Centre de Documentation Campus Montignies
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Lundi : 8h-18h30
Mardi : 8h-18h30
Mercredi 9h-16h30
Jeudi : 8h-18h30
Vendredi : 8h-16h30
Attention, votre centre de documentation sera fermé du 27/04 au 12/05 inclus.
Lundi : 8h-18h30
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Détection et localisation des protéines HOXD9 au cours du développement embryonnaire précoce des mammifères : sélection d’un anticorps et immunofluorescence / Cédric DE SUTTER
Titre : Détection et localisation des protéines HOXD9 au cours du développement embryonnaire précoce des mammifères : sélection d’un anticorps et immunofluorescence Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Cédric DE SUTTER, Auteur Année de publication : 2014 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : BIOLOGIE MÉDICALE ISV HOXD9 HOX GAMETOGENESE SPERMATOGENESE OVOGENESE FOLLICULOGENESE COC'S SOURIS HEK293T WESTERN BLOT IMMUNOFLUORESCENCE Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65383 Détection et localisation des protéines HOXD9 au cours du développement embryonnaire précoce des mammifères : sélection d’un anticorps et immunofluorescence [TFE / Mémoire] / Cédric DE SUTTER, Auteur . - 2014.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur
Langues : Français (fre)
Mots-clés : BIOLOGIE MÉDICALE ISV HOXD9 HOX GAMETOGENESE SPERMATOGENESE OVOGENESE FOLLICULOGENESE COC'S SOURIS HEK293T WESTERN BLOT IMMUNOFLUORESCENCE Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65383 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Détection moléculaire d’Aspergillus spp. et de Pneumocystis jirovecii à l’aide de l’ELITe InGenius / Bérénice Veraghen
Titre : Détection moléculaire d’Aspergillus spp. et de Pneumocystis jirovecii à l’aide de l’ELITe InGenius Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Bérénice Veraghen, Auteur ; Nicolas Kesteman, Directeur de la recherche Editeur : Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale Année de publication : 2022 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Aspergillus spp. et Pneumocystis jirovecii sont deux champignons capables de causer de graves pathologies chez l’homme. De la pneumopathie à l’infection invasive, ces agents pathogènes sont insidieux, difficilement détectables et le diagnostic est souvent très complexe. Afin de gagner le plus de temps possible et d’améliorer les chances de survie du patient face à ces infections souvent fatales, il est impératif d’améliorer la vitesse et la qualité des diagnostics. Pour cela, un outil s’impose facilement : la biologie moléculaire. Dans le cadre de ce travail, deux kits de QPCR de la société ELITech (Aspergillus et Pneumocystis) sont vérifiés intégralement : exactitude, reproductibilité, sensibilité, spécificité ainsi que la linéarité (pour le kit Aspergillus) sont étudiées. Cette vérification est réalisée grâce à de nombreux échantillons provenant du CHU UCL Mont-Godinne et d’ailleurs. Ces
échantillons sont principalement des lavages broncho-alvéolaires. L’apport de ces kits au diagnostic est également étudié. La vérification s’effectue sur l’automate ELITe InGenius de la société ELITech et les échantillons y sont traités de la manière standard. Des calibrations et des contrôles sont
également réalisés à l’aide de l’automate. Les résultats ont permis de révéler que le kit Pneumocystis possède une grande exactitude, reproductibilité et spécificité mais une sensibilité moins bonne. Le kit Aspergillus possède une exactitude moyenne, une mauvaise spécificité, une très bonne linéarité, sensibilité et une bonne reproductibilité à haute concentration de matériel génétique.
