Centre de Documentation Campus Montignies
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Dès ce lundi 1er juillet jusqu'au mercredi 10 juillet l'horaire du centre de documentation sera adapté :
Lundi 1er juillet : de 8h à 12h et de 12h30 à 16h
Mardi 2 juillet : de 8h à 12h15
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Jeudi 4 juillet : de 8h à 12h30 et de 13h à 18h30
Lundi 8 juillet : de 8h à 12h et de 12h30 à 16h
Mardi 9 juillet : de 8h à 12h15
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Dès ce lundi 1er juillet jusqu'au mercredi 10 juillet l'horaire du centre de documentation sera adapté :
Lundi 1er juillet : de 8h à 12h et de 12h30 à 16h
Mardi 2 juillet : de 8h à 12h15
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Jeudi 4 juillet : de 8h à 12h30 et de 13h à 18h30
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15 résultat(s) recherche sur le mot-clé 'STANDARDISATION'
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Standardisation des méthodes d’électrophorèse capillaire Capillarys® CDT et Minicap® CDT par rapport à la méthode de référence IFCC / François Schellenberg in Annales de Biologie Clinique, 75/3 (Mai-juin 2017)
[article]
Titre : Standardisation des méthodes d’électrophorèse capillaire Capillarys® CDT et Minicap® CDT par rapport à la méthode de référence IFCC Type de document : texte imprimé Auteurs : François Schellenberg ; Camille Humeau Année de publication : 2017 Article en page(s) : p. 319-326 Langues : Français (fre) Mots-clés : CDT marqueur d’alcoolisme électrophorèse capillaire standardisation Résumé : La CDT (carbohydrate-deficient transferrine) est un marqueur d’alcoolisme chronique de plus en plus utilisé en pratique courante pour le dépistage et le suivi des patients. L’absence de standardisation aboutit à l’existence d’autant de valeurs de référence que de techniques de dosage. Le groupe de travail de l’IFCC consacré à la CDT propose une standardisation utilisant des calibrateurs dont la valeur est établie par la méthode de référence Dans cette étude, nous avons comparé les techniques d’électrophorèse capillaire Capillarys® et Minicap® CDT (Sebia, Lisses, France) à la méthode de référence avant et après standardisation sur 126 échantillons couvrant la gamme de mesure de la CDT. La corrélation est très élevée (r = 0,997) pour les deux automates avec la méthode de référence, et le coefficient de concordance évalué selon Mc Bride est “presque parfait” (supérieur à 0,997 pour les deux automates). Le nombre d’écarts supérieurs à la limite acceptable entre les résultats des automates étudiés et ceux obtenus par la méthode de référence passe de 44 à 1 pour Capillarys® CDT et de 53 à 5 pour Minicap® CDT. Ces résultats démontrent l’efficacité de la standardisation des techniques de dosage de la CDT des deux automates étudiés obtenue par la calibration avec les étalons dont la valeur a été assignée sur la méthode de référence.
Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=76294
in Annales de Biologie Clinique > 75/3 (Mai-juin 2017) . - p. 319-326[article] Standardisation des méthodes d’électrophorèse capillaire Capillarys® CDT et Minicap® CDT par rapport à la méthode de référence IFCC [texte imprimé] / François Schellenberg ; Camille Humeau . - 2017 . - p. 319-326.
Langues : Français (fre)
in Annales de Biologie Clinique > 75/3 (Mai-juin 2017) . - p. 319-326
Mots-clés : CDT marqueur d’alcoolisme électrophorèse capillaire standardisation Résumé : La CDT (carbohydrate-deficient transferrine) est un marqueur d’alcoolisme chronique de plus en plus utilisé en pratique courante pour le dépistage et le suivi des patients. L’absence de standardisation aboutit à l’existence d’autant de valeurs de référence que de techniques de dosage. Le groupe de travail de l’IFCC consacré à la CDT propose une standardisation utilisant des calibrateurs dont la valeur est établie par la méthode de référence Dans cette étude, nous avons comparé les techniques d’électrophorèse capillaire Capillarys® et Minicap® CDT (Sebia, Lisses, France) à la méthode de référence avant et après standardisation sur 126 échantillons couvrant la gamme de mesure de la CDT. La corrélation est très élevée (r = 0,997) pour les deux automates avec la méthode de référence, et le coefficient de concordance évalué selon Mc Bride est “presque parfait” (supérieur à 0,997 pour les deux automates). Le nombre d’écarts supérieurs à la limite acceptable entre les résultats des automates étudiés et ceux obtenus par la méthode de référence passe de 44 à 1 pour Capillarys® CDT et de 53 à 5 pour Minicap® CDT. Ces résultats démontrent l’efficacité de la standardisation des techniques de dosage de la CDT des deux automates étudiés obtenue par la calibration avec les étalons dont la valeur a été assignée sur la méthode de référence.
