Centre de Documentation Campus Montignies
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Attention, votre centre de documentation sera fermé du 27/04 au 12/05 inclus.
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2 résultat(s) recherche sur le mot-clé 'Saint-Joseph Gilly'
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Validation du dosage des IgE totales sur le Phadia 250 par immunofluorescence / Luca Hutsenband
Titre : Validation du dosage des IgE totales sur le Phadia 250 par immunofluorescence Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Luca Hutsenband, Auteur ; Caroline Charlier, Directeur de la recherche Editeur : Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale Année de publication : 2021 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : GHDC Saint-Joseph Gilly Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Ce travail de fin d’études a été réalisé au laboratoire du GHdC (Grand Hôpital de Charleroi) site Saint-Joseph à Gilly en chimie clinique dans le secteur ligne sérum. Le sujet central du mémoire consiste en la validation d’une méthode de dosage des immunoglobulines E totales. La mesure de la concentration de ces anticorps est réalisée
dans de nombreux laboratoires hospitaliers en cas de suspicion d’allergie. En effet, il s’agit des immunoglobulines sécrétées lorsqu’une substance étrangère pénètre dans
l’organisme (allergène). Donc déterminer leur concentration est le meilleur moyen de confirmer le diagnostic de réaction d’hypersensibilité. Par ailleurs, une production
excessive d’IgE peut également être associée à certaines parasitoses (infections provoquées par des helminthes). Au GHdC site Saint-Joseph, la concentration de ces anticorps est déterminée par immuno-chimiluminescence sur l’automate Immulite 2000 XPi (Siemens). Cependant, le contrat établi entre le laboratoire et la firme produisant cet appareil arrive à son terme. De ce fait, il faut mettre au point une méthode de mesure des immunoglobulines E totales sur un autre automate. L’objectif de ce mémoire est donc de mettre à l’étude la méthode de dosage immuno-enzymatique par fluorescence des IgE totales sur le Phadia 250 (ThermoFischer) afin de faire passer le test en routine.
La mise au point de la technique de mesure sur le Phadia 250 (TermoFischer) est divisée en deux parties : la vérification et la comparaison. La répétabilité, la reproductibilité, la justesse et la fidélité de la méthode sont étudiées à l’aide de deux pools sériques et de contrôles qualité (fournis par la firme). Les résultats permettent, une fois confrontés aux valeurs instaurées par la firme de production de l’automate (Phadia AB) et la Société Française de Biologie Clinique (Vassault), de valider ou non ces critères d’acceptabilité.
Ensuite, les concentrations de 41 échantillons de patient obtenues via le Phadia 250 (ThermoFischer) et via l’Immulite 2000 XPi sont comparées afin de vérifier la corrélation avec la technique de référence. Suite à l’ensemble de ces étapes, les résultats obtenus permettent de valider techniquement la méthode de dosage des IgE totales par immuno-fluorescence sur le Phadia 250 (ThermoFischer) et de commencer le test en routine sur cet automate.Note de contenu : Tables des matières
Remerciements ..................................................................................................................
Présentation du lieu de stage ............................................................................................
