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COMPARAISON DE METHODES DE DOSAGES SEROLOGIQUES (ELISA, FIXATION DU COMPLEMENT, TECHNIQUES AUTOMATISEES) POUR LA DETECTION DE LA ROUGEOLE, DES OREILLONS ET DE CHLAMYDIA PNEUMONIAE / MARIE VAN DEN BERGHE
Titre : COMPARAISON DE METHODES DE DOSAGES SEROLOGIQUES (ELISA, FIXATION DU COMPLEMENT, TECHNIQUES AUTOMATISEES) POUR LA DETECTION DE LA ROUGEOLE, DES OREILLONS ET DE CHLAMYDIA PNEUMONIAE Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : MARIE VAN DEN BERGHE, Auteur ; Alexandre Athanasopoulos, Directeur de la recherche ; Vincenzo Farniella, Directeur de la recherche Année de publication : 2015 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale hôpital marie Curie Dosages sérologiques rougeole oreillons Chlamydia pneumoniae hôpital Marie curie Immunologie Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Trois méthodes d’analyses (ELISA ; CLIA ; fixation du complément) ont été testées pour la détection d’anticorps anti-virus de la rougeole et des oreillons.
La technique de fixation du complément est une méthode manuelle tandis que les techniques CLIA et ELISA sont des techniques automatisées respectivement sur l’automate Liaison XL et sur l’ETI-Max 3000.
Quarante-trois échantillons provenant de la routine du laboratoire ont été testés.
Les résultats pour ces différents échantillons étaient sensiblement identiques avec les méthodes automatisées mais nettement différents des résultats obtenus à l’aide de la technique de fixation du complément, technique peu sensible, dépassée, ayant pour but de diagnostiquer une infection active.
Les kits de la firme DiaSorin seront utilisés pour la détection des anticorps anti-virus de la rougeole et des oreillons.
Ces kits offrant une plus grande facilité d’utilisation et la possibilité d’une automatisation complète.
De plus, un plus faible volume de sérum est nécessaire pour réaliser les analyses avec cette technique.
Les kits de deux firmes différentes (Savyon ; Médac) ont été comparés pour le diagnostic sérologique d’infection à Chlamydia pneumoniae.
Bien qu’une très nette différence au niveau des « titres » d’anticorps IgA et IgG a été constatée, la classification des résultats (infection active, négatif, …) est relativement semblable dans les cas plus évidents.
Les kits de la firme Médac offrent néanmoins plus de souplesse et de facilité d’interprétation.
C’est pourquoi, ce sont les kits de cette firme qui seront dorénavant utilisés au laboratoire de l’Hopital Civil Marie Curie.Note de contenu : Table des matières
1. Présentation du lieu de stage ______________________________________________ 7
2. Introduction générale ____________________________________________________ 8
Partie théorique ____________________________________________________________ 9
1. Notions d’immunologie __________________________________________________ 9
1.1 Système du complément ______________________________________________________ 9
2. Virus ________________________________________________________________ 11
2.1 Oreillons __________________________________________________________________ 11
2.1.1 Description ______________________________________________________________________ 11
2.1.2 Structure : _______________________________________________________________________ 12
2.1.3 Cycle de vie du virus : ______________________________________________________________ 13
2.1.4 Complications chez la femme enceinte ________________________________________________ 14
2.1.5 Diagnostic : ______________________________________________________________________ 15
Direct ________________________________________________________________________ 15
Indirect _______________________________________________________________________ 15
2.1.6 Traitement et prévention ___________________________________________________________ 16
Curatif _______________________________________________________________________ 16
Préventif (Vaccination) __________________________________________________________ 16
2.1.7 Surveillance ______________________________________________________________________ 17
2.1.8 Incidence ________________________________________________________________________ 17
2.2 Rougeole __________________________________________________________________ 18
2.2.1 Description ______________________________________________________________________ 18
2.2.2 Structure ________________________________________________________________________ 19
2.2.3 Cycle de vie du virus _______________________________________________________________ 20
2.2.4 Complication chez la femme enceinte _________________________________________________ 21
2.2.5 Méthodes de diagnostic : ___________________________________________________________ 21
Diagnostic direct _______________________________________________________________ 21
Diagnostic indirect ______________________________________________________________ 22
2.2.6 Traitement et prévention ___________________________________________________________ 23
Curatif _______________________________________________________________________ 23
Préventif _____________________________________________________________________ 23
2.2.7 Incidence ________________________________________________________________________ 24
3. Bactéries _____________________________________________________________ 25
3.1 Chlamydia _________________________________________________________________ 25
3.1.1 Structure générale ________________________________________________________________ 25
3.2 Chlamydia pneumoniae ______________________________________________________________ 26
3.2.1 Description _______________________________________________________________ 26
3.2.2 Signes cliniques : __________________________________________________________ 27
3.2.3 Cycle de vie _______________________________________________________________ 27
3.2.4 Méthodes de détection _____________________________________________________ 28
4. Objectifs et stratégie ___________________________________________________ 30
4.1 Oreillons et rougeole ________________________________________________________ 30
4.2 Chlamydia pneumoniae ______________________________________________________ 30
5. Principes _____________________________________________________________ 31
5.1 Liaison XL : _______________________________________________________________ 31
Description du système : _________________________________________________________ 32
5.2 Etimax ____________________________________________________________________ 32
Partie pratique ____________________________________________________________ 33
1. Oreillons _____________________________________________________________ 33
1.1 Matériel et méthodes _______________________________________________________ 33
1.1.1 Fixation du complément : ___________________________________________________________ 33
1.1.2 Technique CLIA sur Liaison XL _______________________________________________________ 35
Principe ______________________________________________________________________ 35
Matériel ______________________________________________________________________ 35
Protocole _____________________________________________________________________ 35
Interprétation _________________________________________________________________ 36
1.1.3 Technique ELISA sur ETI-Max ________________________________________________________ 36
Principe ______________________________________________________________________ 36
Matériel ______________________________________________________________________ 36
Protocole _____________________________________________________________________ 36
Interprétation des résultats ______________________________________________________ 36
1.2 Résultats et discussion _______________________________________________________ 37
2. Rougeole _____________________________________________________________ 40
2.1 Matériel et Méthodes _______________________________________________________ 40
2.1.1 Fixation du complément ____________________________________________________________ 40
2.1.2 Technique CLIA sue Liaison XL _______________________________________________________ 40
Principe ______________________________________________________________________ 40
Matériel ______________________________________________________________________ 41
Protocole _____________________________________________________________________ 41
Interprétation _________________________________________________________________ 41
2.1.3 Technique ELISA sur ETI-Max 3000 ___________________________________________________ 41
Principe ______________________________________________________________________ 41
Matériel ______________________________________________________________________ 41
Protocole _____________________________________________________________________ 41
Interprétation des résultats ______________________________________________________ 42
2.2 Résultats et discussion : ______________________________________________________ 42
3. Chlamydia pneumoniae _________________________________________________ 45
3.1 Matériel et méthode ________________________________________________________ 45
3.1.1 Kit Savyon _______________________________________________________________________ 45
Chlamydia pneumoniae IgA ______________________________________________________ 45
Chlamydia pneumoniae IgG ______________________________________________________ 46
3.1.2 Interprétation globale des résultats kits Savyon _________________________________________ 46
3.1.3 Kit Médac _______________________________________________________________________ 47
Chlamydia pneumonieae IgG-ELISA plus ____________________________________________ 47
Chlamydien IgA-rELISA __________________________________________________________ 47
Chlamydien IgG-rELISA __________________________________________________________ 47
3.1.4 Appareillage : ____________________________________________________________________ 48
Méthode globale : ______________________________________________________________ 48
3.1.5 Interprétation globale des résultats kits Médac _________________________________________ 48
3.2 Résultats et discussion _______________________________________________________ 50
Conclusions générales (et perspectives) ________________________________________ 52
Lexique TFE _______________________________________________________________ 53
Bibliographie : _____________________________________________________________ 55Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65560 COMPARAISON DE METHODES DE DOSAGES SEROLOGIQUES (ELISA, FIXATION DU COMPLEMENT, TECHNIQUES AUTOMATISEES) POUR LA DETECTION DE LA ROUGEOLE, DES OREILLONS ET DE CHLAMYDIA PNEUMONIAE [TFE / Mémoire] / MARIE VAN DEN BERGHE, Auteur ; Alexandre Athanasopoulos, Directeur de la recherche ; Vincenzo Farniella, Directeur de la recherche . - 2015.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : biologie médicale hôpital marie Curie Dosages sérologiques rougeole oreillons Chlamydia pneumoniae hôpital Marie curie Immunologie Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Trois méthodes d’analyses (ELISA ; CLIA ; fixation du complément) ont été testées pour la détection d’anticorps anti-virus de la rougeole et des oreillons.