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Cote Support Localisation Section Disponibilité Revue Revue Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Armoires à volets Disponible
DisponibleL’implémentation du dosage de la CDT par l’électrophorèse capillaire / Samia Oulhaj
Titre : L’implémentation du dosage de la CDT par l’électrophorèse capillaire Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Samia Oulhaj, Auteur ; Jérôme Cornil, Directeur de la recherche Editeur : Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale Année de publication : 2022 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : CDT IFCC transferrine standardisation implémentation électrophorèse capillaire Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : L’intérêt principal de ce travail de fin d’étude est l’implémentation du dosage de la CDT par électrophorèse capillaire dans le laboratoire su CHRSM du site de la Sambre. La CDT ( carbohydrate-deficient transferrine) est un marqueur d’éthylisme chronique, avec une meilleur sensibilité et spécificité que les autre marqueurs biologiques historiques citée dans ce travail. La consommation d’alcool altère la métabolisation de la transferrine, en altérant des enzymes hépatique, le pourcentage en CDT se voit alors augmenté. Le dosage de la CDT est prescrit pour détecter une consommation précoce d’un éthylisme chronique pour prévenir des complication hépatique par exemple, le suivi de sevrage à l’alcool, dans la médecine de travail, comme pour l’obtention d’un certificat de pilote d’avion, ou encore la réattribution ou suspension du permis de conduite. La standardisation mis en place par l’IFCC, ne contribue pas qu’à l’étalonnage du dosage, mais aussi à la redéfinition de CDT, seul la disialotransferrine sera dosée, l’asialotransferrine ne sera plus compris dans la valeurs de CDT due à son instabilité. La standardisation du dosage de la CDT montre d’excellent résultats de répétabilité et de reproductibilité par rapport aux résultats du dosage non calibrée. Les limites de dosage manipulations ont mis en évidence l’interférence par le pics monoclonaux ou polyclonaux rencontrés lors de électrophorèses des protéines sériques. Note de contenu : Présentation du lieu de stage ............................................................................................. 4
Introduction générale......................................................................................................... 5
Contexte général ................................................................................................................ 6
1. Chapitre 1 : La CDT .............................................................................................................. 6
1.1. Consommation d’alcool .................................................................................................................. 6
1.2. L’alcool ............................................................................................................................................ 7
1.3. Marqueurs biologiques d’éthylisme ............................................................................................... 8
1.4. La Transferrine et ses isoformes ................................................................................................... 10
1.5. L’alcool et la transferrine .............................................................................................................. 12
1.6. La CDT ........................................................................................................................................... 13
2. Chapitre 2 : L’électrophorèse capillaire ............................................................................. 25
2.1. Principe ......................................................................................................................................... 25
2.2. Composition .................................................................................................................................. 26
2.3. Exemples de dosage ...................................................................................................................... 27
Objectifs et stratégie ........................................................................................................ 31
Matériels et méthodes ..................................................................................................... 32
1. Réactifs ............................................................................................................................. 32
1.1. Kit capillarys® CDT ......................................................................................................................... 32
1.2. Autres réactifs, contrôles et calibreur........................................................................................... 33
2. Matériels et appareils ....................................................................................................... 33
2.1. Matériels ....................................................................................................................................... 33
2.2. Appareil ......................................................................................................................................... 34
3. Échantillons ...................................................................................................................... 35
4. Implémentation du dosage ............................................................................................... 35
5. Calibration ........................................................................................................................ 36
6. Contrôle normal et pathologique ...................................................................................... 37
7. La fidélité .......................................................................................................................... 37
8. La répétabilité ................................................................................................................... 38
9. La reproductibilité ............................................................................................................. 38
10. La stabilité .................................................................................................................... 38
11. Interférences du dosage ................................................................................................ 39
