Centre de Documentation Campus Montignies
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Mercredi 9h-16h30
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Vendredi : 8h-16h30
Votre centre de documentation fermera de 12h30 à 13h ce vendredi 28 juin et fermera à 14h30.
Dès ce lundi 1er juillet jusqu'au mercredi 10 juillet l'horaire du centre de documentation sera adapté :
Lundi 1er juillet : de 8h à 12h et de 12h30 à 16h
Mardi 2 juillet : de 8h à 12h15
Mercredi 3 juillet : de 9h à 12h et de 12h30 à 15h15
Jeudi 4 juillet : de 8h à 12h30 et de 13h à 18h30
Lundi 8 juillet : de 8h à 12h et de 12h30 à 16h
Mardi 9 juillet : de 8h à 12h15
Réouverture dès ce lundi 19 août.
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Dès ce lundi 1er juillet jusqu'au mercredi 10 juillet l'horaire du centre de documentation sera adapté :
Lundi 1er juillet : de 8h à 12h et de 12h30 à 16h
Mardi 2 juillet : de 8h à 12h15
Mercredi 3 juillet : de 9h à 12h et de 12h30 à 15h15
Jeudi 4 juillet : de 8h à 12h30 et de 13h à 18h30
Lundi 8 juillet : de 8h à 12h et de 12h30 à 16h
Mardi 9 juillet : de 8h à 12h15
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Identification des levures par spectrométrie de masse de type MALDI-TOF / Marie-Elisabeth Bougnoux in RFL : Revue Francophone des Laboratoires, RFL 450 ([01/03/2013])
Exemplaires (1)
Cote Support Localisation Section Disponibilité Revue Revue Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Réserve Consultable sur demande auprès des documentalistes
Exclu du prêtIdentification des moisissures au laboratoire de routine hospitalière / Marion Blaize in RFL : Revue Francophone des Laboratoires, 529 (1er février 2021)
[article]
Titre : Identification des moisissures au laboratoire de routine hospitalière Type de document : texte imprimé Auteurs : Marion Blaize ; Anne-Cécile Normand ; Arnaud Fekkar ; et al. Année de publication : 2021 Article en page(s) : p. 58-65 Note générale : Issu du dossier : "Difficultés d'interprétation en biologie"
Doi : 10.1016/S1773-035X(21)00039-3Langues : Français (fre) Mots-clés : banque de données identification Maldi-TOF moisissure séquençage Résumé : La présence de moisissures en culture au laboratoire n’est pas rare et leur identification participe au diagnostic et à la prise en charge des patients. Les techniques d’identification des champignons filamenteux ont considérablement évolué depuis les années 2000 : à l’identification morphologique nécessitant une expertise importante se sont ajoutées des approches de biologie moléculaire basées sur la comparaison de séquences d’ADN ou de type Maldi-TOF (Matrix Assisted Laser Desorption Ionization - Time of Flight) comparant des profils protéiques à des bases de données de plus en plus fournies. Ces nouvelles techniques bien que plus couteuses que l’identification morphologique, permettent des identifications robustes et même de décrire de nouvelles espèces ou complexes d’espèces. Toutefois des erreurs ne sont pas à exclure et le rôle des techniciens et biologistes au sein des laboratoires reste essentiel pour analyser, critiquer et interpréter les résultats obtenus par ces nouvelles technologies et les confronter au contexte clinique des patients. Note de contenu : Plan
Introduction
Identification morphologique
Analyse macroscopique
Analyse microscopique
Espèces cryptiques
Biologie moléculaire
Spectrométrie de masse type Maldi-TOF
Les méthodes d’extraction
Les banques de référence
ConclusionPermalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=91943
in RFL : Revue Francophone des Laboratoires > 529 (1er février 2021) . - p. 58-65[article] Identification des moisissures au laboratoire de routine hospitalière [texte imprimé] / Marion Blaize ; Anne-Cécile Normand ; Arnaud Fekkar ; et al. . - 2021 . - p. 58-65.
Issu du dossier : "Difficultés d'interprétation en biologie"
Doi : 10.1016/S1773-035X(21)00039-3
Langues : Français (fre)
in RFL : Revue Francophone des Laboratoires > 529 (1er février 2021) . - p. 58-65
Mots-clés : banque de données identification Maldi-TOF moisissure séquençage Résumé : La présence de moisissures en culture au laboratoire n’est pas rare et leur identification participe au diagnostic et à la prise en charge des patients. Les techniques d’identification des champignons filamenteux ont considérablement évolué depuis les années 2000 : à l’identification morphologique nécessitant une expertise importante se sont ajoutées des approches de biologie moléculaire basées sur la comparaison de séquences d’ADN ou de type Maldi-TOF (Matrix Assisted Laser Desorption Ionization - Time of Flight) comparant des profils protéiques à des bases de données de plus en plus fournies. Ces nouvelles techniques bien que plus couteuses que l’identification morphologique, permettent des identifications robustes et même de décrire de nouvelles espèces ou complexes d’espèces. Toutefois des erreurs ne sont pas à exclure et le rôle des techniciens et biologistes au sein des laboratoires reste essentiel pour analyser, critiquer et interpréter les résultats obtenus par ces nouvelles technologies et les confronter au contexte clinique des patients. Note de contenu : Plan
Introduction
Identification morphologique
Analyse macroscopique
Analyse microscopique
Espèces cryptiques
Biologie moléculaire
Spectrométrie de masse type Maldi-TOF
Les méthodes d’extraction
Les banques de référence
ConclusionPermalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=91943 Réservation
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Exemplaires (1)
Cote Support Localisation Section Disponibilité Revue Revue Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Armoires à volets Disponible
DisponibleIsolement et identification des bactéries anaérobies strictes . Principaux germes isolés de produits pathologiques in MMI / Médecine et Maladies Infectieuses, HORS SERIE DEC. (1990)
[article]
Titre : Isolement et identification des bactéries anaérobies strictes . Principaux germes isolés de produits pathologiques Type de document : texte imprimé Année de publication : 1990 Article en page(s) : 83 - 88 Mots-clés : ANAEROBIES IDENTIFICATION Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=66683
in MMI / Médecine et Maladies Infectieuses > HORS SERIE DEC. (1990) . - 83 - 88[article] Isolement et identification des bactéries anaérobies strictes . Principaux germes isolés de produits pathologiques [texte imprimé] . - 1990 . - 83 - 88.
in MMI / Médecine et Maladies Infectieuses > HORS SERIE DEC. (1990) . - 83 - 88
Mots-clés : ANAEROBIES IDENTIFICATION Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=66683 Exemplaires (3)
Cote Support Localisation Section Disponibilité Revue Revue Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Réserve Consultable sur demande auprès des documentalistes
Exclu du prêtRevue Revue Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Réserve Consultable sur demande auprès des documentalistes
Exclu du prêtRevue Revue Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Réserve Consultable sur demande auprès des documentalistes
Exclu du prêtOutils moléculaires d'identification en bactériologie in MMI / Médecine et Maladies Infectieuses, SPECIAL MAI (1998)
[article]
Titre : Outils moléculaires d'identification en bactériologie Type de document : texte imprimé Année de publication : 1998 Article en page(s) : 380 - 382 Mots-clés : BACTERIES IDENTIFICATION SEQUENCAGE 16S rARN AMPLIFICATION ENZYMATIQUE Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=69272
in MMI / Médecine et Maladies Infectieuses > SPECIAL MAI (1998) . - 380 - 382[article] Outils moléculaires d'identification en bactériologie [texte imprimé] . - 1998 . - 380 - 382.