La technique de fixation du complément est une méthode manuelle tandis que les techniques CLIA et ELISA sont des techniques automatisées respectivement sur l’automate Liaison XL et sur l’ETI-Max 3000.
Quarante-trois échantillons provenant de la routine du laboratoire ont été testés.
Les résultats pour ces différents échantillons étaient sensiblement identiques avec les méthodes automatisées mais nettement différents des résultats obtenus à l’aide de la technique de fixation du complément, technique peu sensible, dépassée, ayant pour but de diagnostiquer une infection active.
Les kits de la firme DiaSorin seront utilisés pour la détection des anticorps anti-virus de la rougeole et des oreillons.
Ces kits offrant une plus grande facilité d’utilisation et la possibilité d’une automatisation complète.
De plus, un plus faible volume de sérum est nécessaire pour réaliser les analyses avec cette technique.
Les kits de deux firmes différentes (Savyon ; Médac) ont été comparés pour le diagnostic sérologique d’infection à Chlamydia pneumoniae.
Bien qu’une très nette différence au niveau des « titres » d’anticorps IgA et IgG a été constatée, la classification des résultats (infection active, négatif, …) est relativement semblable dans les cas plus évidents.
Les kits de la firme Médac offrent néanmoins plus de souplesse et de facilité d’interprétation.
C’est pourquoi, ce sont les kits de cette firme qui seront dorénavant utilisés au laboratoire de l’Hopital Civil Marie Curie.Note de contenu : Table des matières
1. Présentation du lieu de stage ______________________________________________ 7
2. Introduction générale ____________________________________________________ 8
Partie théorique ____________________________________________________________ 9
1. Notions d’immunologie __________________________________________________ 9
1.1 Système du complément ______________________________________________________ 9
2. Virus ________________________________________________________________ 11
2.1 Oreillons __________________________________________________________________ 11
2.1.1 Description ______________________________________________________________________ 11
2.1.2 Structure : _______________________________________________________________________ 12
2.1.3 Cycle de vie du virus : ______________________________________________________________ 13
2.1.4 Complications chez la femme enceinte ________________________________________________ 14
2.1.5 Diagnostic : ______________________________________________________________________ 15
Direct ________________________________________________________________________ 15
Indirect _______________________________________________________________________ 15
2.1.6 Traitement et prévention ___________________________________________________________ 16
Curatif _______________________________________________________________________ 16
Préventif (Vaccination) __________________________________________________________ 16
2.1.7 Surveillance ______________________________________________________________________ 17
2.1.8 Incidence ________________________________________________________________________ 17
2.2 Rougeole __________________________________________________________________ 18
2.2.1 Description ______________________________________________________________________ 18
2.2.2 Structure ________________________________________________________________________ 19
2.2.3 Cycle de vie du virus _______________________________________________________________ 20
2.2.4 Complication chez la femme enceinte _________________________________________________ 21
2.2.5 Méthodes de diagnostic : ___________________________________________________________ 21
Diagnostic direct _______________________________________________________________ 21
Diagnostic indirect ______________________________________________________________ 22
2.2.6 Traitement et prévention ___________________________________________________________ 23
Curatif _______________________________________________________________________ 23
Préventif _____________________________________________________________________ 23
2.2.7 Incidence ________________________________________________________________________ 24
3. Bactéries _____________________________________________________________ 25
3.1 Chlamydia _________________________________________________________________ 25
3.1.1 Structure générale ________________________________________________________________ 25
3.2 Chlamydia pneumoniae ______________________________________________________________ 26
3.2.1 Description _______________________________________________________________ 26
3.2.2 Signes cliniques : __________________________________________________________ 27
3.2.3 Cycle de vie _______________________________________________________________ 27
3.2.4 Méthodes de détection _____________________________________________________ 28
4. Objectifs et stratégie ___________________________________________________ 30
4.1 Oreillons et rougeole ________________________________________________________ 30
4.2 Chlamydia pneumoniae ______________________________________________________ 30