Concernant le kit Aspergillus, il s’est avéré qu’il existe une possibilité de discriminer les différentes classifications de pathologies fongiques invasives sur base des résultats donnés par l’InGenius. En effet, il est possible de différencier les aspergilloses prouvées, probables, possibles et les cas négatifs ou les cas de portage sain. Il est indéniable que ces outils de biologie moléculaire représentent un grand atout pour aider au diagnostic des maladies fongiques et que leur utilisation devrait être de plus en plus répandue durant les années à venir. Leur utilisation ne peut être qu’encouragée.Note de contenu : Table des matières
Présentation de l’établissement ...............................................................................................5
Introduction générale ..............................................................................................................6
Contexte général .....................................................................................................................8
1. Qu’est-ce qu’une mycose ? ..................................................................................................... 8
2. Aspergillus spp. ...................................................................................................................... 9
2.1. Epidémiologie................................................................................................................. 9
2.2. Pathologies....................................................................................................................11
2.3. Diagnostic biologique ....................................................................................................13
2.4. Traitement .....................................................................................................................15
3. Pneumocystis jirovecii ...........................................................................................................15
3.1. Epidémiologie................................................................................................................15
3.2. Pathologies....................................................................................................................17
3.3. Diagnostic biologique ....................................................................................................19
3.4. Traitement .....................................................................................................................21
4. Classification des maladies fongiques invasives .....................................................................22
5. Real time Q-PCR...................................................................................................................24
Objectifs et stratégie .............................................................................................................28
Matériel et méthodes ............................................................................................................29
Résultats et discussion ..........................................................................................................44
Conclusion générale .............................................................................................................55
Lexique ................................................................................................................................57
Liste des figures ...................................................................................................................58
Liste des tableaux .................................................................................................................60
Bibliographie ........................................................................................................................61
Annexes ...............................................................................................................................64Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=105769 Détection moléculaire d’Aspergillus spp. et de Pneumocystis jirovecii à l’aide de l’ELITe InGenius [TFE / Mémoire] / Bérénice Veraghen, Auteur ; Nicolas Kesteman, Directeur de la recherche . - Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale, 2022.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur
Langues : Français (fre)
Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Aspergillus spp. et Pneumocystis jirovecii sont deux champignons capables de causer de graves pathologies chez l’homme. De la pneumopathie à l’infection invasive, ces agents pathogènes sont insidieux, difficilement détectables et le diagnostic est souvent très complexe. Afin de gagner le plus de temps possible et d’améliorer les chances de survie du patient face à ces infections souvent fatales, il est impératif d’améliorer la vitesse et la qualité des diagnostics. Pour cela, un outil s’impose facilement : la biologie moléculaire. Dans le cadre de ce travail, deux kits de QPCR de la société ELITech (Aspergillus et Pneumocystis) sont vérifiés intégralement : exactitude, reproductibilité, sensibilité, spécificité ainsi que la linéarité (pour le kit Aspergillus) sont étudiées. Cette vérification est réalisée grâce à de nombreux échantillons provenant du CHU UCL Mont-Godinne et d’ailleurs. Ces
échantillons sont principalement des lavages broncho-alvéolaires. L’apport de ces kits au diagnostic est également étudié. La vérification s’effectue sur l’automate ELITe InGenius de la société ELITech et les échantillons y sont traités de la manière standard. Des calibrations et des contrôles sont
également réalisés à l’aide de l’automate. Les résultats ont permis de révéler que le kit Pneumocystis possède une grande exactitude, reproductibilité et spécificité mais une sensibilité moins bonne. Le kit Aspergillus possède une exactitude moyenne, une mauvaise spécificité, une très bonne linéarité, sensibilité et une bonne reproductibilité à haute concentration de matériel génétique.