11.1. L’hémolyse .................................................................................................................................... 39
11.2. Variantes génétiques de la transferrine ........................................................................................ 39
11.3. Lésions hépatiques (maladie grave en phase terminale). ............................................................. 39
11.4. Les composants monoclonaux ou fraction polyclonale élevée ..................................................... 40
Résultats .......................................................................................................................... 41
1. Calibration ........................................................................................................................ 41
1.1. Calibration à l’installation ............................................................................................................. 41
1.2. Calibration changement de lot...................................................................................................... 41
3
2. Évaluation de la répétabilité ............................................................................................. 42
2.1. Répétabilité .................................................................................................................. 42
2.2. Répétabilité du POOL bas ............................................................................................................. 43
2.3. Répétabilité du POOL intermédiaire ............................................................................................ 44
2.4. Répétabilité du POOL intermédiaire ............................................................................................ 45
2.5. Répétabilité du POOL haut ........................................................................................................... 46
2.6. Répétabilité du POOL haut ........................................................................................................... 47
3. Évaluation de la reproductibilité ....................................................................................... 48
3.1. Reproductibilité « Contrôle normal » ........................................................................................... 48
3.2. Reproductibilité « Contrôle pathologique » ................................................................................. 49
3.3. Reproductibilité « contrôle normal » inter lot .............................................................................. 50
4. Stabilité du sérum pour le dosage de la CDT ...................................................................... 51
5. Interférences .................................................................................................................... 54
5.1. Variants transferrines ................................................................................................................... 54
5.2. L’hémolyse .................................................................................................................................... 55
5.3. Analyse d’interférences apporté par les blocs beta- gamma des électrogrammes des protéines
sérique 56
5.4. Analyse d’interférences apporté par des pics monoclonaux ou polyclonaux des électrogrammes
des protéines sérique .................................................................................................................................. 57
6. Comparaison des résultats avec le laboratoire sous-traitant. ............................................ 60
7. Résultats d’échantillon du laboratoire partenaire ............................................................. 62
8. Exemples de dosage de CDT de patients en urgence .......................................................... 62
9. Suivi de patient éthylique lors d’une hospitalisation ......................................................... 63
Discussion ........................................................................................................................ 64
1. La calibration (Point 1 page 40) ......................................................................................... 64
2. Évaluation de la répétabilité et la reproductivité de la CDT et CDT-IFCC (Point 2 et 3 pages
41-46 et 47-49) .......................................................................................................................... 65
4.1. Variants transferrine (Point 5.1 pages 53) .................................................................................... 67
4.2. L’hémolyse. (Point 5.2 pages 54) .................................................................................................. 67
4.3. Analyse d’interférences apporté par des blocs beta-gamma des électrogrammes des protéines
sérique (Point 5.3 page 55) ......................................................................................................................... 69
5. Comparaison des résultats avec le laboratoire sous-traitant. (Point 6 pages 59-60) ........... 70
6. Comparaison des résultats avec le laboratoire partenaire. (Point 7 des résultats à la page
61) 71
7. Dosage de la CDT de patients en urgences. (Point 8 des résultats à la page 61) ................. 71
8. Suivi de patient éthylique lors d’une hospitalisation (Point 9 des résultats de la page 62) . 71
Conclusion........................................................................................................................ 73
Liste des figures ............................................................................................................... 74
Liste des tables ................................................................................................................. 76
Bibliographie ................................................................................................................... 77
Annexes ........................................................................................................................... 80
Résumé ............................................................................................................................ 83Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=105748 L’implémentation du dosage de la CDT par l’électrophorèse capillaire [TFE / Mémoire] / Samia Oulhaj, Auteur ; Jérôme Cornil, Directeur de la recherche . - Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale, 2022.
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Langues : Français (fre)
Mots-clés : CDT IFCC transferrine standardisation implémentation électrophorèse capillaire Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : L’intérêt principal de ce travail de fin d’étude est l’implémentation du dosage de la CDT par électrophorèse capillaire dans le laboratoire su CHRSM du site de la Sambre. La CDT ( carbohydrate-deficient transferrine) est un marqueur d’éthylisme chronique, avec une meilleur sensibilité et spécificité que les autre marqueurs biologiques historiques citée dans ce travail. La consommation d’alcool altère la métabolisation de la transferrine, en altérant des enzymes hépatique, le pourcentage en CDT se voit alors augmenté. Le dosage de la CDT est prescrit pour détecter une consommation précoce d’un éthylisme chronique pour prévenir des complication hépatique par exemple, le suivi de sevrage à l’alcool, dans la médecine de travail, comme pour l’obtention d’un certificat de pilote d’avion, ou encore la réattribution ou suspension du permis de conduite. La standardisation mis en place par l’IFCC, ne contribue pas qu’à l’étalonnage du dosage, mais aussi à la redéfinition de CDT, seul la disialotransferrine sera dosée, l’asialotransferrine ne sera plus compris dans la valeurs de CDT due à son instabilité. La standardisation du dosage de la CDT montre d’excellent résultats de répétabilité et de reproductibilité par rapport aux résultats du dosage non calibrée. Les limites de dosage manipulations ont mis en évidence l’interférence par le pics monoclonaux ou polyclonaux rencontrés lors de électrophorèses des protéines sériques. Note de contenu : Présentation du lieu de stage ............................................................................................. 4
Introduction générale......................................................................................................... 5
Contexte général ................................................................................................................ 6
1. Chapitre 1 : La CDT .............................................................................................................. 6
1.1. Consommation d’alcool .................................................................................................................. 6
1.2. L’alcool ............................................................................................................................................ 7
1.3. Marqueurs biologiques d’éthylisme ............................................................................................... 8
1.4. La Transferrine et ses isoformes ................................................................................................... 10
1.5. L’alcool et la transferrine .............................................................................................................. 12
1.6. La CDT ........................................................................................................................................... 13
2. Chapitre 2 : L’électrophorèse capillaire ............................................................................. 25
2.1. Principe ......................................................................................................................................... 25
2.2. Composition .................................................................................................................................. 26
2.3. Exemples de dosage ...................................................................................................................... 27
Objectifs et stratégie ........................................................................................................ 31
Matériels et méthodes ..................................................................................................... 32
1. Réactifs ............................................................................................................................. 32
1.1. Kit capillarys® CDT ......................................................................................................................... 32
1.2. Autres réactifs, contrôles et calibreur........................................................................................... 33
2. Matériels et appareils ....................................................................................................... 33
2.1. Matériels ....................................................................................................................................... 33
2.2. Appareil ......................................................................................................................................... 34
3. Échantillons ...................................................................................................................... 35
4. Implémentation du dosage ............................................................................................... 35
5. Calibration ........................................................................................................................ 36
6. Contrôle normal et pathologique ...................................................................................... 37
7. La fidélité .......................................................................................................................... 37
8. La répétabilité ................................................................................................................... 38
9. La reproductibilité ............................................................................................................. 38
10. La stabilité .................................................................................................................... 38
11. Interférences du dosage ................................................................................................ 39
11.1. L’hémolyse .................................................................................................................................... 39
11.2. Variantes génétiques de la transferrine ........................................................................................ 39
11.3. Lésions hépatiques (maladie grave en phase terminale). ............................................................. 39
11.4. Les composants monoclonaux ou fraction polyclonale élevée ..................................................... 40
Résultats .......................................................................................................................... 41
1. Calibration ........................................................................................................................ 41
1.1. Calibration à l’installation ............................................................................................................. 41
1.2. Calibration changement de lot...................................................................................................... 41
3
2. Évaluation de la répétabilité ............................................................................................. 42
2.1. Répétabilité .................................................................................................................. 42
2.2. Répétabilité du POOL bas ............................................................................................................. 43
2.3. Répétabilité du POOL intermédiaire ............................................................................................ 44
2.4. Répétabilité du POOL intermédiaire ............................................................................................ 45
2.5. Répétabilité du POOL haut ........................................................................................................... 46
2.6. Répétabilité du POOL haut ........................................................................................................... 47
3. Évaluation de la reproductibilité ....................................................................................... 48
3.1. Reproductibilité « Contrôle normal » ........................................................................................... 48
3.2. Reproductibilité « Contrôle pathologique » ................................................................................. 49
3.3. Reproductibilité « contrôle normal » inter lot .............................................................................. 50
4. Stabilité du sérum pour le dosage de la CDT ...................................................................... 51
5. Interférences .................................................................................................................... 54
5.1. Variants transferrines ................................................................................................................... 54
5.2. L’hémolyse .................................................................................................................................... 55
5.3. Analyse d’interférences apporté par les blocs beta- gamma des électrogrammes des protéines
sérique 56
5.4. Analyse d’interférences apporté par des pics monoclonaux ou polyclonaux des électrogrammes
des protéines sérique .................................................................................................................................. 57
6. Comparaison des résultats avec le laboratoire sous-traitant. ............................................ 60
7. Résultats d’échantillon du laboratoire partenaire ............................................................. 62
8. Exemples de dosage de CDT de patients en urgence .......................................................... 62
9. Suivi de patient éthylique lors d’une hospitalisation ......................................................... 63
Discussion ........................................................................................................................ 64
1. La calibration (Point 1 page 40) ......................................................................................... 64
2. Évaluation de la répétabilité et la reproductivité de la CDT et CDT-IFCC (Point 2 et 3 pages
41-46 et 47-49) .......................................................................................................................... 65
4.1. Variants transferrine (Point 5.1 pages 53) .................................................................................... 67
4.2. L’hémolyse. (Point 5.2 pages 54) .................................................................................................. 67
4.3. Analyse d’interférences apporté par des blocs beta-gamma des électrogrammes des protéines
sérique (Point 5.3 page 55) ......................................................................................................................... 69
5. Comparaison des résultats avec le laboratoire sous-traitant. (Point 6 pages 59-60) ........... 70
6. Comparaison des résultats avec le laboratoire partenaire. (Point 7 des résultats à la page
61) 71
7. Dosage de la CDT de patients en urgences. (Point 8 des résultats à la page 61) ................. 71
8. Suivi de patient éthylique lors d’une hospitalisation (Point 9 des résultats de la page 62) . 71
Conclusion........................................................................................................................ 73
Liste des figures ............................................................................................................... 74
Liste des tables ................................................................................................................. 76
Bibliographie ................................................................................................................... 77
Annexes ........................................................................................................................... 80
Résumé ............................................................................................................................ 83Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=105748 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Recommandations analytiques et cliniques pour l’utilisation de la bilirubinémie en néonatalogie / Agnès Mailloux in Annales de Biologie Clinique, Vol. 78, n°4 (Juillet-Août 2020)
[article]
Titre : Recommandations analytiques et cliniques pour l’utilisation de la bilirubinémie en néonatalogie Type de document : texte imprimé Auteurs : Agnès Mailloux ; Anne Cortey ; Vincent Delatour ; et al. Année de publication : 2020 Article en page(s) : p. 383-397 Note générale : DOI : 10.1684/abc.2020.1571 Langues : Français (fre) Mots-clés : bilirubine totale nouveau-né harmonisation standardisation recommandations impact clinique Résumé : Le groupe de travail « Bilirubine néonatale » a réuni des membres de la SFBC, du CNBH et du CNRHP pour réaliser une étude biologique et clinique sur l’utilisation de la bilirubinémie néonatale dans le cadre du diagnostic et de la surveillance de l’ictère du nouveau-né. Un résumé des conclusions d’un sondage national sur les pratiques analytiques et biologiques est fait pour une évaluation de l’état des lieux en France. Les recommandations de la Société française de néonatalogie (SFN) sont fondées notamment sur une détermination fiable de la bilirubinémie totale faite au laboratoire comme indication de la mise sous photothérapie. Des abaques avec des seuils précis sont proposés, en fonction du nombre d’heures de vie du nouveau-né. Or, des études montrent des défauts de standardisation de cette technique en particulier d’un fournisseur à l’autre, avec des conséquences probables sur l’interprétation clinique des résultats. Nous présentons dans cet article les résultats d’une étude nationale multicentrique d’harmonisation de la bilirubine néonatale réalisée pour progresser sur cette question. Au-delà des aspects analytiques, les conséquences cliniques des défauts d’harmonisation observés sont évaluées. Des recommandations pour les laboratoires de biologie médicale sont enfin proposées, à adapter dans le cadre local. Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=88344
in Annales de Biologie Clinique > Vol. 78, n°4 (Juillet-Août 2020) . - p. 383-397[article] Recommandations analytiques et cliniques pour l’utilisation de la bilirubinémie en néonatalogie [texte imprimé] / Agnès Mailloux ; Anne Cortey ; Vincent Delatour ; et al. . - 2020 . - p. 383-397.