5. Principes _____________________________________________________________ 31
5.1 Liaison XL : _______________________________________________________________ 31
Description du système : _________________________________________________________ 32
5.2 Etimax ____________________________________________________________________ 32
Partie pratique ____________________________________________________________ 33
1. Oreillons _____________________________________________________________ 33
1.1 Matériel et méthodes _______________________________________________________ 33
1.1.1 Fixation du complément : ___________________________________________________________ 33
1.1.2 Technique CLIA sur Liaison XL _______________________________________________________ 35
Principe ______________________________________________________________________ 35
Matériel ______________________________________________________________________ 35
Protocole _____________________________________________________________________ 35
Interprétation _________________________________________________________________ 36
1.1.3 Technique ELISA sur ETI-Max ________________________________________________________ 36
Principe ______________________________________________________________________ 36
Matériel ______________________________________________________________________ 36
Protocole _____________________________________________________________________ 36
Interprétation des résultats ______________________________________________________ 36
1.2 Résultats et discussion _______________________________________________________ 37
2. Rougeole _____________________________________________________________ 40
2.1 Matériel et Méthodes _______________________________________________________ 40
2.1.1 Fixation du complément ____________________________________________________________ 40
2.1.2 Technique CLIA sue Liaison XL _______________________________________________________ 40
Principe ______________________________________________________________________ 40
Matériel ______________________________________________________________________ 41
Protocole _____________________________________________________________________ 41
Interprétation _________________________________________________________________ 41
2.1.3 Technique ELISA sur ETI-Max 3000 ___________________________________________________ 41
Principe ______________________________________________________________________ 41
Matériel ______________________________________________________________________ 41
Protocole _____________________________________________________________________ 41
Interprétation des résultats ______________________________________________________ 42
2.2 Résultats et discussion : ______________________________________________________ 42
3. Chlamydia pneumoniae _________________________________________________ 45
3.1 Matériel et méthode ________________________________________________________ 45
3.1.1 Kit Savyon _______________________________________________________________________ 45
Chlamydia pneumoniae IgA ______________________________________________________ 45
Chlamydia pneumoniae IgG ______________________________________________________ 46
3.1.2 Interprétation globale des résultats kits Savyon _________________________________________ 46
3.1.3 Kit Médac _______________________________________________________________________ 47
Chlamydia pneumonieae IgG-ELISA plus ____________________________________________ 47
Chlamydien IgA-rELISA __________________________________________________________ 47
Chlamydien IgG-rELISA __________________________________________________________ 47
3.1.4 Appareillage : ____________________________________________________________________ 48
Méthode globale : ______________________________________________________________ 48
3.1.5 Interprétation globale des résultats kits Médac _________________________________________ 48
3.2 Résultats et discussion _______________________________________________________ 50
Conclusions générales (et perspectives) ________________________________________ 52
Lexique TFE _______________________________________________________________ 53
Bibliographie : _____________________________________________________________ 55Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65560 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Comparaison de méthodes de mise en évidence de l'hémoglobine foetale / Thomas VANHOREBEEK
Titre : Comparaison de méthodes de mise en évidence de l'hémoglobine foetale Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Thomas VANHOREBEEK, Auteur Année de publication : 2012 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : BIOLOGIE MEDICALE , HEMATOLOGIE , DEPISTAGE SYNDROME HEMOLYTIQUE DU NOUVEAU-NE , HEMOGLOBINE FOETALE / MISE EN EVIDENCE , COMPARAISON DE METHODES / CYTOMETRIE EN FLUX ET TECHNIQUE CYTOLOGIQUE DE REFERENCE , VALIDATION STATISTIQUE Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65121 Comparaison de méthodes de mise en évidence de l'hémoglobine foetale [TFE / Mémoire] / Thomas VANHOREBEEK, Auteur . - 2012.
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Langues : Français (fre)Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Comparaison de méthodes pour la détection des anticorps IgM et IgG dirigés contre les borrelia dans le sérum et le LCR / Gaëlle Molle
Titre : Comparaison de méthodes pour la détection des anticorps IgM et IgG dirigés contre les borrelia dans le sérum et le LCR Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Gaëlle Molle, Auteur Année de publication : 2016 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale Hôpital Civil Marie Curie bactérie anticorps IgG IgM borrelia tique immunologie chimiluminescence ELISA western blot liaison XL ETI-MAX gemini Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Présentation du lieu de stage ------------------------------------------------------------------------------- 11
Introduction générale ----------------------------------------------------------------------------------------- 13
Partie théorique ------------------------------------------------------------------------------------------------ 15
1. Introduction ----------------------------------------------------------------------------------------------- 15
2. La bactérie à l’origine de cette pathologie. --------------------------------------------------------- 15
3. L’hôte vecteur de la bactérie : la tique -------------------------------------------------------------- 16
3.1. La morphologie ------------------------------------------------------------------------------------- 17
3.2. La fixation -------------------------------------------------------------------------------------------- 17
3.3. Le milieu de vie ------------------------------------------------------------------------------------- 18
3.4. La nutrition ------------------------------------------------------------------------------------------ 18
3.5. Le cycle de vie --------------------------------------------------------------------------------------- 18
3.6. Les relations entre tiques, Borrelia et l’hôte ------------------------------------------------- 19
4. La pathologie ---------------------------------------------------------------------------------------------- 21
4.1. Généralités ------------------------------------------------------------------------------------------- 21
4.2. Le diagnostic ----------------------------------------------------------------------------------------- 23
4.3. Le(s) traitement(s) --------------------------------------------------------------------------------- 24
4.4. Pronostic --------------------------------------------------------------------------------------------- 24
4.5. Le risque d’infection ------------------------------------------------------------------------------- 25
4.6. Physiologie des anticorps ------------------------------------------------------------------------- 25
4.7. L’incidence de la pathologie et population concernée ------------------------------------ 26
5. Le dosage et les techniques utilisées ---------------------------------------------------------------- 27
5.1. Les différentes matrices de dosage ------------------------------------------------------------ 27
5.2. Le principe de base du dosage : une réaction antigène - anticorps -------------------- 27
5.3. Principe du dosage utilisant la chimiluminescence ----------------------------------------- 28
5.4. Principe de l’ELISA (Enzyme Linked Immunosorbant Assay) (figure n°10) ------------ 29
5.5. Principe du test de confirmation : le Western blot ----------------------------------------- 30
6. Objectifs et stratégies ----------------------------------------------------------------------------------- 31
Partie pratique -------------------------------------------------------------------------------------------------- 33
1. Le LIAISON XL ---------------------------------------------------------------------------------------------- 33
1.1. Présentation de l’automate ------------------------------------------------------------------------- 33
1.2. Matériel ------------------------------------------------------------------------------------------------- 35
1.3. Composition des kits --------------------------------------------------------------------------------- 35
1.4. Conservation des kits --------------------------------------------------------------------------------- 36
1.5. Méthode ------------------------------------------------------------------------------------------------ 36
1.6. Calibration et contrôles ------------------------------------------------------------------------------ 36
1.7. Interprétation des résultats ------------------------------------------------------------------------- 37
2. L’ETI-MAX -------------------------------------------------------------------------------------------------- 38
2.1. Présentation de l’automate ------------------------------------------------------------------------- 38
2.2. Matériels ------------------------------------------------------------------------------------------------ 38
2.3. Réactifs -------------------------------------------------------------------------------------------------- 39
2.4. Composition des kits --------------------------------------------------------------------------------- 39
2.5. Conservation des kits --------------------------------------------------------------------------------- 39
2.6. Méthode ------------------------------------------------------------------------------------------------ 39
2.7. Calibration et contrôles ------------------------------------------------------------------------------ 39
2.8. Interprétation des résultats ------------------------------------------------------------------------- 40
3. Le Gemini --------------------------------------------------------------------------------------------------- 41
3.1. Présentation de l’automate ------------------------------------------------------------------------- 41
3.2. Matériels ------------------------------------------------------------------------------------------------ 41
3.3. Composition des kits --------------------------------------------------------------------------------- 41
3.4. Méthode, calibration et contrôles ----------------------------------------------------------------- 41
6
3.5. Interprétation des résultats ------------------------------------------------------------------------- 41
4. Tableau comparatif ----------------------------------------------------------------------------------- 43
5. Le Western blot ---------------------------------------------------------------------------------------- 45
6. Les échantillons : la sélection, la préparation et la conservation -------------------------- 47
7. Résultats et interprétations ---------------------------------------------------------------------------- 47
7.1. Résultats ---------------------------------------------------------------------------------------------- 47
7.1.1. Sérum IgM ------------------------------------------------------------------------------------- 48
7.1.2. Sérum IgG -------------------------------------------------------------------------------------- 50
7.1.3. Association sérum – LCR : analyse de la population (IgG/IgM) -------------------- 52
Conclusion générale et perspectives ---------------------------------------------------------------------- 53
Lexique ----------------------------------------------------------------------------------------------------------- 54
Bibliographie ---------------------------------------------------------------------------------------------------- 55Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65682 Comparaison de méthodes pour la détection des anticorps IgM et IgG dirigés contre les borrelia dans le sérum et le LCR [TFE / Mémoire] / Gaëlle Molle, Auteur . - 2016.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : biologie médicale Hôpital Civil Marie Curie bactérie anticorps IgG IgM borrelia tique immunologie chimiluminescence ELISA western blot liaison XL ETI-MAX gemini Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Présentation du lieu de stage ------------------------------------------------------------------------------- 11
Introduction générale ----------------------------------------------------------------------------------------- 13
Partie théorique ------------------------------------------------------------------------------------------------ 15
1. Introduction ----------------------------------------------------------------------------------------------- 15
2. La bactérie à l’origine de cette pathologie. --------------------------------------------------------- 15
3. L’hôte vecteur de la bactérie : la tique -------------------------------------------------------------- 16
3.1. La morphologie ------------------------------------------------------------------------------------- 17
3.2. La fixation -------------------------------------------------------------------------------------------- 17
3.3. Le milieu de vie ------------------------------------------------------------------------------------- 18
3.4. La nutrition ------------------------------------------------------------------------------------------ 18
3.5. Le cycle de vie --------------------------------------------------------------------------------------- 18
3.6. Les relations entre tiques, Borrelia et l’hôte ------------------------------------------------- 19
4. La pathologie ---------------------------------------------------------------------------------------------- 21
4.1. Généralités ------------------------------------------------------------------------------------------- 21
4.2. Le diagnostic ----------------------------------------------------------------------------------------- 23
4.3. Le(s) traitement(s) --------------------------------------------------------------------------------- 24
4.4. Pronostic --------------------------------------------------------------------------------------------- 24
4.5. Le risque d’infection ------------------------------------------------------------------------------- 25
4.6. Physiologie des anticorps ------------------------------------------------------------------------- 25
4.7. L’incidence de la pathologie et population concernée ------------------------------------ 26
5. Le dosage et les techniques utilisées ---------------------------------------------------------------- 27
5.1. Les différentes matrices de dosage ------------------------------------------------------------ 27
5.2. Le principe de base du dosage : une réaction antigène - anticorps -------------------- 27
5.3. Principe du dosage utilisant la chimiluminescence ----------------------------------------- 28
5.4. Principe de l’ELISA (Enzyme Linked Immunosorbant Assay) (figure n°10) ------------ 29
5.5. Principe du test de confirmation : le Western blot ----------------------------------------- 30
6. Objectifs et stratégies ----------------------------------------------------------------------------------- 31
Partie pratique -------------------------------------------------------------------------------------------------- 33
1. Le LIAISON XL ---------------------------------------------------------------------------------------------- 33
1.1. Présentation de l’automate ------------------------------------------------------------------------- 33
1.2. Matériel ------------------------------------------------------------------------------------------------- 35
1.3. Composition des kits --------------------------------------------------------------------------------- 35
1.4. Conservation des kits --------------------------------------------------------------------------------- 36
1.5. Méthode ------------------------------------------------------------------------------------------------ 36
1.6. Calibration et contrôles ------------------------------------------------------------------------------ 36
1.7. Interprétation des résultats ------------------------------------------------------------------------- 37
2. L’ETI-MAX -------------------------------------------------------------------------------------------------- 38
2.1. Présentation de l’automate ------------------------------------------------------------------------- 38
2.2. Matériels ------------------------------------------------------------------------------------------------ 38
2.3. Réactifs -------------------------------------------------------------------------------------------------- 39
2.4. Composition des kits --------------------------------------------------------------------------------- 39
2.5. Conservation des kits --------------------------------------------------------------------------------- 39
2.6. Méthode ------------------------------------------------------------------------------------------------ 39
2.7. Calibration et contrôles ------------------------------------------------------------------------------ 39
2.8. Interprétation des résultats ------------------------------------------------------------------------- 40
3. Le Gemini --------------------------------------------------------------------------------------------------- 41
3.1. Présentation de l’automate ------------------------------------------------------------------------- 41
3.2. Matériels ------------------------------------------------------------------------------------------------ 41
3.3. Composition des kits --------------------------------------------------------------------------------- 41
3.4. Méthode, calibration et contrôles ----------------------------------------------------------------- 41
6
3.5. Interprétation des résultats ------------------------------------------------------------------------- 41
4. Tableau comparatif ----------------------------------------------------------------------------------- 43
5. Le Western blot ---------------------------------------------------------------------------------------- 45
6. Les échantillons : la sélection, la préparation et la conservation -------------------------- 47
7. Résultats et interprétations ---------------------------------------------------------------------------- 47
7.1. Résultats ---------------------------------------------------------------------------------------------- 47
7.1.1. Sérum IgM ------------------------------------------------------------------------------------- 48
7.1.2. Sérum IgG -------------------------------------------------------------------------------------- 50
7.1.3. Association sérum – LCR : analyse de la population (IgG/IgM) -------------------- 52
Conclusion générale et perspectives ---------------------------------------------------------------------- 53
Lexique ----------------------------------------------------------------------------------------------------------- 54
Bibliographie ---------------------------------------------------------------------------------------------------- 55Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65682 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Comparaison des performances de milieux chromogéniques pour la détection du Streptococcus agalactiae dans les prélèvements génitaux / BAIJOT Amélie
Titre : Comparaison des performances de milieux chromogéniques pour la détection du Streptococcus agalactiae dans les prélèvements génitaux Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : BAIJOT Amélie, Année de publication : 2008 Mots-clés : GROSSESSE INFECTIONS NEONATALES FROTTIS GENITAUX STREPTOCOQUE GROUPE B SRTREPTOCOCCUS AGALACTIAE MILIEUX CHROMOGENES Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64418 Comparaison des performances de milieux chromogéniques pour la détection du Streptococcus agalactiae dans les prélèvements génitaux [TFE / Mémoire] / BAIJOT Amélie, . - 2008.
Mots-clés : GROSSESSE INFECTIONS NEONATALES FROTTIS GENITAUX STREPTOCOQUE GROUPE B SRTREPTOCOCCUS AGALACTIAE MILIEUX CHROMOGENES Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64418 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Comparaison de quatre milieux chromogènes et de deux bouillons sélectifs pour le dépistage du portage du Staphylococcus aureus résistant à la méthicilline / Anne SIBILLE
Titre : Comparaison de quatre milieux chromogènes et de deux bouillons sélectifs pour le dépistage du portage du Staphylococcus aureus résistant à la méthicilline Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Anne SIBILLE, Auteur Année de publication : 2012 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : BIOLOGIE CLINIQUE , MICROBIOLOGIE , INFECTIONS NOSOCOMIALES , MRSA , DEPISTAGE PORTAGE STAPHYLOCOCCUS AUREUS , RESISTANCE METHICILLINE , COMPARAISON BOUILLONS SELECTIFS / MILIEUX CHROMOGENES Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65118 Comparaison de quatre milieux chromogènes et de deux bouillons sélectifs pour le dépistage du portage du Staphylococcus aureus résistant à la méthicilline [TFE / Mémoire] / Anne SIBILLE, Auteur . - 2012.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur
Langues : Français (fre)
Mots-clés : BIOLOGIE CLINIQUE , MICROBIOLOGIE , INFECTIONS NOSOCOMIALES , MRSA , DEPISTAGE PORTAGE STAPHYLOCOCCUS AUREUS , RESISTANCE METHICILLINE , COMPARAISON BOUILLONS SELECTIFS / MILIEUX CHROMOGENES Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65118 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Comparaison des rendements d’extraction d’ADN par les kits MagAttract ® DNA Mini M48 (Quiagen), CrimePrep ® (Ademtech) et PrepFiler ® (Lifetechnologies) / CORALIE COLAUX
PermalinkComparaison de trois kits immuno-chromatographiques pour la recherche de sang occulte dans les selles par rapport à la technique Gaïac / Gwendoline Vassalo
PermalinkComparaison de trois lecteurs de galeries d identification / FRIH Nawel
PermalinkComparaison de trousses RIA et ELISA pour le dosage de l'aldostérone, l'androstanediol, l'oestrone et la 17 OH progestérone / DELESCAILLE Laurent
PermalinkComparaison et validation de méthodes de mesure du temps de fibrinolyse sur Lysis Timer® / Alexandre Petit
PermalinkComposition de panels d’immunophénotypage pour un cytomètre dix couleurs / Klára Kara
PermalinkConception, synthèse et évaluation pharmacologique d’inhibiteurs potentiels du récepteur C-Kit / REZKIA BENKECHIDA
PermalinkConception et synthèse d'inhibiteurs de l'indoléamine-2,3-dioxygénase / THOMAS SPLENDORE
PermalinkConfirmation de l'interaction entre la protéine PITF de Brucella et la petite GTPase humaine RAB34 / Jessica BADALAMENTI
PermalinkConstruction génétique de la protéine C-GFP du virus BVDV / Virginie Coorens
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