in MMI / Médecine et Maladies Infectieuses > SPECIAL MAI (1998) . - 380 - 382
Mots-clés : BACTERIES IDENTIFICATION SEQUENCAGE 16S rARN AMPLIFICATION ENZYMATIQUE Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=69272 Exemplaires (1)
Cote Support Localisation Section Disponibilité Revue Revue Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Réserve Consultable sur demande auprès des documentalistes
Exclu du prêtDétection de pathogènes dans les selles: jusqu'où l'automatisation est-elle possible ? / Pierre-Yves NOERENS
Titre : Détection de pathogènes dans les selles: jusqu'où l'automatisation est-elle possible ? Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Pierre-Yves NOERENS, Auteur Année de publication : 2016 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale CNDG Gosselies selle automatisation campylobacter parasitologie virologie rotavirus adénovirus identification chimiluminescence ETI-MAX ELISA Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Présentation générale du lieu de stage : ................................................................................................... 1
Présentation du laboratoire : .................................................................................................................... 2
Introduction ............................................................................................................................................. 3
Partie théorique........................................................................................................................................ 5
Chapitre I : Description des agents pathogènes traités ............................................................................ 7
1.1. Bactériologie : Le Campylobacter : ........................................................................................ 7
1.2. Parasitologie : .......................................................................................................................... 8
1.2.1. Le Cryptosporidium parvum : ......................................................................................... 8
1.2.2. L’Entamoeba histolytica : ................................................................................................ 9
1.2.3. Le Giardia lamblia ou Giardia intestinalis : ................................................................. 10
1.2.4. Le Blastocystis hominis : ............................................................................................... 11
1.3. Virologie : Rotavirus et adénovirus : ..................................................................................... 12
1.3.1. Introduction : ................................................................................................................. 12
1.3.2. Généralités sur les virus : .............................................................................................. 12
1.3.3. Rotavirus : ..................................................................................................................... 13
1.3.3.1. Généralités et structure : ........................................................................................ 13
1.3.3.2. Mode de transmission : .......................................................................................... 14
1.3.3.3. Cycle viral : ........................................................................................................... 14
1.3.3.4. Epidémiologie, tropisme et lieu d’infection : ........................................................ 15
1.3.3.5. Symptômes et risque de l’infection : ..................................................................... 16
1.3.3.6. Prévention de l’infection : ..................................................................................... 16
1.3.3.7. Traitement : ........................................................................................................... 16
1.3.4. Adénovirus humain (HAdVs) : ..................................................................................... 17
1.3.4.1. Généralités et structure : ........................................................................................ 17
1.3.4.2. Mode de transmission : .......................................................................................... 18
1.3.4.3. Cycle viral : ........................................................................................................... 19
1.3.4.4. Epidémiologie, tropisme et lieu d’infection : ........................................................ 20
1.3.4.5. Symptômes et risque de l’infection : ..................................................................... 20
1.3.4.6. Prévention de l’infection : ..................................................................................... 20
1.3.4.7. Traitement : ........................................................................................................... 20
Partie pratique........................................................................................................................................ 21
Chapitre II : Matériel et méthode .......................................................................................................... 23
2.1. Aperçu des méthodes d’identification en routine à la CNDG : ............................................. 23
2.2. Description des méthodes de routine : ................................................................................... 23
2.2.1. Méthode d’identification du Campylobacter : ............................................................... 23
2.2.2. Méthode d’identification des rotavirus et adénovirus : ................................................. 24
2.2.3. Méthode d’identification des parasites : ........................................................................ 25
2.3. Description des nouvelles méthodes évaluées : ..................................................................... 26
2.3.1. Le Liaison® Analyzer : ................................................................................................. 27
2.3.1.1. Composition du Liaison® : ................................................................................... 27
2.3.1.2. Matériel pour une analyse sur Liaison® : .............................................................. 28
2.3.1.3. La chimiluminescence : ......................................................................................... 29
2.3.1.4. Principe de fonctionnement du Liaison® : ............................................................ 31
2.3.1.5. Mode opératoire : .................................................................................................. 31
2.3.2. L’ETI-Max 3000® : ...................................................................................................... 34
2.3.2.1. Composition de l’ETI-Max : ................................................................................. 34
2.3.2.2. Matériel pour une analyse sur ETI-Max : .............................................................. 35
2.3.2.3. L’ELISA : .............................................................................................................. 35
2.3.2.4. Principe de fonctionnement de l’ETI-Max : .......................................................... 36
2.3.2.5. Mode opératoire : .................................................................................................. 36
Chapitre III : Résultats et interprétation ................................................................................................ 39
3.1. But de cette étude : ................................................................................................................ 39
3.2. L’échantillonnage : ................................................................................................................ 39
3.3. Analyse des populations et des échantillons : ....................................................................... 40
3.3.1. Pour le Campylobacter : ................................................................................................ 40
3.3.2. Pour les rotavirus et adénovirus : .................................................................................. 41
3.3.3. Pour les parasites : ......................................................................................................... 42
3.4. Rappel et définitions : ............................................................................................................ 43
3.4.1. La sensibilité d’un test : ................................................................................................. 43
3.4.2. La spécificité d’un test : ................................................................................................ 43
3.4.3. La valeur prédictive positive ou VPP : .......................................................................... 43
3.4.4. La valeur prédictive négative ou VPN : ........................................................................ 43
3.5. Résultats et interprétations : .................................................................................................. 44
3.5.1. Pour le Campylobacter : ................................................................................................ 44
3.5.2. Pour le rotavirus et l’adénovirus : ................................................................................. 47
3.5.3. Pour les parasites : ......................................................................................................... 50
3.5.3.1. Blastocystis hominis : ............................................................................................ 50
3.5.3.2. Entamoeba : ........................................................................................................... 53
3.5.3.3. Giardia : ................................................................................................................ 55
3.5.3.4. Cryptosporidium parvum : .................................................................................... 56
3.6. Discussion : ........................................................................................................................... 58
Conclusion ..............................................................................................................................61Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65683 Détection de pathogènes dans les selles: jusqu'où l'automatisation est-elle possible ? [TFE / Mémoire] / Pierre-Yves NOERENS, Auteur . - 2016.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : biologie médicale CNDG Gosselies selle automatisation campylobacter parasitologie virologie rotavirus adénovirus identification chimiluminescence ETI-MAX ELISA Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Présentation générale du lieu de stage : ................................................................................................... 1
Présentation du laboratoire : .................................................................................................................... 2
Introduction ............................................................................................................................................. 3
Partie théorique........................................................................................................................................ 5
Chapitre I : Description des agents pathogènes traités ............................................................................ 7
1.1. Bactériologie : Le Campylobacter : ........................................................................................ 7
1.2. Parasitologie : .......................................................................................................................... 8
1.2.1. Le Cryptosporidium parvum : ......................................................................................... 8
1.2.2. L’Entamoeba histolytica : ................................................................................................ 9
1.2.3. Le Giardia lamblia ou Giardia intestinalis : ................................................................. 10
1.2.4. Le Blastocystis hominis : ............................................................................................... 11
1.3. Virologie : Rotavirus et adénovirus : ..................................................................................... 12
1.3.1. Introduction : ................................................................................................................. 12
1.3.2. Généralités sur les virus : .............................................................................................. 12
1.3.3. Rotavirus : ..................................................................................................................... 13
1.3.3.1. Généralités et structure : ........................................................................................ 13
1.3.3.2. Mode de transmission : .......................................................................................... 14
1.3.3.3. Cycle viral : ........................................................................................................... 14
1.3.3.4. Epidémiologie, tropisme et lieu d’infection : ........................................................ 15
1.3.3.5. Symptômes et risque de l’infection : ..................................................................... 16
1.3.3.6. Prévention de l’infection : ..................................................................................... 16
1.3.3.7. Traitement : ........................................................................................................... 16
1.3.4. Adénovirus humain (HAdVs) : ..................................................................................... 17
1.3.4.1. Généralités et structure : ........................................................................................ 17