Introduction...................................................................................................................... 7
1) Généralités ............................................................................................................... 8
1.1) Les immunoglobulines ....................................................................................... 8
1.1.1 Rôle dans la réaction immunitaire humorale ............................................. 8
1.1.2 Structure des immunoglobulines.............................................................. 10
1.1.3 Classification des immunoglobulines........................................................ 13
1.2) Les immunoglobulines de type E ..................................................................... 15
1.2.1 Structure et fonction................................................................................. 15
1.2.2 Implication des IgE dans les réactions allergiques ................................... 16
1.2.2.1. La réaction d’hypersensibilité de type I................................................. 17
1.2.2.2. Le choc anaphylactique ......................................................................... 19
1.2.2.3. Tests réalisés en allergologie pour la mise en évidence d’une réaction
immédiate........................................................................................................... 20
1.2.3 Implication des IgE dans certaines infections parasitaires....................... 21
1.3) Présentation du Phadia 250 ............................................................................. 22
1.3.1 Présentation générale............................................................................... 22
1.3.2 Compartiments du Phadia 250 ................................................................. 23
1.3.2.1. La chambre d’immuno-réaction ............................................................ 23
1.3.2.2. La chambre de réaction enzymatique ................................................... 24
1.4) Principe du test ImmunoCAP pour le dosage des IgE totales .......................... 24
2) Objectifs et stratégie.............................................................................................. 27
3) Matériel et méthodes ............................................................................................ 28
3.1) Matériel............................................................................................................ 28
3.1.1 Echantillons étudiés.................................................................................. 28
3.1.1.1. Sélection des échantillons ..................................................................... 29
3.1.1.2. Conservation et interférences (spécificité) ........................................... 29
3.2) Méthodes ......................................................................................................... 30
3.2.1 Procédure d’utilisation du Phadia 250 ..................................................... 30
3.2.2 Valeurs usuelles du Phadia 250 ................................................................ 34
3.2.3 Vérification de la méthode de dosage...................................................... 35
3.2.3.1. Répétabilité............................................................................................ 35
5
3.2.3.2. Reproductibilité ..................................................................................... 36
3.2.3.3. Fidélité ................................................................................................... 36
3.2.3.4. Justesse .................................................................................................. 37
3.2.4 Comparaison avec la méthode de référence............................................ 37
4) Résultats et discussion........................................................................................... 38
4.1) Vérification de la méthode de dosage ............................................................. 38
4.1.1 Répétabilité............................................................................................... 38
4.1.2 Reproductibilité ........................................................................................ 40
4.1.3 Fidélité ...................................................................................................... 42
4.1.4 Justesse ..................................................................................................... 44
4.2) Comparaison avec la méthode de référence................................................... 46
Conclusion ...................................................................................................................... 56
Liste des illustrations ..................................................................................................... 57
Liste des tableaux........................................................................................................... 58
Bibliographie .................................................................................................................. 59
Annexes ..............................................................................................................................
Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=100369 Validation du dosage des IgE totales sur le Phadia 250 par immunofluorescence [TFE / Mémoire] / Luca Hutsenband, Auteur ; Caroline Charlier, Directeur de la recherche . - Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale, 2021.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur
Langues : Français (fre)
Mots-clés : GHDC Saint-Joseph Gilly Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Ce travail de fin d’études a été réalisé au laboratoire du GHdC (Grand Hôpital de Charleroi) site Saint-Joseph à Gilly en chimie clinique dans le secteur ligne sérum. Le sujet central du mémoire consiste en la validation d’une méthode de dosage des immunoglobulines E totales. La mesure de la concentration de ces anticorps est réalisée
dans de nombreux laboratoires hospitaliers en cas de suspicion d’allergie. En effet, il s’agit des immunoglobulines sécrétées lorsqu’une substance étrangère pénètre dans
l’organisme (allergène). Donc déterminer leur concentration est le meilleur moyen de confirmer le diagnostic de réaction d’hypersensibilité. Par ailleurs, une production
excessive d’IgE peut également être associée à certaines parasitoses (infections provoquées par des helminthes). Au GHdC site Saint-Joseph, la concentration de ces anticorps est déterminée par immuno-chimiluminescence sur l’automate Immulite 2000 XPi (Siemens). Cependant, le contrat établi entre le laboratoire et la firme produisant cet appareil arrive à son terme. De ce fait, il faut mettre au point une méthode de mesure des immunoglobulines E totales sur un autre automate. L’objectif de ce mémoire est donc de mettre à l’étude la méthode de dosage immuno-enzymatique par fluorescence des IgE totales sur le Phadia 250 (ThermoFischer) afin de faire passer le test en routine.
La mise au point de la technique de mesure sur le Phadia 250 (TermoFischer) est divisée en deux parties : la vérification et la comparaison. La répétabilité, la reproductibilité, la justesse et la fidélité de la méthode sont étudiées à l’aide de deux pools sériques et de contrôles qualité (fournis par la firme). Les résultats permettent, une fois confrontés aux valeurs instaurées par la firme de production de l’automate (Phadia AB) et la Société Française de Biologie Clinique (Vassault), de valider ou non ces critères d’acceptabilité.
