Centre de Documentation Campus Montignies
Horaires :
Lundi : 8h-18h30
Mardi : 8h-18h30
Mercredi 9h-16h30
Jeudi : 8h-18h30
Vendredi : 8h-16h30
Votre centre de documentation fermera de 12h30 à 13h ce vendredi 28 juin et fermera à 14h30.
Dès ce lundi 1er juillet jusqu'au mercredi 10 juillet l'horaire du centre de documentation sera adapté :
Lundi 1er juillet : de 8h à 12h et de 12h30 à 16h
Mardi 2 juillet : de 8h à 12h15
Mercredi 3 juillet : de 9h à 12h et de 12h30 à 15h15
Jeudi 4 juillet : de 8h à 12h30 et de 13h à 18h30
Lundi 8 juillet : de 8h à 12h et de 12h30 à 16h
Mardi 9 juillet : de 8h à 12h15
Réouverture dès ce lundi 19 août.
Lundi : 8h-18h30
Mardi : 8h-18h30
Mercredi 9h-16h30
Jeudi : 8h-18h30
Vendredi : 8h-16h30
Votre centre de documentation fermera de 12h30 à 13h ce vendredi 28 juin et fermera à 14h30.
Dès ce lundi 1er juillet jusqu'au mercredi 10 juillet l'horaire du centre de documentation sera adapté :
Lundi 1er juillet : de 8h à 12h et de 12h30 à 16h
Mardi 2 juillet : de 8h à 12h15
Mercredi 3 juillet : de 9h à 12h et de 12h30 à 15h15
Jeudi 4 juillet : de 8h à 12h30 et de 13h à 18h30
Lundi 8 juillet : de 8h à 12h et de 12h30 à 16h
Mardi 9 juillet : de 8h à 12h15
Réouverture dès ce lundi 19 août.
Bienvenue sur le catalogue du centre de documentation du campus de Montignies.
Détail de l'auteur
Auteur Hector RODRIGUEZ-VILLALOBOS |
Documents disponibles écrits par cet auteur
![](./images/expand_all.gif)
![](./images/collapse_all.gif)
![Tris disponibles](./images/orderby_az.gif)
Dépistage du portage de bactéries productrices de carbapénémases de type KPC, NDM et OXA-48 par technique d’immunochromatographie latérale en plaque / Angélique DEPOUHON
Titre : Dépistage du portage de bactéries productrices de carbapénémases de type KPC, NDM et OXA-48 par technique d’immunochromatographie latérale en plaque Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Angélique DEPOUHON, Auteur ; Hector RODRIGUEZ-VILLALOBOS, Directeur de la recherche Année de publication : 2017 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale Cliniques Universitaires Saint Luc Service de microbiologie. Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
REMERCIEMENT
PRÉSENTATION DU LIEU DE STAGE
INTRODUCTION .................................................................................................................7
PARTIE THÉORIQUE ...........................................................................................................9
1. Historique des résistances bactériennes ....................................................................................... 9
2. Carbapénémases ......................................................................................................................... 10
2.1. Classe A .............................................................................................................................. 11
2.2. Classe B .............................................................................................................................. 11
2.3. Classe D .............................................................................................................................. 12
3. Importance de la résistance aux carbapénèmes ......................................................................... 12
3.1. Transmission de la résistance ............................................................................................. 12
3.2. Distribution des résistances aux carbapénèmes .................................................................. 13
3.3. Implication pour les hôpitaux ............................................................................................. 14
3.4. Porteurs sains ..................................................................................................................... 15
4. Techniques de détection de la production de carbapénémases ................................................. 15
4.1. Milieux sélectifs .................................................................................................................. 15
4.2. Tests phénotypiques ........................................................................................................... 16
4.2.1. Antibiogramme .............................................................................................................. 16
4.2.2. Test de Hodge modifié ................................................................................................... 17
4.2.3. Disques combinés .......................................................................................................... 18
4.2.4. Test biochimique ............................................................................................................ 18
4.3. Tests moléculaires .............................................................................................................. 19
4.4. Immunochromatographie latérale ...................................................................................... 19
4.5. Comparaison des différentes techniques de détection ....................................................... 21
5. Objectifs et stratégie ................................................................................................................... 22
PARTIE PRATIQUE ............................................................................................................24
1. Matériel et méthode ................................................................................................................... 24
1.1. Selle résiduelle.................................................................................................................... 24
1.1.1. Isolement ....................................................................................................................... 24
1.1.2. Tests phénotypiques ...................................................................................................... 24
1.1.3. Tests moléculaires .......................................................................................................... 25
1.1.4. Test Coris ....................................................................................................................... 26
1.2. Souches de référence productrices de carbapénémases ..................................................... 26
1.3. Échantillons cliniques.......................................................................................................... 27
1.4. Détection d’EPC par immunochromatographie latérale en plaque ...................................... 27
1.4.1. Reconstitution de frottis rectaux .................................................................................... 27
1.4.2. Enrichissement ............................................................................................................... 28
1.4.3. Quantification ................................................................................................................ 29
1.4.4. Centrifugation ................................................................................................................ 30
1.4.5. Test Coris ....................................................................................................................... 30
1.4.6. Adaptation du protocole ................................................................................................ 31
1.4.7. Méthode optimisée ........................................................................................................ 32
2. Résultats...................................................................................................................................... 32
2.1. Dépistage de la selle résiduelle ........................................................................................... 32
2.2. Mesure des interférences des milieux liquides.................................................................... 33
2.3. Détection d’EPC par immunochromatographie latérale en plaque ...................................... 34
2.3.1. Souches de référence ..................................................................................................... 34
2.3.2. Échantillons cliniques ..................................................................................................... 38
Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65831 Dépistage du portage de bactéries productrices de carbapénémases de type KPC, NDM et OXA-48 par technique d’immunochromatographie latérale en plaque [TFE / Mémoire] / Angélique DEPOUHON, Auteur ; Hector RODRIGUEZ-VILLALOBOS, Directeur de la recherche . - 2017.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : biologie médicale Cliniques Universitaires Saint Luc Service de microbiologie. Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
REMERCIEMENT
PRÉSENTATION DU LIEU DE STAGE
INTRODUCTION .................................................................................................................7
PARTIE THÉORIQUE ...........................................................................................................9
1. Historique des résistances bactériennes ....................................................................................... 9
2. Carbapénémases ......................................................................................................................... 10
2.1. Classe A .............................................................................................................................. 11
2.2. Classe B .............................................................................................................................. 11
2.3. Classe D .............................................................................................................................. 12
3. Importance de la résistance aux carbapénèmes ......................................................................... 12
3.1. Transmission de la résistance ............................................................................................. 12
3.2. Distribution des résistances aux carbapénèmes .................................................................. 13
3.3. Implication pour les hôpitaux ............................................................................................. 14
3.4. Porteurs sains ..................................................................................................................... 15
4. Techniques de détection de la production de carbapénémases ................................................. 15
4.1. Milieux sélectifs .................................................................................................................. 15
4.2. Tests phénotypiques ........................................................................................................... 16
4.2.1. Antibiogramme .............................................................................................................. 16
4.2.2. Test de Hodge modifié ................................................................................................... 17
4.2.3. Disques combinés .......................................................................................................... 18
4.2.4. Test biochimique ............................................................................................................ 18
4.3. Tests moléculaires .............................................................................................................. 19
4.4. Immunochromatographie latérale ...................................................................................... 19
4.5. Comparaison des différentes techniques de détection ....................................................... 21
5. Objectifs et stratégie ................................................................................................................... 22
PARTIE PRATIQUE ............................................................................................................24
1. Matériel et méthode ................................................................................................................... 24
1.1. Selle résiduelle.................................................................................................................... 24
1.1.1. Isolement ....................................................................................................................... 24
1.1.2. Tests phénotypiques ...................................................................................................... 24
1.1.3. Tests moléculaires .......................................................................................................... 25
1.1.4. Test Coris ....................................................................................................................... 26
1.2. Souches de référence productrices de carbapénémases ..................................................... 26
1.3. Échantillons cliniques.......................................................................................................... 27
1.4. Détection d’EPC par immunochromatographie latérale en plaque ...................................... 27
1.4.1. Reconstitution de frottis rectaux .................................................................................... 27
1.4.2. Enrichissement ............................................................................................................... 28
1.4.3. Quantification ................................................................................................................ 29
1.4.4. Centrifugation ................................................................................................................ 30
1.4.5. Test Coris ....................................................................................................................... 30
1.4.6. Adaptation du protocole ................................................................................................ 31
1.4.7. Méthode optimisée ........................................................................................................ 32
2. Résultats...................................................................................................................................... 32
2.1. Dépistage de la selle résiduelle ........................................................................................... 32
2.2. Mesure des interférences des milieux liquides.................................................................... 33
2.3. Détection d’EPC par immunochromatographie latérale en plaque ...................................... 34
2.3.1. Souches de référence ..................................................................................................... 34
2.3.2. Échantillons cliniques ..................................................................................................... 38
Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65831 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Développement d’un modèle expérimental in vitro de biofilms chez différentes espèces de levures d’origine clinique / Marine ROBYNS
Titre : Développement d’un modèle expérimental in vitro de biofilms chez différentes espèces de levures d’origine clinique Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Marine ROBYNS, Auteur ; Hector RODRIGUEZ-VILLALOBOS, Directeur de la recherche Année de publication : 2017 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale Cliniques Universitaires St Luc Service de microbiologie. Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Remerciements
Présentation du lieu de stage ...................................................................................... 6
Introduction ................................................................................................................. 7
Contexte général .......................................................................................................... 9
1. L’importance clinique ........................................................................................... 9
2. Les levures ............................................................................................................ 9
2.1. Le genre Candida ......................................................................................... 11
2.2. Cryptococcus neoformans ........................................................................... 13
2.3. Rhodotorula mucilaginosa .......................................................................... 14
2.4. Saccharomyces cerevisiae ........................................................................... 15
2.5. Exophiala dermatitidis ................................................................................ 15
3. Les biofilms ......................................................................................................... 17
3.1. Les biofilms bactériens ................................................................................ 17