1.3.4.2. Mode de transmission : .......................................................................................... 18
1.3.4.3. Cycle viral : ........................................................................................................... 19
1.3.4.4. Epidémiologie, tropisme et lieu d’infection : ........................................................ 20
1.3.4.5. Symptômes et risque de l’infection : ..................................................................... 20
1.3.4.6. Prévention de l’infection : ..................................................................................... 20
1.3.4.7. Traitement : ........................................................................................................... 20
Partie pratique........................................................................................................................................ 21
Chapitre II : Matériel et méthode .......................................................................................................... 23
2.1. Aperçu des méthodes d’identification en routine à la CNDG : ............................................. 23
2.2. Description des méthodes de routine : ................................................................................... 23
2.2.1. Méthode d’identification du Campylobacter : ............................................................... 23
2.2.2. Méthode d’identification des rotavirus et adénovirus : ................................................. 24
2.2.3. Méthode d’identification des parasites : ........................................................................ 25
2.3. Description des nouvelles méthodes évaluées : ..................................................................... 26
2.3.1. Le Liaison® Analyzer : ................................................................................................. 27
2.3.1.1. Composition du Liaison® : ................................................................................... 27
2.3.1.2. Matériel pour une analyse sur Liaison® : .............................................................. 28
2.3.1.3. La chimiluminescence : ......................................................................................... 29
2.3.1.4. Principe de fonctionnement du Liaison® : ............................................................ 31
2.3.1.5. Mode opératoire : .................................................................................................. 31
2.3.2. L’ETI-Max 3000® : ...................................................................................................... 34
2.3.2.1. Composition de l’ETI-Max : ................................................................................. 34
2.3.2.2. Matériel pour une analyse sur ETI-Max : .............................................................. 35
2.3.2.3. L’ELISA : .............................................................................................................. 35
2.3.2.4. Principe de fonctionnement de l’ETI-Max : .......................................................... 36
2.3.2.5. Mode opératoire : .................................................................................................. 36
Chapitre III : Résultats et interprétation ................................................................................................ 39
3.1. But de cette étude : ................................................................................................................ 39
3.2. L’échantillonnage : ................................................................................................................ 39
3.3. Analyse des populations et des échantillons : ....................................................................... 40
3.3.1. Pour le Campylobacter : ................................................................................................ 40
3.3.2. Pour les rotavirus et adénovirus : .................................................................................. 41
3.3.3. Pour les parasites : ......................................................................................................... 42
3.4. Rappel et définitions : ............................................................................................................ 43
3.4.1. La sensibilité d’un test : ................................................................................................. 43
3.4.2. La spécificité d’un test : ................................................................................................ 43
3.4.3. La valeur prédictive positive ou VPP : .......................................................................... 43
3.4.4. La valeur prédictive négative ou VPN : ........................................................................ 43
3.5. Résultats et interprétations : .................................................................................................. 44
3.5.1. Pour le Campylobacter : ................................................................................................ 44
3.5.2. Pour le rotavirus et l’adénovirus : ................................................................................. 47
3.5.3. Pour les parasites : ......................................................................................................... 50
3.5.3.1. Blastocystis hominis : ............................................................................................ 50
3.5.3.2. Entamoeba : ........................................................................................................... 53
3.5.3.3. Giardia : ................................................................................................................ 55
3.5.3.4. Cryptosporidium parvum : .................................................................................... 56
3.6. Discussion : ........................................................................................................................... 58
Conclusion ..............................................................................................................................61Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65683 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Apport de la spectrométrie de masse Maldi-TOF pour identifier les dermatophytes / Stéphane Ranque in RFL : Revue Francophone des Laboratoires, 539 (Février 2022)
PermalinkPermalinkLes lectures d’enfance au prisme de l’adolescence / Jean-Marc Talpin in Enfances & psy, 82 (2019)
PermalinkPinocchio ou la question du départ : coordonnées locales du passage à l’acte violent des jeunes dits radicalisés / Gilles Garcia in Pensée Plurielle, 51 (mars 2020)
PermalinkPolice scientifique: comme à la télé, / Virginie Chantry in Athena : Recherche et développement technologique, 336 (Mars-avril 2018)
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