Concernant le kit Aspergillus, il s’est avéré qu’il existe une possibilité de discriminer les différentes classifications de pathologies fongiques invasives sur base des résultats donnés par l’InGenius. En effet, il est possible de différencier les aspergilloses prouvées, probables, possibles et les cas négatifs ou les cas de portage sain. Il est indéniable que ces outils de biologie moléculaire représentent un grand atout pour aider au diagnostic des maladies fongiques et que leur utilisation devrait être de plus en plus répandue durant les années à venir. Leur utilisation ne peut être qu’encouragée.Note de contenu : Table des matières
Présentation de l’établissement ...............................................................................................5
Introduction générale ..............................................................................................................6
Contexte général .....................................................................................................................8
1. Qu’est-ce qu’une mycose ? ..................................................................................................... 8
2. Aspergillus spp. ...................................................................................................................... 9
2.1. Epidémiologie................................................................................................................. 9
2.2. Pathologies....................................................................................................................11
2.3. Diagnostic biologique ....................................................................................................13
2.4. Traitement .....................................................................................................................15
3. Pneumocystis jirovecii ...........................................................................................................15
3.1. Epidémiologie................................................................................................................15
3.2. Pathologies....................................................................................................................17
3.3. Diagnostic biologique ....................................................................................................19
3.4. Traitement .....................................................................................................................21
4. Classification des maladies fongiques invasives .....................................................................22
5. Real time Q-PCR...................................................................................................................24
Objectifs et stratégie .............................................................................................................28
Matériel et méthodes ............................................................................................................29
Résultats et discussion ..........................................................................................................44
Conclusion générale .............................................................................................................55
Lexique ................................................................................................................................57
Liste des figures ...................................................................................................................58
Liste des tableaux .................................................................................................................60
Bibliographie ........................................................................................................................61
Annexes ...............................................................................................................................64Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=105769 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Détection de mutations "hotspot" du gene PIK3CA dans des échantillons tumoraux fixés au formol et inclus en paraffine / FINET Laure
Titre : Détection de mutations "hotspot" du gene PIK3CA dans des échantillons tumoraux fixés au formol et inclus en paraffine Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : FINET Laure, Auteur Année de publication : 2011 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : CANCER , ONCOLOGIE , BIOLOGIE MOLECULAIRE , ANALYSE D'ECHANTILLONS TUMORAUX , MUTATIONS , GENE PIK3CA , PCR , PYROSEQUENCAGE , ANALYSE SNA et PSHOT Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64894 Détection de mutations "hotspot" du gene PIK3CA dans des échantillons tumoraux fixés au formol et inclus en paraffine [TFE / Mémoire] / FINET Laure, Auteur . - 2011.
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Langues : Français (fre)
Mots-clés : CANCER , ONCOLOGIE , BIOLOGIE MOLECULAIRE , ANALYSE D'ECHANTILLONS TUMORAUX , MUTATIONS , GENE PIK3CA , PCR , PYROSEQUENCAGE , ANALYSE SNA et PSHOT Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64894 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Détection par 'High Resolution Melting' et identification par pyroséquençage ou analyse de fragments de mutations du gène EGFR / PUCCELA Dora
Titre : Détection par 'High Resolution Melting' et identification par pyroséquençage ou analyse de fragments de mutations du gène EGFR Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : PUCCELA Dora, Année de publication : 2010 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Mots-clés : BIOLOGIE MOLECULAIRE ADN MUTATIONS GENE EGFR PCR HRM SEQUENCAGE EXON PYROSEQUENCAGE Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64741 Détection par 'High Resolution Melting' et identification par pyroséquençage ou analyse de fragments de mutations du gène EGFR [TFE / Mémoire] / PUCCELA Dora, . - 2010.
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Mots-clés : BIOLOGIE MOLECULAIRE ADN MUTATIONS GENE EGFR PCR HRM SEQUENCAGE EXON PYROSEQUENCAGE Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64741 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Détection de pathogènes dans les selles: jusqu'où l'automatisation est-elle possible ? / Pierre-Yves NOERENS
Titre : Détection de pathogènes dans les selles: jusqu'où l'automatisation est-elle possible ? Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Pierre-Yves NOERENS, Auteur Année de publication : 2016 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale CNDG Gosselies selle automatisation campylobacter parasitologie virologie rotavirus adénovirus identification chimiluminescence ETI-MAX ELISA Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Présentation générale du lieu de stage : ................................................................................................... 1
Présentation du laboratoire : .................................................................................................................... 2
Introduction ............................................................................................................................................. 3
Partie théorique........................................................................................................................................ 5
Chapitre I : Description des agents pathogènes traités ............................................................................ 7
1.1. Bactériologie : Le Campylobacter : ........................................................................................ 7
1.2. Parasitologie : .......................................................................................................................... 8
1.2.1. Le Cryptosporidium parvum : ......................................................................................... 8
1.2.2. L’Entamoeba histolytica : ................................................................................................ 9
1.2.3. Le Giardia lamblia ou Giardia intestinalis : ................................................................. 10
1.2.4. Le Blastocystis hominis : ............................................................................................... 11
1.3. Virologie : Rotavirus et adénovirus : ..................................................................................... 12
1.3.1. Introduction : ................................................................................................................. 12
1.3.2. Généralités sur les virus : .............................................................................................. 12
1.3.3. Rotavirus : ..................................................................................................................... 13
1.3.3.1. Généralités et structure : ........................................................................................ 13
1.3.3.2. Mode de transmission : .......................................................................................... 14
1.3.3.3. Cycle viral : ........................................................................................................... 14
1.3.3.4. Epidémiologie, tropisme et lieu d’infection : ........................................................ 15
1.3.3.5. Symptômes et risque de l’infection : ..................................................................... 16
1.3.3.6. Prévention de l’infection : ..................................................................................... 16
1.3.3.7. Traitement : ........................................................................................................... 16
1.3.4. Adénovirus humain (HAdVs) : ..................................................................................... 17
1.3.4.1. Généralités et structure : ........................................................................................ 17
1.3.4.2. Mode de transmission : .......................................................................................... 18
1.3.4.3. Cycle viral : ........................................................................................................... 19
1.3.4.4. Epidémiologie, tropisme et lieu d’infection : ........................................................ 20
1.3.4.5. Symptômes et risque de l’infection : ..................................................................... 20
1.3.4.6. Prévention de l’infection : ..................................................................................... 20
1.3.4.7. Traitement : ........................................................................................................... 20
Partie pratique........................................................................................................................................ 21
Chapitre II : Matériel et méthode .......................................................................................................... 23
2.1. Aperçu des méthodes d’identification en routine à la CNDG : ............................................. 23
2.2. Description des méthodes de routine : ................................................................................... 23
2.2.1. Méthode d’identification du Campylobacter : ............................................................... 23
2.2.2. Méthode d’identification des rotavirus et adénovirus : ................................................. 24
2.2.3. Méthode d’identification des parasites : ........................................................................ 25
2.3. Description des nouvelles méthodes évaluées : ..................................................................... 26
2.3.1. Le Liaison® Analyzer : ................................................................................................. 27
2.3.1.1. Composition du Liaison® : ................................................................................... 27
2.3.1.2. Matériel pour une analyse sur Liaison® : .............................................................. 28
2.3.1.3. La chimiluminescence : ......................................................................................... 29
2.3.1.4. Principe de fonctionnement du Liaison® : ............................................................ 31
2.3.1.5. Mode opératoire : .................................................................................................. 31
2.3.2. L’ETI-Max 3000® : ...................................................................................................... 34
2.3.2.1. Composition de l’ETI-Max : ................................................................................. 34
2.3.2.2. Matériel pour une analyse sur ETI-Max : .............................................................. 35
2.3.2.3. L’ELISA : .............................................................................................................. 35
2.3.2.4. Principe de fonctionnement de l’ETI-Max : .......................................................... 36
2.3.2.5. Mode opératoire : .................................................................................................. 36
Chapitre III : Résultats et interprétation ................................................................................................ 39
3.1. But de cette étude : ................................................................................................................ 39
3.2. L’échantillonnage : ................................................................................................................ 39
3.3. Analyse des populations et des échantillons : ....................................................................... 40
3.3.1. Pour le Campylobacter : ................................................................................................ 40
3.3.2. Pour les rotavirus et adénovirus : .................................................................................. 41
3.3.3. Pour les parasites : ......................................................................................................... 42
3.4. Rappel et définitions : ............................................................................................................ 43
3.4.1. La sensibilité d’un test : ................................................................................................. 43
3.4.2. La spécificité d’un test : ................................................................................................ 43
3.4.3. La valeur prédictive positive ou VPP : .......................................................................... 43
3.4.4. La valeur prédictive négative ou VPN : ........................................................................ 43
3.5. Résultats et interprétations : .................................................................................................. 44
3.5.1. Pour le Campylobacter : ................................................................................................ 44
3.5.2. Pour le rotavirus et l’adénovirus : ................................................................................. 47
3.5.3. Pour les parasites : ......................................................................................................... 50
3.5.3.1. Blastocystis hominis : ............................................................................................ 50
3.5.3.2. Entamoeba : ........................................................................................................... 53
3.5.3.3. Giardia : ................................................................................................................ 55
3.5.3.4. Cryptosporidium parvum : .................................................................................... 56
3.6. Discussion : ........................................................................................................................... 58
Conclusion ..............................................................................................................................61Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65683 Détection de pathogènes dans les selles: jusqu'où l'automatisation est-elle possible ? [TFE / Mémoire] / Pierre-Yves NOERENS, Auteur . - 2016.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : biologie médicale CNDG Gosselies selle automatisation campylobacter parasitologie virologie rotavirus adénovirus identification chimiluminescence ETI-MAX ELISA Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Présentation générale du lieu de stage : ................................................................................................... 1
Présentation du laboratoire : .................................................................................................................... 2
Introduction ............................................................................................................................................. 3
Partie théorique........................................................................................................................................ 5
Chapitre I : Description des agents pathogènes traités ............................................................................ 7
1.1. Bactériologie : Le Campylobacter : ........................................................................................ 7
1.2. Parasitologie : .......................................................................................................................... 8
1.2.1. Le Cryptosporidium parvum : ......................................................................................... 8
1.2.2. L’Entamoeba histolytica : ................................................................................................ 9
1.2.3. Le Giardia lamblia ou Giardia intestinalis : ................................................................. 10
1.2.4. Le Blastocystis hominis : ............................................................................................... 11
1.3. Virologie : Rotavirus et adénovirus : ..................................................................................... 12
1.3.1. Introduction : ................................................................................................................. 12
1.3.2. Généralités sur les virus : .............................................................................................. 12
1.3.3. Rotavirus : ..................................................................................................................... 13
1.3.3.1. Généralités et structure : ........................................................................................ 13
1.3.3.2. Mode de transmission : .......................................................................................... 14
1.3.3.3. Cycle viral : ........................................................................................................... 14
1.3.3.4. Epidémiologie, tropisme et lieu d’infection : ........................................................ 15
1.3.3.5. Symptômes et risque de l’infection : ..................................................................... 16
1.3.3.6. Prévention de l’infection : ..................................................................................... 16
1.3.3.7. Traitement : ........................................................................................................... 16
1.3.4. Adénovirus humain (HAdVs) : ..................................................................................... 17
1.3.4.1. Généralités et structure : ........................................................................................ 17
1.3.4.2. Mode de transmission : .......................................................................................... 18
1.3.4.3. Cycle viral : ........................................................................................................... 19
1.3.4.4. Epidémiologie, tropisme et lieu d’infection : ........................................................ 20
1.3.4.5. Symptômes et risque de l’infection : ..................................................................... 20
1.3.4.6. Prévention de l’infection : ..................................................................................... 20
1.3.4.7. Traitement : ........................................................................................................... 20
Partie pratique........................................................................................................................................ 21
Chapitre II : Matériel et méthode .......................................................................................................... 23
2.1. Aperçu des méthodes d’identification en routine à la CNDG : ............................................. 23
2.2. Description des méthodes de routine : ................................................................................... 23
2.2.1. Méthode d’identification du Campylobacter : ............................................................... 23
2.2.2. Méthode d’identification des rotavirus et adénovirus : ................................................. 24
2.2.3. Méthode d’identification des parasites : ........................................................................ 25
2.3. Description des nouvelles méthodes évaluées : ..................................................................... 26
2.3.1. Le Liaison® Analyzer : ................................................................................................. 27
2.3.1.1. Composition du Liaison® : ................................................................................... 27
2.3.1.2. Matériel pour une analyse sur Liaison® : .............................................................. 28
2.3.1.3. La chimiluminescence : ......................................................................................... 29
2.3.1.4. Principe de fonctionnement du Liaison® : ............................................................ 31
2.3.1.5. Mode opératoire : .................................................................................................. 31
2.3.2. L’ETI-Max 3000® : ...................................................................................................... 34
2.3.2.1. Composition de l’ETI-Max : ................................................................................. 34
2.3.2.2. Matériel pour une analyse sur ETI-Max : .............................................................. 35
2.3.2.3. L’ELISA : .............................................................................................................. 35
2.3.2.4. Principe de fonctionnement de l’ETI-Max : .......................................................... 36
2.3.2.5. Mode opératoire : .................................................................................................. 36
Chapitre III : Résultats et interprétation ................................................................................................ 39
3.1. But de cette étude : ................................................................................................................ 39
3.2. L’échantillonnage : ................................................................................................................ 39
3.3. Analyse des populations et des échantillons : ....................................................................... 40
3.3.1. Pour le Campylobacter : ................................................................................................ 40
3.3.2. Pour les rotavirus et adénovirus : .................................................................................. 41
3.3.3. Pour les parasites : ......................................................................................................... 42
3.4. Rappel et définitions : ............................................................................................................ 43
3.4.1. La sensibilité d’un test : ................................................................................................. 43
3.4.2. La spécificité d’un test : ................................................................................................ 43
3.4.3. La valeur prédictive positive ou VPP : .......................................................................... 43
3.4.4. La valeur prédictive négative ou VPN : ........................................................................ 43
3.5. Résultats et interprétations : .................................................................................................. 44
3.5.1. Pour le Campylobacter : ................................................................................................ 44
3.5.2. Pour le rotavirus et l’adénovirus : ................................................................................. 47
3.5.3. Pour les parasites : ......................................................................................................... 50
3.5.3.1. Blastocystis hominis : ............................................................................................ 50
3.5.3.2. Entamoeba : ........................................................................................................... 53
3.5.3.3. Giardia : ................................................................................................................ 55
3.5.3.4. Cryptosporidium parvum : .................................................................................... 56
3.6. Discussion : ........................................................................................................................... 58
Conclusion ..............................................................................................................................61Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65683 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Détection de patients porteurs de carbapénèmases : Evaluation multicentrique d’un kit commercial de PCR en temps réel / Enes GHILANI
PermalinkDétection de la polyarthrite rhumatoïde : facteur rhumatoïde et anti-CPP / STEVE HENVART
PermalinkDétection se Clostridium difficile dans les selles : évaluation du kit TECHLAB.DIFF Quick Check Complete versus différents schémas de cultures / BOTTEQUIN Jean-François
PermalinkDétectionde triploïdes par la technique d'hybridation in situ en fluorescence sur des produits de fausse-couche présentant un profil micro-array normal / Laura ADAMS
PermalinkDétermination de l'activité bactéricide et fongicide des désinfectants utilisés sur des souches de réérence et environnementales / TAXHET Sophie
PermalinkDétermination de la bioactivité du lysozyme immobilisé dans un assemblage en couche par couche par couche à travers une complexation protéine-polyélectrolyte / Timothy BUCHET
PermalinkDétermination de la diversité virale du Beet necrotic yellow vein virus et du potentiel infectieux des sols dans la région de Pithiviers via un essai parcelle et un bioessai / Gautier NYSSENS
PermalinkDétermination de l’impact du taux d’anticorps anti-SARS-CoV-2 sur les effets indésirables post- vaccinations et la standardisation du dosage sur le Cobas 8000, Atellica et ETI-MAX3000 / Sara Esen
PermalinkDétermination du seuil de sensibilité du test de détection des génomes viraux du HIV, HCV et HBV réalisé sur un pool de 24 échantillons de donneurs de sang / MARIQUE Kevin
PermalinkDETERMINATION DE LA" ZONE GRISE" D’UN TEST ROCHE ANTI- HCV II AU LABORATOIRE UNIVERSITAIRE / Sorelle YANOU KEMAMEN
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