et 3 pages
41-46 et 47-49) .......................................................................................................................... 65
4.1. Variants transferrine (Point 5.1 pages 53) .................................................................................... 67
4.2. L’hémolyse. (Point 5.2 pages 54) .................................................................................................. 67
4.3. Analyse d’interférences apporté par des blocs beta-gamma des électrogrammes des protéines
sérique (Point 5.3 page 55) ......................................................................................................................... 69
5. Comparaison des résultats avec le laboratoire sous-traitant. (Point 6 pages 59-60) ........... 70
6. Comparaison des résultats avec le laboratoire partenaire. (Point 7 des résultats à la page
61) 71
7. Dosage de la CDT de patients en urgences. (Point 8 des résultats à la page 61) ................. 71
8. Suivi de patient éthylique lors d’une hospitalisation (Point 9 des résultats de la page 62) . 71
Conclusion........................................................................................................................ 73
Liste des figures ............................................................................................................... 74
Liste des tables ................................................................................................................. 76
Bibliographie ................................................................................................................... 77
Annexes ........................................................................................................................... 80
Résumé ............................................................................................................................ 83Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=105748 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Interprétation des pics en gamma < 5 g/L en électrophorèse capillaire : intérêt du ratio « tangentiel/orthogonal » / Julien Obiols in Annales de Biologie Clinique, 74/3 (mai-juin 2016)
[article]
Titre : Interprétation des pics en gamma < 5 g/L en électrophorèse capillaire : intérêt du ratio « tangentiel/orthogonal » Type de document : texte imprimé Auteurs : Julien Obiols, Auteur ; Anne-Marie Dupuy, Auteur ; Anne-Sophie Bargnoux, Auteur Année de publication : 2016 Article en page(s) : 286-292 Langues : Français (fre) Mots-clés : pic monoclonal de faible intensité GMSI électrophorèse capillaire immunofixation quantification tangentiel orthogonal ratio Résumé : Il n’existe actuellement pas de consensus pour la quantification et l’identification des pics monoclonaux de faibles intensités. Dans cette optique, nous avons réalisé une étude transversale de 12 mois qui inclut 410 électrophorèses capillaires des protéines sériques (EPS) avec suspicion de pic monoclonal en gamma, ayant conduit à la réalisation d’une immunofixation (IF) ; 276 EPS représentent des pics de faible intensité (quantification orthogonale < 5 g/L) migrant en gamma mais seulement 157 (57 %) se sont avérés être positifs après IF. Une meilleure détection des vrais positifs est observée lorsque la quantification du pic se fait en mode tangentiel (T) plutôt qu’en mode orthogonal (O). La distribution des vrais positifs en fonction du ratio tangentiel/orthogonal (« T/O ») permet de proposer un seuil de 6 % en dessous duquel une immunoglobuline monoclonale (IM) est peu retrouvée (VPNR>6% = 73,7 %), et un seuil de 10 % au-dessus duquel se trouve plus de 80 % de vrais positifs (VPPR>10% = 94,4 %). L’utilisation du ratio « T/O » permettrait ainsi d’orienter l’identification d’une IM de faible intensité et d’harmoniser le suivi inter-laboratoire. Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=75103
in Annales de Biologie Clinique > 74/3 (mai-juin 2016) . - 286-292[article] Interprétation des pics en gamma < 5 g/L en électrophorèse capillaire : intérêt du ratio « tangentiel/orthogonal » [texte imprimé] / Julien Obiols, Auteur ; Anne-Marie Dupuy, Auteur ; Anne-Sophie Bargnoux, Auteur . - 2016 . - 286-292.
Langues : Français (fre)
in Annales de Biologie Clinique > 74/3 (mai-juin 2016) . - 286-292
Mots-clés : pic monoclonal de faible intensité GMSI électrophorèse capillaire immunofixation quantification tangentiel orthogonal ratio Résumé : Il n’existe actuellement pas de consensus pour la quantification et l’identification des pics monoclonaux de faibles intensités. Dans cette optique, nous avons réalisé une étude transversale de 12 mois qui inclut 410 électrophorèses capillaires des protéines sériques (EPS) avec suspicion de pic monoclonal en gamma, ayant conduit à la réalisation d’une immunofixation (IF) ; 276 EPS représentent des pics de faible intensité (quantification orthogonale < 5 g/L) migrant en gamma mais seulement 157 (57 %) se sont avérés être positifs après IF. Une meilleure détection des vrais positifs est observée lorsque la quantification du pic se fait en mode tangentiel (T) plutôt qu’en mode orthogonal (O). La distribution des vrais positifs en fonction du ratio tangentiel/orthogonal (« T/O ») permet de proposer un seuil de 6 % en dessous duquel une immunoglobuline monoclonale (IM) est peu retrouvée (VPNR>6% = 73,7 %), et un seuil de 10 % au-dessus duquel se trouve plus de 80 % de vrais positifs (VPPR>10% = 94,4 %). L’utilisation du ratio « T/O » permettrait ainsi d’orienter l’identification d’une IM de faible intensité et d’harmoniser le suivi inter-laboratoire. Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=75103 Réservation
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Cote Support Localisation Section Disponibilité Revue Revue Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Armoires à volets Disponible
DisponibleStandardisation des méthodes d’électrophorèse capillaire Capillarys® CDT et Minicap® CDT par rapport à la méthode de référence IFCC / François Schellenberg in Annales de Biologie Clinique, 75/3 (Mai-juin 2017)
[article]
Titre : Standardisation des méthodes d’électrophorèse capillaire Capillarys® CDT et Minicap® CDT par rapport à la méthode de référence IFCC Type de document : texte imprimé Auteurs : François Schellenberg ; Camille Humeau Année de publication : 2017 Article en page(s) : p. 319-326 Langues : Français (fre) Mots-clés : CDT marqueur d’alcoolisme électrophorèse capillaire standardisation Résumé : La CDT (carbohydrate-deficient transferrine) est un marqueur d’alcoolisme chronique de plus en plus utilisé en pratique courante pour le dépistage et le suivi des patients. L’absence de standardisation aboutit à l’existence d’autant de valeurs de référence que de techniques de dosage. Le groupe de travail de l’IFCC consacré à la CDT propose une standardisation utilisant des calibrateurs dont la valeur est établie par la méthode de référence Dans cette étude, nous avons comparé les techniques d’électrophorèse capillaire Capillarys® et Minicap® CDT (Sebia, Lisses, France) à la méthode de référence avant et après standardisation sur 126 échantillons couvrant la gamme de mesure de la CDT. La corrélation est très élevée (r = 0,997) pour les deux automates avec la méthode de référence, et le coefficient de concordance évalué selon Mc Bride est “presque parfait” (supérieur à 0,997 pour les deux automates). Le nombre d’écarts supérieurs à la limite acceptable entre les résultats des automates étudiés et ceux obtenus par la méthode de référence passe de 44 à 1 pour Capillarys® CDT et de 53 à 5 pour Minicap® CDT. Ces résultats démontrent l’efficacité de la standardisation des techniques de dosage de la CDT des deux automates étudiés obtenue par la calibration avec les étalons dont la valeur a été assignée sur la méthode de référence.
Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=76294
in Annales de Biologie Clinique > 75/3 (Mai-juin 2017) . - p. 319-326[article] Standardisation des méthodes d’électrophorèse capillaire Capillarys® CDT et Minicap® CDT par rapport à la méthode de référence IFCC [texte imprimé] / François Schellenberg ; Camille Humeau . - 2017 . - p. 319-326.
Langues : Français (fre)
in Annales de Biologie Clinique > 75/3 (Mai-juin 2017) . - p. 319-326
Mots-clés : CDT marqueur d’alcoolisme électrophorèse capillaire standardisation Résumé : La CDT (carbohydrate-deficient transferrine) est un marqueur d’alcoolisme chronique de plus en plus utilisé en pratique courante pour le dépistage et le suivi des patients. L’absence de standardisation aboutit à l’existence d’autant de valeurs de référence que de techniques de dosage. Le groupe de travail de l’IFCC consacré à la CDT propose une standardisation utilisant des calibrateurs dont la valeur est établie par la méthode de référence Dans cette étude, nous avons comparé les techniques d’électrophorèse capillaire Capillarys® et Minicap® CDT (Sebia, Lisses, France) à la méthode de référence avant et après standardisation sur 126 échantillons couvrant la gamme de mesure de la CDT. La corrélation est très élevée (r = 0,997) pour les deux automates avec la méthode de référence, et le coefficient de concordance évalué selon Mc Bride est “presque parfait” (supérieur à 0,997 pour les deux automates). Le nombre d’écarts supérieurs à la limite acceptable entre les résultats des automates étudiés et ceux obtenus par la méthode de référence passe de 44 à 1 pour Capillarys® CDT et de 53 à 5 pour Minicap® CDT. Ces résultats démontrent l’efficacité de la standardisation des techniques de dosage de la CDT des deux automates étudiés obtenue par la calibration avec les étalons dont la valeur a été assignée sur la méthode de référence.
Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=76294 Réservation
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Cote Support Localisation Section Disponibilité Revue Revue Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Armoires à volets Disponible
DisponibleAnalyse de l'éthylsulfate dans l'urine par électrophorèse capillaire à pH 2.5 / LUYCKX Olivier
Titre : Analyse de l'éthylsulfate dans l'urine par électrophorèse capillaire à pH 2.5 Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : LUYCKX Olivier, Année de publication : 2009 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Mots-clés : ETHYLSULFATE ALCOOL ELECTROPHORESE CAPILLAIRE PIACE tm MDQ URINE ELECTROPHORESE MIGRATION FLUORURE METHYLMALONATE Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64561 Analyse de l'éthylsulfate dans l'urine par électrophorèse capillaire à pH 2.5 [TFE / Mémoire] / LUYCKX Olivier, . - 2009.
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Mots-clés : ETHYLSULFATE ALCOOL ELECTROPHORESE CAPILLAIRE PIACE tm MDQ URINE ELECTROPHORESE MIGRATION FLUORURE METHYLMALONATE Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64561 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire La bilirubine interfère-t-elle sur l'électrophorèse capillaire des protéines sériques? / Ilhem HELLARA in Annales de Biologie Clinique, 72/01 (Janvier-février 2014)
[article]
Titre : La bilirubine interfère-t-elle sur l'électrophorèse capillaire des protéines sériques? Type de document : texte imprimé Auteurs : Ilhem HELLARA Année de publication : 2014 Article en page(s) : p. 124-128 Langues : Français (fre) Mots-clés : ELECTROPHORESE CAPILLAIRE PROTEINES BILIRUBINE INTERFERENCE Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=74532
in Annales de Biologie Clinique > 72/01 (Janvier-février 2014) . - p. 124-128[article] La bilirubine interfère-t-elle sur l'électrophorèse capillaire des protéines sériques? [texte imprimé] / Ilhem HELLARA . - 2014 . - p. 124-128.
Langues : Français (fre)
in Annales de Biologie Clinique > 72/01 (Janvier-février 2014) . - p. 124-128
Mots-clés : ELECTROPHORESE CAPILLAIRE PROTEINES BILIRUBINE INTERFERENCE Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=74532 Réservation
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Cote Support Localisation Section Disponibilité Revue Revue Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Armoires à volets Disponible
DisponibleDe la détection des opiacées par réactions immunologiques à la mise au point d'une méthode utilisant l'électrophorèse capillaire in ABTL BVLT, 28/2 (2001)
PermalinkDétermination de la CDT en presence de variants au moyen de l'électrophorèse capillaire in ABTL BVLT, 36/6 (2009)
PermalinkL'électrophorèse capillaire : principe et applications in Annales de Biologie Clinique, 3 (1991)
PermalinkEvaluation du couplage protéinémie + électrophorèse des protéines sériques totales par technique capillaire (Capillarys 2, Sebia) : expérience clermontoise in Annales de Biologie Clinique, 6 (2010)
PermalinkL'électrophorèse des protéines sériques en biologie médicale : interférences et facteurs confonants / Colette Chapuis Cellier in RFL : Revue Francophone des Laboratoires, 499 (février 2018)
Permalink