Ensuite, les concentrations de 41 échantillons de patient obtenues via le Phadia 250 (ThermoFischer) et via l’Immulite 2000 XPi sont comparées afin de vérifier la corrélation avec la technique de référence. Suite à l’ensemble de ces étapes, les résultats obtenus permettent de valider techniquement la méthode de dosage des IgE totales par immuno-fluorescence sur le Phadia 250 (ThermoFischer) et de commencer le test en routine sur cet automate.Note de contenu : Tables des matières
Remerciements ..................................................................................................................
Présentation du lieu de stage ............................................................................................
Introduction...................................................................................................................... 7
1) Généralités ............................................................................................................... 8
1.1) Les immunoglobulines ....................................................................................... 8
1.1.1 Rôle dans la réaction immunitaire humorale ............................................. 8
1.1.2 Structure des immunoglobulines.............................................................. 10
1.1.3 Classification des immunoglobulines........................................................ 13
1.2) Les immunoglobulines de type E ..................................................................... 15
1.2.1 Structure et fonction................................................................................. 15
1.2.2 Implication des IgE dans les réactions allergiques ................................... 16
1.2.2.1. La réaction d’hypersensibilité de type I................................................. 17
1.2.2.2. Le choc anaphylactique ......................................................................... 19
1.2.2.3. Tests réalisés en allergologie pour la mise en évidence d’une réaction
immédiate........................................................................................................... 20
1.2.3 Implication des IgE dans certaines infections parasitaires....................... 21
1.3) Présentation du Phadia 250 ............................................................................. 22
1.3.1 Présentation générale............................................................................... 22
1.3.2 Compartiments du Phadia 250 ................................................................. 23
1.3.2.1. La chambre d’immuno-réaction ............................................................ 23
1.3.2.2. La chambre de réaction enzymatique ................................................... 24
1.4) Principe du test ImmunoCAP pour le dosage des IgE totales .......................... 24
2) Objectifs et stratégie.............................................................................................. 27
3) Matériel et méthodes ............................................................................................ 28
3.1) Matériel............................................................................................................ 28
3.1.1 Echantillons étudiés.................................................................................. 28
3.1.1.1. Sélection des échantillons ..................................................................... 29
3.1.1.2. Conservation et interférences (spécificité) ........................................... 29
3.2) Méthodes ......................................................................................................... 30
3.2.1 Procédure d’utilisation du Phadia 250 ..................................................... 30
3.2.2 Valeurs usuelles du Phadia 250 ................................................................ 34
3.2.3 Vérification de la méthode de dosage...................................................... 35
3.2.3.1. Répétabilité............................................................................................ 35
5
3.2.3.2. Reproductibilité ..................................................................................... 36
3.2.3.3. Fidélité ................................................................................................... 36
3.2.3.4. Justesse .................................................................................................. 37
3.2.4 Comparaison avec la méthode de référence............................................ 37
4) Résultats et discussion........................................................................................... 38
4.1) Vérification de la méthode de dosage ............................................................. 38
4.1.1 Répétabilité............................................................................................... 38
4.1.2 Reproductibilité ........................................................................................ 40
4.1.3 Fidélité ...................................................................................................... 42
4.1.4 Justesse ..................................................................................................... 44
4.2) Comparaison avec la méthode de référence................................................... 46
Conclusion ...................................................................................................................... 56
Liste des illustrations ..................................................................................................... 57
Liste des tableaux........................................................................................................... 58
Bibliographie .................................................................................................................. 59
Annexes ..............................................................................................................................
Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=100369 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Validation technique de I’identification d’espèces de dermatophytes et autres champignons filamenteux par spectrométrie de masse (technique du Maldi-Tof) / Aleandro Forgione
Titre : Validation technique de I’identification d’espèces de dermatophytes et autres champignons filamenteux par spectrométrie de masse (technique du Maldi-Tof) Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Aleandro Forgione, Auteur ; Julie Schmitz, Directeur de la recherche Editeur : Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale Année de publication : 2021 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : dermatophytes champignons filamenteux spectrométrie de masse technique du Maldi-Tof laboratoire de bactériologie Saint-Joseph Gilly Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Au vu des infections plus fréquentes causées par les mycètes plus précisément les dermatophytes et d’autres champignons filamenteux, le laboratoire de bactériologie de Saint-Joseph à Gilly a débuté une recherche sur une nouvelle méthode d’identification. Pour ce faire, l’objectif de ce travail est de valider un technique d’identification des dermatophytes et d’autres champignons filamenteux par spectrométrie de masse à l’aide du Maldi-Tof. Cette étude permettra de lancer cette technique en routine afin d’aider les laborantins dans l’identification des champignons et d’avoir un diagnostic plus rapidement par rapport à la méthode classique d’identification des mycètes. Cette méthode classique correspond à un examen microscopique et macroscopique. La stratégie de ce mémoire consiste à réaliser différents tests à partir de 31 souches de
plusieurs genres de champignons reçues du CHU de Liège. Une vérification des noms des souches, des tests de croissance et d’extraction ont été effectués afin d’obtenir les conditions optimales pour une bonne identification. La répétabilité, la fiabilité et la reproductibilité de la méthode ont été également analysées dans le but que la validation soit acceptée. Les résultats de ces expériences ont montré que 27 souches sur les 28 souches testées ont été identifiées avec succès à l’aide de la méthode classique du dépôt avec et sans acide formique sur la plaque du Maldi-Tof. Une extraction longue a été mise au point dans le cas d’un mauvais résultat lors de la procédure classique. Celle-ci a démontré un pourcentage d’identification de 100%. Le test de répétabilité réalisé 20 fois sur la même souche a révélé que l’ajout d’acide
formique lors du dépôt entraine des variations de scores sur l’automate et chaque identification a été correcte. Enfin, le test de fiabilité et de reproductibilité quant à lui a montré des résultats allant d’un pourcentage de 80% à 100% pour chaque identification de chaque souche. Toutes les manipulations qui ont été exécutées dans le but de valider la méthode d’identification à l’aide du Maldi-Tof ont fonctionné avec succès. Cette technique d’identification des dermatophytes et autres champignons filamenteux par spectrométrie de masse pourra donc être mise en routine au laboratoire de l’Hôpital Saint-Joseph.Note de contenu : Table des matières
REMERCIEMENTS 4
PRÉSENTATION DU LIEU DE STAGE 9