DOI : 10.1684/abc.2020.1571
Langues : Français (fre)
in Annales de Biologie Clinique > Vol. 78, n°4 (Juillet-Août 2020) . - p. 383-397
Mots-clés : bilirubine totale nouveau-né harmonisation standardisation recommandations impact clinique Résumé : Le groupe de travail « Bilirubine néonatale » a réuni des membres de la SFBC, du CNBH et du CNRHP pour réaliser une étude biologique et clinique sur l’utilisation de la bilirubinémie néonatale dans le cadre du diagnostic et de la surveillance de l’ictère du nouveau-né. Un résumé des conclusions d’un sondage national sur les pratiques analytiques et biologiques est fait pour une évaluation de l’état des lieux en France. Les recommandations de la Société française de néonatalogie (SFN) sont fondées notamment sur une détermination fiable de la bilirubinémie totale faite au laboratoire comme indication de la mise sous photothérapie. Des abaques avec des seuils précis sont proposés, en fonction du nombre d’heures de vie du nouveau-né. Or, des études montrent des défauts de standardisation de cette technique en particulier d’un fournisseur à l’autre, avec des conséquences probables sur l’interprétation clinique des résultats. Nous présentons dans cet article les résultats d’une étude nationale multicentrique d’harmonisation de la bilirubine néonatale réalisée pour progresser sur cette question. Au-delà des aspects analytiques, les conséquences cliniques des défauts d’harmonisation observés sont évaluées. Des recommandations pour les laboratoires de biologie médicale sont enfin proposées, à adapter dans le cadre local. Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=88344 Réservation
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Cote Support Localisation Section Disponibilité Revue Revue Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Armoires à volets Disponible
DisponibleValeurs de référence de la phosphatase alcaline en pédiatrie et variations physiopathologiques / Roselyne Garnotel in Annales de Biologie Clinique, Vol. 78, n°6 (Novembre-décembre 2020)
[article]
Titre : Valeurs de référence de la phosphatase alcaline en pédiatrie et variations physiopathologiques Type de document : texte imprimé Auteurs : Roselyne Garnotel Année de publication : 2020 Article en page(s) : p. 604-608 Note générale : DOI : 10.1684/abc.2020.1598 Langues : Français (fre) Mots-clés : phosphatase alcaline standardisation valeurs de référence hypophosphatasie Résumé : L’activité de la phosphatase alcaline est un paramètre inclus en biochimie courante dans le bilan hépatique. Ses iso-enzymes sont d’origines cellulaires diverses induisant des variations physiologiques en fonction de l’âge et du sexe. La standardisation des méthodes de dosage de l’activité de la phosphatase alcaline ainsi que de nombreuses études internationales ont permis d’uniformiser les valeurs de référence pédiatriques. Les étiologies des augmentations de l’activité phosphatase alcaline dans le plasma sont bien connues, mais les diminutions de l’activité phosphatase alcaline sont peu explorées et peuvent permettre le diagnostic de certaines pathologies dont l’hypophosphatasie, maladie rare traitable. Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=90301
in Annales de Biologie Clinique > Vol. 78, n°6 (Novembre-décembre 2020) . - p. 604-608[article] Valeurs de référence de la phosphatase alcaline en pédiatrie et variations physiopathologiques [texte imprimé] / Roselyne Garnotel . - 2020 . - p. 604-608.
DOI : 10.1684/abc.2020.1598
Langues : Français (fre)
in Annales de Biologie Clinique > Vol. 78, n°6 (Novembre-décembre 2020) . - p. 604-608
Mots-clés : phosphatase alcaline standardisation valeurs de référence hypophosphatasie Résumé : L’activité de la phosphatase alcaline est un paramètre inclus en biochimie courante dans le bilan hépatique. Ses iso-enzymes sont d’origines cellulaires diverses induisant des variations physiologiques en fonction de l’âge et du sexe. La standardisation des méthodes de dosage de l’activité de la phosphatase alcaline ainsi que de nombreuses études internationales ont permis d’uniformiser les valeurs de référence pédiatriques. Les étiologies des augmentations de l’activité phosphatase alcaline dans le plasma sont bien connues, mais les diminutions de l’activité phosphatase alcaline sont peu explorées et peuvent permettre le diagnostic de certaines pathologies dont l’hypophosphatasie, maladie rare traitable. Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=90301 Réservation
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DisponibleConcentration massique de la créatine kinase MB : variabilité selon le système analytique in Annales de Biologie Clinique, 10 / 11 (1996)
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Titre : Concentration massique de la créatine kinase MB : variabilité selon le système analytique Type de document : texte imprimé Année de publication : 1996 Article en page(s) : 381 - 382 Mots-clés : CK MB STANDARDISATION Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=68811
in Annales de Biologie Clinique > 10 / 11 (1996) . - 381 - 382[article] Concentration massique de la créatine kinase MB : variabilité selon le système analytique [texte imprimé] . - 1996 . - 381 - 382.
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