3.2. Les biofilms à levures .................................................................................. 20
Objectifs et stratégie.................................................................................................. 23
Matériel et méthode .................................................................................................. 24
1. Les souches ......................................................................................................... 24
2. Les techniques .................................................................................................... 26
2.1. Repiquage des souches ............................................................................... 26
2.1.1. Matériel ................................................................................................ 26
2.1.2. Méthode .............................................................................................. 26
2.2. Réalisation des suspensions ........................................................................ 27
2.2.1. Matériel ................................................................................................ 27
2.2.2. Méthode .............................................................................................. 27
2.3. Changement du milieu ................................................................................ 27
2.3.1. Matériel ................................................................................................ 27
2.3.2. Méthode .............................................................................................. 28
2.4. Réalisation d’un dénombrement manuel ................................................... 28
2.4.1. Matériel ................................................................................................ 28
2.4.2. Méthode .............................................................................................. 28
2.5. Réalisation de la microplaque ..................................................................... 29
2.5.1. Matériel ................................................................................................ 29
2.5.2. Méthode .............................................................................................. 29
2.6. Quantification au cristal violet .................................................................... 30
2.6.1. Matériel ................................................................................................ 32
2.6.2. Méthode .............................................................................................. 32
2.7. Schéma récapitulatif du mode opératoire .................................................. 33
Résultats..................................................................................................................... 36
1. Comparaison des conditions d’incubation ......................................................... 37
2. Résultats des souches de collection ................................................................... 38
3. Résultats des souches cliniques ......................................................................... 43
Discussion .................................................................................................................. 46
Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65850 Développement d’un modèle expérimental in vitro de biofilms chez différentes espèces de levures d’origine clinique [TFE / Mémoire] / Marine ROBYNS, Auteur ; Hector RODRIGUEZ-VILLALOBOS, Directeur de la recherche . - 2017.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : biologie médicale Cliniques Universitaires St Luc Service de microbiologie. Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Remerciements
Présentation du lieu de stage ...................................................................................... 6
Introduction ................................................................................................................. 7
Contexte général .......................................................................................................... 9
1. L’importance clinique ........................................................................................... 9
2. Les levures ............................................................................................................ 9
2.1. Le genre Candida ......................................................................................... 11
2.2. Cryptococcus neoformans ........................................................................... 13
2.3. Rhodotorula mucilaginosa .......................................................................... 14
2.4. Saccharomyces cerevisiae ........................................................................... 15
2.5. Exophiala dermatitidis ................................................................................ 15
3. Les biofilms ......................................................................................................... 17
3.1. Les biofilms bactériens ................................................................................ 17
3.2. Les biofilms à levures .................................................................................. 20
Objectifs et stratégie.................................................................................................. 23
Matériel et méthode .................................................................................................. 24
1. Les souches ......................................................................................................... 24
2. Les techniques .................................................................................................... 26
2.1. Repiquage des souches ............................................................................... 26
2.1.1. Matériel ................................................................................................ 26
2.1.2. Méthode .............................................................................................. 26
2.2. Réalisation des suspensions ........................................................................ 27
2.2.1. Matériel ................................................................................................ 27
2.2.2. Méthode .............................................................................................. 27
2.3. Changement du milieu ................................................................................ 27
2.3.1. Matériel ................................................................................................ 27
2.3.2. Méthode .............................................................................................. 28
2.4. Réalisation d’un dénombrement manuel ................................................... 28
2.4.1. Matériel ................................................................................................ 28
2.4.2. Méthode .............................................................................................. 28
2.5. Réalisation de la microplaque ..................................................................... 29
2.5.1. Matériel ................................................................................................ 29
2.5.2. Méthode .............................................................................................. 29
2.6. Quantification au cristal violet .................................................................... 30
2.6.1. Matériel ................................................................................................ 32
2.6.2. Méthode .............................................................................................. 32
2.7. Schéma récapitulatif du mode opératoire .................................................. 33
Résultats..................................................................................................................... 36
1. Comparaison des conditions d’incubation ......................................................... 37
2. Résultats des souches de collection ................................................................... 38
3. Résultats des souches cliniques ......................................................................... 43
Discussion .................................................................................................................. 46
Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65850 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire