Centre de Documentation Campus Montignies
Horaires :
Lundi : 8h-18h30
Mardi : 8h-17h30
Mercredi 9h-16h30
Jeudi : 8h30-18h30
Vendredi : 8h30-12h30 et 13h-14h30
Votre centre de documentation sera exceptionnellement fermé de 12h30 à 13h ce lundi 18 novembre.
Egalement, il sera fermé de 12h30 à 13h30 ce mercredi 20 novembre.
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Auteur Claire Plassart |
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Vérification en portée A d’une méthode de PCR triplexe pour la détection de Chlamydia trachomatis, Neisseria gonorrhoeae et Mycoplasma genitalium / Flora Bochereau in RFL : Revue Francophone des Laboratoires, 503 (Juin 2018)
[article]
Titre : Vérification en portée A d’une méthode de PCR triplexe pour la détection de Chlamydia trachomatis, Neisseria gonorrhoeae et Mycoplasma genitalium Type de document : texte imprimé Auteurs : Flora Bochereau ; Hélène Séraphin ; Claire Plassart Année de publication : 2018 Article en page(s) : p. 22-28 Langues : Français (fre) Mots-clés : norme ISO 15189 PCR temps réel vérification continue vérification de méthode Résumé : En 2017, au laboratoire de l’hôpital de Beauvais, un appareil de PCR en temps réel est installé. Ce travail décrit la vérification de méthode, en portée A de la trousse de PCR triplexe en temps réel, Urethritis basic®, FTD, pour la détection qualitative de Chlamydia trachomatis (CT), Neisseria gonorrhoeae (NG) et Mycoplasma genitalium (MG). Pour répondre à la norme NF 15189, une analyse des risques ainsi que la vérification de certains critères de performance sont réalisées sur site. La fidélité intermédiaire pour NG est évaluée sur 2 échantillons donnant des résultats douteux au premier passage. Lors des passages suivants les résultats sont négatifs. La comparaison avec l’ancienne méthode en point final (GenoQuick®CT, Hain Lifescience) pour la recherche de CT est réalisée sur 46 échantillons, 4 résultats sont discordants (tous positifs avec l’ancienne méthode et négatifs avec la nouvelle). L’exactitude est vérifiée par deux EEQ pour CT et NG : les résultats sont conformes. Les essais de contamination inter- échantillons montrent l’absence de contamination. Enfin, une vérification continue à l’aide de graphiques de Levey-Jennings construites à partir des « Cycles threshold » (Ct) des contrôles est mise en place. Ce travail a permis de conclure à l’aptitude de la méthode tout en confirmant l’intérêt de contrôler les échantillons trouvés douteux pour le gonocoque. Il propose également un outil de surveillance continue des performances. Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=77608
in RFL : Revue Francophone des Laboratoires > 503 (Juin 2018) . - p. 22-28[article] Vérification en portée A d’une méthode de PCR triplexe pour la détection de Chlamydia trachomatis, Neisseria gonorrhoeae et Mycoplasma genitalium [texte imprimé] / Flora Bochereau ; Hélène Séraphin ; Claire Plassart . - 2018 . - p. 22-28.
Langues : Français (fre)
in RFL : Revue Francophone des Laboratoires > 503 (Juin 2018) . - p. 22-28
Mots-clés : norme ISO 15189 PCR temps réel vérification continue vérification de méthode Résumé : En 2017, au laboratoire de l’hôpital de Beauvais, un appareil de PCR en temps réel est installé. Ce travail décrit la vérification de méthode, en portée A de la trousse de PCR triplexe en temps réel, Urethritis basic®, FTD, pour la détection qualitative de Chlamydia trachomatis (CT), Neisseria gonorrhoeae (NG) et Mycoplasma genitalium (MG). Pour répondre à la norme NF 15189, une analyse des risques ainsi que la vérification de certains critères de performance sont réalisées sur site. La fidélité intermédiaire pour NG est évaluée sur 2 échantillons donnant des résultats douteux au premier passage. Lors des passages suivants les résultats sont négatifs. La comparaison avec l’ancienne méthode en point final (GenoQuick®CT, Hain Lifescience) pour la recherche de CT est réalisée sur 46 échantillons, 4 résultats sont discordants (tous positifs avec l’ancienne méthode et négatifs avec la nouvelle). L’exactitude est vérifiée par deux EEQ pour CT et NG : les résultats sont conformes. Les essais de contamination inter- échantillons montrent l’absence de contamination. Enfin, une vérification continue à l’aide de graphiques de Levey-Jennings construites à partir des « Cycles threshold » (Ct) des contrôles est mise en place. Ce travail a permis de conclure à l’aptitude de la méthode tout en confirmant l’intérêt de contrôler les échantillons trouvés douteux pour le gonocoque. Il propose également un outil de surveillance continue des performances. Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=77608 Réservation
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