INTRODUCTION GÉNÉRALE 10
PARTIE THÉORIQUE 12
1. LES MYCÈTES 12
1.1 GÉNÉRALITÉS 12
1.2 STRUCTURE 13
1.2.1 COMPOSITION DE LA PAROI 13
1.2.2 MYCÉLIUM 14
1.2.3 LES SPORES 14
1.3 MODE DE VIE 15
1.4 CLASSIFICATION 15
1.5 IMPORTANCE DES CHAMPIGNONS 15
1.6 PATHOLOGIE HUMAINE 16
1.6.1 MYCOSES SUPERFICIELLES 16
1.6.1.1 MYCOSES CUTANÉES 16
1.6.1.2 MYCOSES SOUS-CUTANÉES 16
1.6.2 MYCOSES SYSTÉMIQUES 16
1.6.3 MYCOSES OPPORTUNISTES 16
2 LES CHAMPIGNONS FILAMENTEUX 17
2.1 LES DERMATOPHYTES 17
2.1.1 GÉNÉRALITÉS 17
2.1.2 LES GENRES 17
2.1.2.1 TRICHOPHYTON 17
2.1.2.2 MICROSPORUM 17
2.1.2.3 EPIDERMOPHYTON 17
2.1.3 IDENTIFICATION 18
2.1.3.1 ASPECTS MORPHOLOGIQUES 18
2.1.3.1.1 MORPHOLOGIE DES CONIDIES 18
2.1.3.1.2 MORPHOLOGIE DES MYCÉLIUMS 19
2.1.4 ORIGINE 19
2.1.5 CARACTÉRISATION DES SOUCHES MANIPULÉES AU LABORATOIRE 19
3 AUTRES CHAMPIGNONS FILAMENTEUX 24
3.1 ORGANE DE CARACTÉRISATION 24
3.2 CARACTÉRISATION DES SOUCHES 24
4 LE MALDI TOF 30
4.1 GÉNÉRALITÉ 30
4.2 LA SPECTROMETRIE DE MASSE 30
4.3 PRINCIPE DU MALDI-TOF 31
4.3.1 MATRICE 33
4.3.2 ANALYSE DES DONNÉES 33
4.4 LES BIBLIOTHÈQUES 33
4.4.1 IVD 33
4.4.2 RUO 34
4.5 VALIDATION TECHNIQUE 34
PARTIE PRATIQUE 35
1 OBJECTIF 35
2 MATÉRIEL ET RÉACTIFS 35
2.1 MATÉRIEL 35
2.2 RÉACTIFS 36
2.3 ÉCHANTILLONS 36
3 ENSEMENCEMENT ET CULTURE DE DERMATOPHYTES 36
3.1 CULTURE 36
4 IDENTIFICATION PAR SPECTROSCOPIE DE MASSE 38
4.1 MODE OPÉRATOIRE 38
4.2 EXTRACTION 39
4.3 CROISSANCE : 40
5 RÉSULTATS ET DISCUSSION 41
5.1 IDENTIFICATION 41
5.2 CULTURE 44
5.3 EXTRACTION 46
5.4 CROISSANCE 47
5.5 LA RÉPÉTABILITÉ 49
5.6 REPRODUCTIBILITÉ ET FIABILITÉ 51
CONCLUSION 54
LISTE DES ABRÉVIATIONS 56
LISTE DES FIGURES ET DES TABLEAUX 57
LEXIQUE 58
BIBLIOGRAPHIE 62
TABLE DES ANNEXES 68
ANNEXES 69Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=100297 Validation technique de I’identification d’espèces de dermatophytes et autres champignons filamenteux par spectrométrie de masse (technique du Maldi-Tof) [TFE / Mémoire] / Aleandro Forgione, Auteur ; Julie Schmitz, Directeur de la recherche . - Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale, 2021.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur
Langues : Français (fre)
Mots-clés : dermatophytes champignons filamenteux spectrométrie de masse technique du Maldi-Tof laboratoire de bactériologie Saint-Joseph Gilly Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Au vu des infections plus fréquentes causées par les mycètes plus précisément les dermatophytes et d’autres champignons filamenteux, le laboratoire de bactériologie de Saint-Joseph à Gilly a débuté une recherche sur une nouvelle méthode d’identification. Pour ce faire, l’objectif de ce travail est de valider un technique d’identification des dermatophytes et d’autres champignons filamenteux par spectrométrie de masse à l’aide du Maldi-Tof. Cette étude permettra de lancer cette technique en routine afin d’aider les laborantins dans l’identification des champignons et d’avoir un diagnostic plus rapidement par rapport à la méthode classique d’identification des mycètes. Cette méthode classique correspond à un examen microscopique et macroscopique. La stratégie de ce mémoire consiste à réaliser différents tests à partir de 31 souches de
plusieurs genres de champignons reçues du CHU de Liège. Une vérification des noms des souches, des tests de croissance et d’extraction ont été effectués afin d’obtenir les conditions optimales pour une bonne identification. La répétabilité, la fiabilité et la reproductibilité de la méthode ont été également analysées dans le but que la validation soit acceptée. Les résultats de ces expériences ont montré que 27 souches sur les 28 souches testées ont été identifiées avec succès à l’aide de la méthode classique du dépôt avec et sans acide formique sur la plaque du Maldi-Tof. Une extraction longue a été mise au point dans le cas d’un mauvais résultat lors de la procédure classique. Celle-ci a démontré un pourcentage d’identification de 100%. Le test de répétabilité réalisé 20 fois sur la même souche a révélé que l’ajout d’acide
formique lors du dépôt entraine des variations de scores sur l’automate et chaque identification a été correcte. Enfin, le test de fiabilité et de reproductibilité quant à lui a montré des résultats allant d’un pourcentage de 80% à 100% pour chaque identification de chaque souche. Toutes les manipulations qui ont été exécutées dans le but de valider la méthode d’identification à l’aide du Maldi-Tof ont fonctionné avec succès. Cette technique d’identification des dermatophytes et autres champignons filamenteux par spectrométrie de masse pourra donc être mise en routine au laboratoire de l’Hôpital Saint-Joseph.Note de contenu : Table des matières
REMERCIEMENTS 4
PRÉSENTATION DU LIEU DE STAGE 9
INTRODUCTION GÉNÉRALE 10
PARTIE THÉORIQUE 12
1. LES MYCÈTES 12
1.1 GÉNÉRALITÉS 12
1.2 STRUCTURE 13
1.2.1 COMPOSITION DE LA PAROI 13
1.2.2 MYCÉLIUM 14
1.2.3 LES SPORES 14
1.3 MODE DE VIE 15
1.4 CLASSIFICATION 15
1.5 IMPORTANCE DES CHAMPIGNONS 15
1.6 PATHOLOGIE HUMAINE 16
1.6.1 MYCOSES SUPERFICIELLES 16
1.6.1.1 MYCOSES CUTANÉES 16
1.6.1.2 MYCOSES SOUS-CUTANÉES 16
1.6.2 MYCOSES SYSTÉMIQUES 16
1.6.3 MYCOSES OPPORTUNISTES 16
2 LES CHAMPIGNONS FILAMENTEUX 17
2.1 LES DERMATOPHYTES 17
2.1.1 GÉNÉRALITÉS 17
2.1.2 LES GENRES 17
2.1.2.1 TRICHOPHYTON 17
2.1.2.2 MICROSPORUM 17
2.1.2.3 EPIDERMOPHYTON 17
2.1.3 IDENTIFICATION 18
2.1.3.1 ASPECTS MORPHOLOGIQUES 18
2.1.3.1.1 MORPHOLOGIE DES CONIDIES 18
2.1.3.1.2 MORPHOLOGIE DES MYCÉLIUMS 19
2.1.4 ORIGINE 19
2.1.5 CARACTÉRISATION DES SOUCHES MANIPULÉES AU LABORATOIRE 19
3 AUTRES CHAMPIGNONS FILAMENTEUX 24
3.1 ORGANE DE CARACTÉRISATION 24
3.2 CARACTÉRISATION DES SOUCHES 24
4 LE MALDI TOF 30
4.1 GÉNÉRALITÉ 30
4.2 LA SPECTROMETRIE DE MASSE 30
4.3 PRINCIPE DU MALDI-TOF 31
4.3.1 MATRICE 33
4.3.2 ANALYSE DES DONNÉES 33
4.4 LES BIBLIOTHÈQUES 33
4.4.1 IVD 33
4.4.2 RUO 34
4.5 VALIDATION TECHNIQUE 34
PARTIE PRATIQUE 35
1 OBJECTIF 35
2 MATÉRIEL ET RÉACTIFS 35
2.1 MATÉRIEL 35
2.2 RÉACTIFS 36
2.3 ÉCHANTILLONS 36
3 ENSEMENCEMENT ET CULTURE DE DERMATOPHYTES 36
3.1 CULTURE 36
4 IDENTIFICATION PAR SPECTROSCOPIE DE MASSE 38
4.1 MODE OPÉRATOIRE 38
4.2 EXTRACTION 39
4.3 CROISSANCE : 40
5 RÉSULTATS ET DISCUSSION 41
5.1 IDENTIFICATION 41
5.2 CULTURE 44
5.3 EXTRACTION 46
5.4 CROISSANCE 47
5.5 LA RÉPÉTABILITÉ 49
5.6 REPRODUCTIBILITÉ ET FIABILITÉ 51
CONCLUSION 54
LISTE DES ABRÉVIATIONS 56
LISTE DES FIGURES ET DES TABLEAUX 57
LEXIQUE 58
BIBLIOGRAPHIE 62
TABLE DES ANNEXES 68
ANNEXES 69Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=100297 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire