Analyse comparative de deux panels d’immunophénotypage cinq et dix couleurs en cytométrie en flux / Coleen Delatte

Public ISBD Titre : Analyse comparative de deux panels d’immunophénotypage cinq et dix couleurs en cytométrie en flux Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Coleen Delatte, Auteur ; Louise-Marie Vincent, Directeur de la recherche Editeur : Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale Année de publication : 2021 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : Notre-Dame de Grâce  Gosselies Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Ce travail de fin d’études fut réalisé au sein du laboratoire d’hématologie à l’hopital Notre-Dame de Grâce de Gossselies.Le sujet est l’analyse comparative de deux panels d’immunophénotypage cinq et dix couleurs en cytométrie en flux. Ces dernières années, la cytométrie en flux a beaucoup évoluée et permet à ce jour de diagnostiquer et de suivre de nombreuses hémopathies malignes et, plus particulièrement au laboratoire, les lymphomes. Cette technique est utilisée en complément d’une numération et d’un examen cytologique des cellules. Le cytomètre en flux permet d’obtenir différentes informations sur les cellules en passant devant un laser. Les données récoltées donnent des caractéristiques telles que la taille, la granularité ainsi que certains marqueurs antigéniques de chaque cellule individuellement. Lors de mon arrivée au sein du laboratoire, le cytomètre en flux Beckman Coulter Navios EX, fonctionnait avec un panel de cinq couleurs et un seul laser était utilisé. Mon travail de fin d’étude a permis, en complément du travail de Klara Kara de l’an dernier, de mettre au point un panel d’anticorps avec dix fluorochromes différents permettant de réaliser l’exploration simultanée de douze paramètres analysés avec 3 lasers. Ce présent travail compare l’ancien panel 5 couleurs et le nouveau panel 10 couleurs, étudie la répétabilité et la stabilité de ce panel. Note de contenu : Table des matières Présentation du lieu de stage............................................................................................. 7 Introduction générale ........................................................................................................ 8 1. La cytométrie en flux : ................................................................................................ 9 1.1. Principe général ..............................................................................................................9 1.1.1. Principe de focalisation hydrodynamique .....................................................................................10 1.1.2. Principe optique ............................................................................................................................11 1.1.3. Principe électronique ....................................................................................................................13 1.1.4. Les fluorochromes .........................................................................................................................14 1.1.5. Le chevauchement et les compensations spectrales ....................................................................15 1.1.6. Les marqueurs de différenciation..................................................................................................16 2. Automate Beckman Coulter Navios EX...................................................................... 17 3. Quand doit-on réaliser un immunophénotypage ? .................................................... 18 4. Comment interpréter un histogramme de cytométrie en flux ? ................................. 19 5. Les pathologies ........................................................................................................ 20 5.1. La lymphocytose B monoclonale ...................................................................................21 5.2. La leucémie lymphoïde chronique (LLC) ........................................................................21 5.3. La leucémie à tricholeucocytes......................................................................................25 6. Marqueurs utilisés pour le diagnostic des syndromes lymphoprolifératifs des cellules B chroniques ....................................................................................................................... 26 6.1. Modification du phénotypage à la suite d’un traitement...............................................29 7. Objectifs du travail de fin d’étude............................................................................. 30 8. Matériel et méthode de travail pour réaliser un immunophénotypage ..................... 31 8.1. Matériel utilisé..............................................................................................................31 8.2. Méthode.......................................................................................................................31 8.2.1. Mode opératoire[26] .......................................................................................................................32 9. Mise en place d’un panel dix couleurs....................................................................... 33 10. La répétabilité de la méthode ............................................................................... 36 11. La stabilité de la méthode..................................................................................... 38 12. Comparaison et discussion des résultats ............................................................... 43 13. Conclusion ............................................................................................................ 57 Glossaire.......................................................................................................................... 58 Abréviations .................................................................................................................... 59 Table des figures.............................................................................................................. 60 Table des tableaux........................................................................................................... 60 Bibliographie : ................................................................................................................. 61 Annexes ........................................................................................................................... 65 Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=100318 Analyse comparative de deux panels d’immunophénotypage cinq et dix couleurs en cytométrie en flux [TFE / Mémoire] / Coleen Delatte, Auteur ; Louise-Marie Vincent, Directeur de la recherche . - Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale, 2021. Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : Notre-Dame de Grâce  Gosselies Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Ce travail de fin d’études fut réalisé au sein du laboratoire d’hématologie à l’hopital Notre-Dame de Grâce de Gossselies.Le sujet est l’analyse comparative de deux panels d’immunophénotypage cinq et dix couleurs en cytométrie en flux. Ces dernières années, la cytométrie en flux a beaucoup évoluée et permet à ce jour de diagnostiquer et de suivre de nombreuses hémopathies malignes et, plus particulièrement au laboratoire, les lymphomes. Cette technique est utilisée en complément d’une numération et d’un examen cytologique des cellules. Le cytomètre en flux permet d’obtenir différentes informations sur les cellules en passant devant un laser. Les données récoltées donnent des caractéristiques telles que la taille, la granularité ainsi que certains marqueurs antigéniques de chaque cellule individuellement. Lors de mon arrivée au sein du laboratoire, le cytomètre en flux Beckman Coulter Navios EX, fonctionnait avec un panel de cinq couleurs et un seul laser était utilisé. Mon travail de fin d’étude a permis, en complément du travail de Klara Kara de l’an dernier, de mettre au point un panel d’anticorps avec dix fluorochromes différents permettant de réaliser l’exploration simultanée de douze paramètres analysés avec 3 lasers. Ce présent travail compare l’ancien panel 5 couleurs et le nouveau panel 10 couleurs, étudie la répétabilité et la stabilité de ce panel. Note de contenu : Table des matières Présentation du lieu de stage............................................................................................. 7 Introduction générale ........................................................................................................ 8 1. La cytométrie en flux : ................................................................................................ 9 1.1. Principe général ..............................................................................................................9 1.1.1. Principe de focalisation hydrodynamique .....................................................................................10 1.1.2. Principe optique ............................................................................................................................11 1.1.3. Principe électronique ....................................................................................................................13 1.1.4. Les fluorochromes .........................................................................................................................14 1.1.5. Le chevauchement et les compensations spectrales ....................................................................15 1.1.6. Les marqueurs de différenciation..................................................................................................16 2. Automate Beckman Coulter Navios EX...................................................................... 17 3. Quand doit-on réaliser un immunophénotypage ? .................................................... 18 4. Comment interpréter un histogramme de cytométrie en flux ? ................................. 19 5. Les pathologies ........................................................................................................ 20 5.1. La lymphocytose B monoclonale ...................................................................................21 5.2. La leucémie lymphoïde chronique (LLC) ........................................................................21 5.3. La leucémie à tricholeucocytes......................................................................................25 6. Marqueurs utilisés pour le diagnostic des syndromes lymphoprolifératifs des cellules B chroniques ....................................................................................................................... 26 6.1. Modification du phénotypage à la suite d’un traitement...............................................29 7. Objectifs du travail de fin d’étude............................................................................. 30 8. Matériel et méthode de travail pour réaliser un immunophénotypage ..................... 31 8.1. Matériel utilisé..............................................................................................................31 8.2. Méthode.......................................................................................................................31 8.2.1. Mode opératoire[26] .......................................................................................................................32 9. Mise en place d’un panel dix couleurs....................................................................... 33 10. La répétabilité de la méthode ............................................................................... 36 11. La stabilité de la méthode..................................................................................... 38 12. Comparaison et discussion des résultats ............................................................... 43 13. Conclusion ............................................................................................................ 57 Glossaire.......................................................................................................................... 58 Abréviations .................................................................................................................... 59 Table des figures.............................................................................................................. 60 Table des tableaux........................................................................................................... 60 Bibliographie : ................................................................................................................. 61 Annexes ........................................................................................................................... 65 Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=100318

Exemplaires

Cote	Support	Localisation	Section	Disponibilité
aucun exemplaire

Anémie macrocytaire, est-il possible de prédire l’orientation clinique sur base des paramètres de positionnement des nuages leucocytaires sur XN-SERIES SYSMEX ® ? / Joëlle Njanda Nana Judicaiel

Public ISBD Titre : Anémie macrocytaire, est-il possible de prédire l’orientation clinique sur base des paramètres de positionnement des nuages leucocytaires sur XN-SERIES SYSMEX ® ? Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Joëlle Njanda Nana Judicaiel ; Louise-Marie Vincent, Directeur de la recherche Editeur : Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale Année de publication : 2024 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Anémie macrocytaire, est-il possible de prédire l’orientation clinique sur base des paramètres de positionnement des nuages leucocytaires sur XN-SERIES SYSMEX ? Introduction : D'un point de vue biologique, les anémies sont catégorisées en fonction du volume globulaire moyen des érythrocytes (MCV). On peut identifier trois sous-types, notamment les anémies macrocytaires, caractérisées par un MCV supérieur à 101 femtolitres, qui sont généralement causées par un déficit en acide folique et/ou en vitamine B12. Actuellement, distinguer une macrocytose liée à un déficit en acide folique et/ou en B12 de celle associée à un syndrome myélodysplasique (SMD) représente un défi. Prédire l'origine en se basant sur les paramètres de positionnement du nuage leucocytaire serait d'un grand intérêt pour un diagnostic clinique rapide, soulignant ainsi l'importance de cette étude clinique. Objectifs de ce mémoire : Mener une étude préliminaire pour déterminer la possibilité de prédire une anémie macrocytaire en utilisant les paramètres de positionnement du nuage sur XN-SERIES SYSMEX comme paru en 2022 dans l’IJHL disant : « Cell Population Data NE-WX, NE-FSC, LY-Y of Sysmex XN9000 can provide additional information to differentiate macrocytic anaemia from myélodysplastic syndrome ». Stratégies : Les données patients ont été récoltées via le logiciel Glims sur une période de plus d’un an pour les normaux, de ceux ayant des déficits en acide folique et/ou en vitamine B12 et de ceux ayant des SMD. Ces données ont été traitées et interprétées via le test non paramètrique de type chi-square pour le paramètre ‘’sexe’’, de type Kruskal Wallis, puis le test post hoc via la procédure de Dunn et correction de Bonferroni pour les autres paramètres. Ensuite, grâce à une formule statistique de régression logistique binaire, la courbe ROC a été établie, permettant de mettre en exergue la relation entre la sensibilité, la spécificité, la VPP et VPN de la méthode de test utilisée. Résultats et discussion : Après analyse et interprétation des résultats sur 449 patients normaux, 156 patients avec déficit et 88 patients SMD. Il en ressort, pour certains paramètres (NE-X, NE-WX, MicroR, etc. …), qu’il y a une différence significative entre les 3 catégories. En termes de screening et de diagnostic clinique, la méthode est assez fiable car la courbe ROC donne un cut off de 0.7086709 avec une sensibilité de 84.6 %, une spécificité de 86.4 %, une VPP de 91.67 % et une VPN de 76 % pour différencier les MDS et déficit. Cependant, en raison de plusieurs sous- types de SMD, on peut voir la formule varier. Néanmoins, l’étude est intéressante et peut-être implémentée pour la routine. Conclusion et perspectives À la fin de cette étude, l'objectif était de déterminer si à partir d’une analyse sanguine, on peut distinguer une anémie macrocytaire liée à un SMD ou à une carence vitaminique en utilisant les paramètres de population leucocytaire. Les résultats de la courbe ROC suggèrent que la méthode de test est plutôt fiable. Un diagnostic précoce de l'anémie macrocytaire représenterait un gain de temps significatif. À l'avenir, il pourrait être envisageable de développer un algorithme statistique permettant de différencier et de diagnostiquer précocement cette condition. Cependant, quelques limites lors de l’étude doivent être prises en compte. Note de contenu : Table des matières Remerciements ............................................................................................................................................. 4 Présentation du lieu de stage....................................................................................................................... 7 Introduction générale ................................................................................................................................... 9 Partie théorique .......................................................................................................................................... 11 Chapitre 1 : Le sang ................................................................................................................................. 11 1. L’hématopoïèse ........................................................................................................................... 12 1.1. L’érythropoïèse.................................................................................................................... 13 1.1.1. La lignée érythrocytaire ............................................................................................... 13 1.1.2. Les agents de croissance de l’érythropoïèse ............................................................... 14 1.1.2.1. La vitamine B12 ....................................................................................................... 14 1.1.2.2. Acide folique............................................................................................................ 15 1.1.2.3. Le Fer ....................................................................................................................... 16 1.2. Granulopoïèse ..................................................................................................................... 16 1.2.1. La lignée granulocytaire .............................................................................................. 17 1.2.2. L’hémoglobine ............................................................................................................. 18 Chapitre 2 : Métabolisme de la VIT B12 et de l’acide folique ................................................................. 19 1. Absorption de la vitamine B12 dans l’organisme ........................................................................ 19 2. Métabolisme de la vitamine B12 ................................................................................................. 21 2.1. Place de cobalamine dans la synthèse de l’acide méthylmalonique .................................. 21 2.2. Place de la cobalamine dans la synthèse de l’homocystéine .............................................. 22 3. Absorption des folates ................................................................................................................ 23 4. Métabolisme des folates ............................................................................................................. 24 Chapitre 3 : Les anémies macrocytaires ................................................................................................. 25 1. Classification des anémies macrocytaires ................................................................................... 25 1.1. Anémies macrocytaires mégaloblastiques .......................................................................... 25 1.2. Anémies macrocytaires non mégaloblastiques................................................................... 26 1.2.1. Anémie macrocytaire liée à un Syndrome myélodysplasique (SMD) ......................... 27 1.2.1.1. Définition ................................................................................................................. 27 1.2.1.2. Classification des SMD............................................................................................. 27 Chapitre 4 : Principe de fonctionnement de l’automate XN-Séries Sysmex ........................................... 29 1. Principe des XN-Séries SYSMEX ................................................................................................... 29 1.1. L’impédance couplée à la focalisation hydrodynamique .................................................... 29 1.2. Détermination de l’hématocrite.......................................................................................... 32 1.3. Détermination de l’hémoglobine par le Sodium Lauryl Sulfate (SLS) ................................. 32 1.4. Cytométrie en flux par diode laser ...................................................................................... 34 2. Les différents canaux d’analyses sur le XN SERIES SYSMEX ........................................................ 35 2.1. Canal WNR ........................................................................................................................... 35 2.2. Canal WDF ........................................................................................................................... 36 Partie Pratique ............................................................................................................................................ 39 1. Objectifs ...................................................................................................................................... 39 2. Matériels et méthodes ............................................................................................................... 39 2.1. Matériels.............................................................................................................................. 39 2.1.1. Prélèvement ................................................................................................................ 39 2.1.2. Populations étudiées ................................................................................................... 39 2.1.2.1. Patients normaux (PN) ............................................................................................ 39 2.1.2.2. Patients SMD ........................................................................................................... 39 2.1.2.3. Patients avec déficit en acide folique /vitamine B12 (PD) ...................................... 40 2.1.3. Etude rétrospective ..................................................................................................... 40 2.2. Méthodes ............................................................................................................................ 41 2.2.1. Le test chi-square (X²)................................................................................................. 42 2.2.2. Le test de type Kruskal-Wallis : test non paramétrique. ............................................ 42 2.2.3. Le test post hoc .......................................................................................................... 43 3. Résultats...................................................................................................................................... 45 3.1. Modèle régression logistique binaire .................................................................................. 47 4. Discussions .................................................................................................................................. 50 Conclusion ................................................................................................................................................... 53 Liste des abréviations ................................................................................................................................. 54 Liste des figures .......................................................................................................................................... 56 Bibliographie.............................................................................................................................................. 57 Tables des annexes ..................................................................................................................................... 63 Résumé........................................................................................................................................................ 92 Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=119427 Anémie macrocytaire, est-il possible de prédire l’orientation clinique sur base des paramètres de positionnement des nuages leucocytaires sur XN-SERIES SYSMEX ® ? [TFE / Mémoire] / Joëlle Njanda Nana Judicaiel ; Louise-Marie Vincent, Directeur de la recherche . - Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale, 2024. Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Anémie macrocytaire, est-il possible de prédire l’orientation clinique sur base des paramètres de positionnement des nuages leucocytaires sur XN-SERIES SYSMEX ? Introduction : D'un point de vue biologique, les anémies sont catégorisées en fonction du volume globulaire moyen des érythrocytes (MCV). On peut identifier trois sous-types, notamment les anémies macrocytaires, caractérisées par un MCV supérieur à 101 femtolitres, qui sont généralement causées par un déficit en acide folique et/ou en vitamine B12. Actuellement, distinguer une macrocytose liée à un déficit en acide folique et/ou en B12 de celle associée à un syndrome myélodysplasique (SMD) représente un défi. Prédire l'origine en se basant sur les paramètres de positionnement du nuage leucocytaire serait d'un grand intérêt pour un diagnostic clinique rapide, soulignant ainsi l'importance de cette étude clinique. Objectifs de ce mémoire : Mener une étude préliminaire pour déterminer la possibilité de prédire une anémie macrocytaire en utilisant les paramètres de positionnement du nuage sur XN-SERIES SYSMEX comme paru en 2022 dans l’IJHL disant : « Cell Population Data NE-WX, NE-FSC, LY-Y of Sysmex XN9000 can provide additional information to differentiate macrocytic anaemia from myélodysplastic syndrome ». Stratégies : Les données patients ont été récoltées via le logiciel Glims sur une période de plus d’un an pour les normaux, de ceux ayant des déficits en acide folique et/ou en vitamine B12 et de ceux ayant des SMD. Ces données ont été traitées et interprétées via le test non paramètrique de type chi-square pour le paramètre ‘’sexe’’, de type Kruskal Wallis, puis le test post hoc via la procédure de Dunn et correction de Bonferroni pour les autres paramètres. Ensuite, grâce à une formule statistique de régression logistique binaire, la courbe ROC a été établie, permettant de mettre en exergue la relation entre la sensibilité, la spécificité, la VPP et VPN de la méthode de test utilisée. Résultats et discussion : Après analyse et interprétation des résultats sur 449 patients normaux, 156 patients avec déficit et 88 patients SMD. Il en ressort, pour certains paramètres (NE-X, NE-WX, MicroR, etc. …), qu’il y a une différence significative entre les 3 catégories. En termes de screening et de diagnostic clinique, la méthode est assez fiable car la courbe ROC donne un cut off de 0.7086709 avec une sensibilité de 84.6 %, une spécificité de 86.4 %, une VPP de 91.67 % et une VPN de 76 % pour différencier les MDS et déficit. Cependant, en raison de plusieurs sous- types de SMD, on peut voir la formule varier. Néanmoins, l’étude est intéressante et peut-être implémentée pour la routine. Conclusion et perspectives À la fin de cette étude, l'objectif était de déterminer si à partir d’une analyse sanguine, on peut distinguer une anémie macrocytaire liée à un SMD ou à une carence vitaminique en utilisant les paramètres de population leucocytaire. Les résultats de la courbe ROC suggèrent que la méthode de test est plutôt fiable. Un diagnostic précoce de l'anémie macrocytaire représenterait un gain de temps significatif. À l'avenir, il pourrait être envisageable de développer un algorithme statistique permettant de différencier et de diagnostiquer précocement cette condition. Cependant, quelques limites lors de l’étude doivent être prises en compte. Note de contenu : Table des matières Remerciements ............................................................................................................................................. 4 Présentation du lieu de stage....................................................................................................................... 7 Introduction générale ................................................................................................................................... 9 Partie théorique .......................................................................................................................................... 11 Chapitre 1 : Le sang ................................................................................................................................. 11 1. L’hématopoïèse ........................................................................................................................... 12 1.1. L’érythropoïèse.................................................................................................................... 13 1.1.1. La lignée érythrocytaire ............................................................................................... 13 1.1.2. Les agents de croissance de l’érythropoïèse ............................................................... 14 1.1.2.1. La vitamine B12 ....................................................................................................... 14 1.1.2.2. Acide folique............................................................................................................ 15 1.1.2.3. Le Fer ....................................................................................................................... 16 1.2. Granulopoïèse ..................................................................................................................... 16 1.2.1. La lignée granulocytaire .............................................................................................. 17 1.2.2. L’hémoglobine ............................................................................................................. 18 Chapitre 2 : Métabolisme de la VIT B12 et de l’acide folique ................................................................. 19 1. Absorption de la vitamine B12 dans l’organisme ........................................................................ 19 2. Métabolisme de la vitamine B12 ................................................................................................. 21 2.1. Place de cobalamine dans la synthèse de l’acide méthylmalonique .................................. 21 2.2. Place de la cobalamine dans la synthèse de l’homocystéine .............................................. 22 3. Absorption des folates ................................................................................................................ 23 4. Métabolisme des folates ............................................................................................................. 24 Chapitre 3 : Les anémies macrocytaires ................................................................................................. 25 1. Classification des anémies macrocytaires ................................................................................... 25 1.1. Anémies macrocytaires mégaloblastiques .......................................................................... 25 1.2. Anémies macrocytaires non mégaloblastiques................................................................... 26 1.2.1. Anémie macrocytaire liée à un Syndrome myélodysplasique (SMD) ......................... 27 1.2.1.1. Définition ................................................................................................................. 27 1.2.1.2. Classification des SMD............................................................................................. 27 Chapitre 4 : Principe de fonctionnement de l’automate XN-Séries Sysmex ........................................... 29 1. Principe des XN-Séries SYSMEX ................................................................................................... 29 1.1. L’impédance couplée à la focalisation hydrodynamique .................................................... 29 1.2. Détermination de l’hématocrite.......................................................................................... 32 1.3. Détermination de l’hémoglobine par le Sodium Lauryl Sulfate (SLS) ................................. 32 1.4. Cytométrie en flux par diode laser ...................................................................................... 34 2. Les différents canaux d’analyses sur le XN SERIES SYSMEX ........................................................ 35 2.1. Canal WNR ........................................................................................................................... 35 2.2. Canal WDF ........................................................................................................................... 36 Partie Pratique ............................................................................................................................................ 39 1. Objectifs ...................................................................................................................................... 39 2. Matériels et méthodes ............................................................................................................... 39 2.1. Matériels.............................................................................................................................. 39 2.1.1. Prélèvement ................................................................................................................ 39 2.1.2. Populations étudiées ................................................................................................... 39 2.1.2.1. Patients normaux (PN) ............................................................................................ 39 2.1.2.2. Patients SMD ........................................................................................................... 39 2.1.2.3. Patients avec déficit en acide folique /vitamine B12 (PD) ...................................... 40 2.1.3. Etude rétrospective ..................................................................................................... 40 2.2. Méthodes ............................................................................................................................ 41 2.2.1. Le test chi-square (X²)................................................................................................. 42 2.2.2. Le test de type Kruskal-Wallis : test non paramétrique. ............................................ 42 2.2.3. Le test post hoc .......................................................................................................... 43 3. Résultats...................................................................................................................................... 45 3.1. Modèle régression logistique binaire .................................................................................. 47 4. Discussions .................................................................................................................................. 50 Conclusion ................................................................................................................................................... 53 Liste des abréviations ................................................................................................................................. 54 Liste des figures .......................................................................................................................................... 56 Bibliographie.............................................................................................................................................. 57 Tables des annexes ..................................................................................................................................... 63 Résumé........................................................................................................................................................ 92 Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=119427

Exemplaires

Cote	Support	Localisation	Section	Disponibilité
aucun exemplaire

Application en cytométrie en flux du « monoscore » au diagnostic différentiel des monocytoses / Chloé Picaro

Public ISBD Titre : Application en cytométrie en flux du « monoscore » au diagnostic différentiel des monocytoses Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Chloé Picaro, Auteur ; Louise-Marie Vincent, Directeur de la recherche Editeur : Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale Année de publication : 2021 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : Grand Hôpital de Charleroi Saint Joseph  GHdC  Gilly  Laboratoire Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Ce travail de fin d’études a été effectué dans le laboratoire d’hématologie du Grand Hôpital de Charleroi Saint Joseph à Gilly (GHdC) et porte sur le diagnostic différentiel entre Leucémie Myélomonocytaire Chronique et monocytose réactionnelle par cytométrie en flux sur base du protocole d’un groupe français, le CytHem. La Leucémie Myélomonocytaire Chronique est une maladie touchant la lignée des monocytes. Elle peut présenter un versant prolifératif, c’est-à-dire une prolifération anarchique des monocytes, mais aussi un versant dysplasique, avec présence de cellules anormales. C’est une pathologie touchant principalement les personnes âgées.La monocytose réactionnelle est la conséquence d’une pathologie sous-jacente. Elle est caractérisée par une monocytose supérieure à 1000/mm³ dans le sang périphérique. Diverses causes peuvent être à l’origine d’une monocytose réactionnelle comme lors d’une prise de médicament, en cas de syndrome inflammatoire ou encore après une chirurgie. La technique utilisée est la cytométrie en flux qui permet de classer les cellules en fonction de leur taille, de leur complexité intracellulaire et de leur fluorescence. La cytométrie regroupe trois principes : la focalisation hydrodynamique permettant l’alignement des cellules une par une, l'optique permettant le passage des cellules à travers les lasers et l'électronique qui permet la conversion des signaux lumineux en signaux électriques digitalisés pour ensuite être traités par informatique. A la fin de cette étude, les résultats obtenus montraient que le protocole utilisé (CytHem) pouvait être utilisé en routine dans n’importe quel laboratoire d’hématologie. Note de contenu : Table des matières Présentation du lieu de stage................................................................................................. 1 Introduction générale............................................................................................................. 3 Partie théorique ............................................................................................................... 4 La cytométrie en flux .............................................................................................................. 5 I. Définition ..................................................................................................................... 5 II. Principes ...................................................................................................................... 5 III. Les fluorochromes.................................................................................................. 11 Cytomètre utilisé au laboratoire .......................................................................................... 19 Lignée monocytaire .............................................................................................................. 20 La Leucémie myélomonocytaire chronique (LMMC) ........................................................... 24 I. Définition ................................................................................................................... 24 II. Clinique ...................................................................................................................... 25 III. Critères diagnostiques de la LMMC ....................................................................... 25 IV. Hémogramme ........................................................................................................ 26 V. Immunophénotypage ................................................................................................ 26 VI. Aspects cytogénétiques et moléculaires ............................................................... 26 VII. Traitement ............................................................................................................. 27 La monocytose réactionnelle ............................................................................................... 28 I. Définition ................................................................................................................... 28 II. Diagnostic différentiel des monocytoses sanguines ................................................. 29 III. Traitement ............................................................................................................. 29 Partie pratique ................................................................................................................30 But......................................................................................................................................... 31 Stratégie de gating pour l’identification des sous populations monocytaires..................... 32 Matériel ................................................................................................................................ 37 Méthode ............................................................................................................................... 37 Résultats ............................................................................................................................... 38 I. Présentation des différents cas ................................................................................. 38 Discussion et conclusion....................................................................................................... 44 Abréviations.......................................................................................................................... 47 Liste des figures .................................................................................................................... 48 Liste des tableaux ................................................................................................................. 50 Bibliographie ...................................................................................................................51 Table des matière des annexes ............................................................................................ 55 Annexes...........................................................................................................................56 Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=100336 Application en cytométrie en flux du « monoscore » au diagnostic différentiel des monocytoses [TFE / Mémoire] / Chloé Picaro, Auteur ; Louise-Marie Vincent, Directeur de la recherche . - Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale, 2021. Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : Grand Hôpital de Charleroi Saint Joseph  GHdC  Gilly  Laboratoire Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Ce travail de fin d’études a été effectué dans le laboratoire d’hématologie du Grand Hôpital de Charleroi Saint Joseph à Gilly (GHdC) et porte sur le diagnostic différentiel entre Leucémie Myélomonocytaire Chronique et monocytose réactionnelle par cytométrie en flux sur base du protocole d’un groupe français, le CytHem. La Leucémie Myélomonocytaire Chronique est une maladie touchant la lignée des monocytes. Elle peut présenter un versant prolifératif, c’est-à-dire une prolifération anarchique des monocytes, mais aussi un versant dysplasique, avec présence de cellules anormales. C’est une pathologie touchant principalement les personnes âgées.La monocytose réactionnelle est la conséquence d’une pathologie sous-jacente. Elle est caractérisée par une monocytose supérieure à 1000/mm³ dans le sang périphérique. Diverses causes peuvent être à l’origine d’une monocytose réactionnelle comme lors d’une prise de médicament, en cas de syndrome inflammatoire ou encore après une chirurgie. La technique utilisée est la cytométrie en flux qui permet de classer les cellules en fonction de leur taille, de leur complexité intracellulaire et de leur fluorescence. La cytométrie regroupe trois principes : la focalisation hydrodynamique permettant l’alignement des cellules une par une, l'optique permettant le passage des cellules à travers les lasers et l'électronique qui permet la conversion des signaux lumineux en signaux électriques digitalisés pour ensuite être traités par informatique. A la fin de cette étude, les résultats obtenus montraient que le protocole utilisé (CytHem) pouvait être utilisé en routine dans n’importe quel laboratoire d’hématologie. Note de contenu : Table des matières Présentation du lieu de stage................................................................................................. 1 Introduction générale............................................................................................................. 3 Partie théorique ............................................................................................................... 4 La cytométrie en flux .............................................................................................................. 5 I. Définition ..................................................................................................................... 5 II. Principes ...................................................................................................................... 5 III. Les fluorochromes.................................................................................................. 11 Cytomètre utilisé au laboratoire .......................................................................................... 19 Lignée monocytaire .............................................................................................................. 20 La Leucémie myélomonocytaire chronique (LMMC) ........................................................... 24 I. Définition ................................................................................................................... 24 II. Clinique ...................................................................................................................... 25 III. Critères diagnostiques de la LMMC ....................................................................... 25 IV. Hémogramme ........................................................................................................ 26 V. Immunophénotypage ................................................................................................ 26 VI. Aspects cytogénétiques et moléculaires ............................................................... 26 VII. Traitement ............................................................................................................. 27 La monocytose réactionnelle ............................................................................................... 28 I. Définition ................................................................................................................... 28 II. Diagnostic différentiel des monocytoses sanguines ................................................. 29 III. Traitement ............................................................................................................. 29 Partie pratique ................................................................................................................30 But......................................................................................................................................... 31 Stratégie de gating pour l’identification des sous populations monocytaires..................... 32 Matériel ................................................................................................................................ 37 Méthode ............................................................................................................................... 37 Résultats ............................................................................................................................... 38 I. Présentation des différents cas ................................................................................. 38 Discussion et conclusion....................................................................................................... 44 Abréviations.......................................................................................................................... 47 Liste des figures .................................................................................................................... 48 Liste des tableaux ................................................................................................................. 50 Bibliographie ...................................................................................................................51 Table des matière des annexes ............................................................................................ 55 Annexes...........................................................................................................................56 Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=100336

Exemplaires

Cote	Support	Localisation	Section	Disponibilité
aucun exemplaire

Elaboration et mise en place d'une procedure d'utilisation de temoins en immunohistochimie, au sein d'un laboratoire d'anatomie pathologique / Justine Guyaux

Public ISBD Titre : Elaboration et mise en place d'une procedure d'utilisation de temoins en immunohistochimie, au sein d'un laboratoire d'anatomie pathologique Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Justine Guyaux, Auteur ; Louise-Marie Vincent, Directeur de la recherche Année de publication : 2018 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=66086 Elaboration et mise en place d'une procedure d'utilisation de temoins en immunohistochimie, au sein d'un laboratoire d'anatomie pathologique [TFE / Mémoire] / Justine Guyaux, Auteur ; Louise-Marie Vincent, Directeur de la recherche . - 2018. Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=66086

Exemplaires

Cote	Support	Localisation	Section	Disponibilité
aucun exemplaire

ÉTUDE DE LA VITESSE DE SÉDIMENTATION : COMPARAISON DES TECHNIQUES DE WESTERGREN, DU MONITOR V20® ET DU VES-MATIC CUBE 30®. RELATION DE LA VITESSE DE SÉDIMENTATION AVEC D’AUTRES MARQUEURS BIOLOGIQUES. / Cédric LORENT

Public ISBD Titre : ÉTUDE DE LA VITESSE DE SÉDIMENTATION : COMPARAISON DES TECHNIQUES DE WESTERGREN, DU MONITOR V20® ET DU VES-MATIC CUBE 30®. RELATION DE LA VITESSE DE SÉDIMENTATION AVEC D’AUTRES MARQUEURS BIOLOGIQUES. Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Cédric LORENT, Auteur ; Jacques Mairesse, Directeur de la recherche ; Louise-Marie Vincent, Directeur de la recherche Année de publication : 2015 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale  sédimentation : vitesse Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Résumé L’objectif principal de ce travail de fin d’étude, réalisé au laboratoire de biologie médicale de la clinique Saint-Pierre à Ottignies, était de comparer les performances d’un nouvel automate mesurant la vitesse de sédimentation, le Ves-Matic Cube 30®, avec l’automate utilisé par la clinique, le Monitor V20®, et la méthode de Westergren (méthode de référence). Dans le but de le valider pour prouver son utilisation dans la routine de l’hôpital. La vitesse de sédimentation est un test non spécifique utile dans l’évaluation des syndromes inflammatoires aigus et chroniques. C’est un test influencé par de nombreux paramètres biologiques et qui nécessite la relation avec d’autres marqueurs biologiques pour déterminer un état inflammatoire. Le second objectif était, dans un premier temps, d’évaluer l’influence de certains de ces paramètres (hématocrite, fibrinogène et immunoglobulines) sur la vitesse de sédimentation. Et dans un second temps, d’établir si une relation avec certains marqueurs biologiques (protéine C réactive, procalcitonine et leucocytes) existe. Ce travail de fin d’étude explique la démarche et la conclusion des différents objectifs. Note de contenu : INTRODUCTION ......................................................................................................................................... 9 PARTIE THEORIQUE 1. Réaction inflammatoire ........................................................................................................................... 11 1.1 Définition ............................................................................................................................................. 11 1.2 Les types d’inflammation .................................................................................................................... 11 1.3 Les cellules impliquées dans l’inflammation ...................................................................................... 12 1.3.1 Les cellules de la circulation sanguine ......................................................................................... 12 1.3.2 Les cellules endothéliales ............................................................................................................. 13 1.4 Les médiateurs de l’inflammation ....................................................................................................... 13 1.4.1 Les systèmes d’activation plasmatiques ....................................................................................... 14 1.4.2 Les médiateurs cellulaires ........................................................................................................... 14 1.4.2.1 L’histamine ........................................................................................................................ 14 1.4.2.2 Les radicaux libres ............................................................................................................. 14 1.4.2.3 Les cytokines ..................................................................................................................... 14 1.5 Les médiateurs de l’inflammation ....................................................................................................... 15 1.5.1 Protéine C réactive (CRP) ............................................................................................................ 15 1.5.2 Fibrinogène ................................................................................................................................... 15 1.5.3 Procalcitonine ............................................................................................................................... 16 1.5.4 Les immunoglobulines ................................................................................................................. 16 2. La Vitesse de sédimentation.................................................................................................................... 16 2.1 Définition ............................................................................................................................................. 16 2.2 Caractéristiques ................................................................................................................................... 17 2.3 Causes de variation de la vitesse de sédimentation ............................................................................. 17 2.4 Intérêt clinique ..................................................................................................................................... 18 PARTIE PRATIQUE 1. Objectifs.................................................................................................................................................... 20 2. Matériels et méthodes .............................................................................................................................. 20 2.1 Appareils utilisés ................................................................................................................................. 20 2.1.1 Ves-Matic Cube 30® .................................................................................................................... 21 2.1.1.1 Schéma général de l’appareil .............................................................................................. 21 2.1.1.2 Déroulement d’un cycle d’analyse .................................................................................... 22 2.1.1.3 Principe de lecture ............................................................................................................. 22 2.1.2 Monitor V20® .............................................................................................................................. 23 2.1.2.1 Schéma général de l’appareil .............................................................................................. 23 7 2.1.2.2 Etapes d’analyse ............................................................................................................... 23 2.1.2.3 Principe de lecture ............................................................................................................. 24 2.2 Contrôles et types d’échantillons ......................................................................................................... 24 2.2.1 Les contrôles ................................................................................................................................. 24 2.2.2 Sélection des échantillons............................................................................................................. 24 2.3 Techniques et dosages ........................................................................................................................ 25 2.3.1 Technique de Westergren ............................................................................................................. 25 2.3.2 Dosage de la protéine C réactive ................................................................................................. 25 2.3.3 Dosage du fibrinogène ................................................................................................................. 26 2.3.4 Dosage de la procalcitonine ......................................................................................................... 26 2.3.5 Dosage des immunoglobulines .................................................................................................... 26 2.3.6 Hémogramme .............................................................................................................................. 27 3. Validation ................................................................................................................................................. 27 3.1 Evaluation de la répétabilité ................................................................................................................ 27 3.2 Evaluation de la reproductibilité ........................................................................................................ 28 3.3 Evaluation de la stabilité de l’échantillon ........................................................................................... 28 3.4 Intervalle de référence ......................................................................................................................... 28 3.5 Interférences ........................................................................................................................................ 29 3.6 Evaluation de l’effet du volume de l’échantillon ................................................................................ 29 4. Comparaison statistique entre les techniques ....................................................................................... 29 4.1 Test de Bland Altman .......................................................................................................................... 30 5. Relation entre la vitesse de sédimentation et des marqueurs biologiques .......................................... 30 RESULTATS ET DISCUSSION Résultats 1. Validation .............................................................................................................................................. 32 1.1 Evaluation de la répétabilité ............................................................................................................ 32 1.2 Evaluation de la reproductibilité ..................................................................................................... 33 1.3 Evaluation de la stabilité de l’échantillon ........................................................................................ 33 1.4 Intervalle de référence ...................................................................................................................... 36 1.5 Interférences ..................................................................................................................................... 36 1.6 Evaluation de l’effet du volume de l’échantillon ............................................................................. 37 2. Comparaison statistique entre les techniques ................................................................................... 39 2.1 Comparaison entre la méthode de Westergren et le Monitor V20® ............................................... 39 2.2 Comparaison entre la méthode de Westergren et le Ves-Matic Cube30 ® .................................... 40 2.3 Comparaison entre le Ves-Matic Cube30 ® et le Monitor V20® ................................................... 41 3. Comparaison entre la vitesse de sédimentation et les marqueurs biologique ................................ 42 3.1 Hématocrite ..................................................................................................................................... 42 8 3.2 Fibrinogène ..................................................................................................................................... 42 3.3 Immunoglobuline G ......................................................................................................................... 43 3.4 Immunoglobuline A ........................................................................................................................ 43 3.5 Immunoglobuline M........................................................................................................................ 44 3.6 CRP .................................................................................................................................................. 44 3.7 Procalcitonine .................................................................................................................................. 45 3.8 Leucocytes ....................................................................................................................................... 45 Discussion 1. Validation ............................................................................................................................................. 47 1.1 Evaluation de la répétabilité ............................................................................................................ 47 1.2 Evaluation de la reproductibilité ..................................................................................................... 47 1.3 Evaluation de la stabilité de l’échantillon ........................................................................................ 47 1.4 Intervalle de référence ...................................................................................................................... 47 1.5 Interférences ..................................................................................................................................... 48 1.6 Evaluation de l’effet du volume de l’échantillon ............................................................................. 48 2. Comparaison statistique entre les techniques ................................................................................... 48 2.1 Avis sur les automates ..................................................................................................................... 48 3. Relation entre la vitesse de sédimentation et des marqueurs biologiques ...................................... 49 CONCLUSION ............................................................................................................................................ 51 BIBLIOGRAPHIE ANNEXES Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64606 ÉTUDE DE LA VITESSE DE SÉDIMENTATION : COMPARAISON DES TECHNIQUES DE WESTERGREN, DU MONITOR V20® ET DU VES-MATIC CUBE 30®. RELATION DE LA VITESSE DE SÉDIMENTATION AVEC D’AUTRES MARQUEURS BIOLOGIQUES. [TFE / Mémoire] / Cédric LORENT, Auteur ; Jacques Mairesse, Directeur de la recherche ; Louise-Marie Vincent, Directeur de la recherche . - 2015. Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale  sédimentation : vitesse Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Résumé L’objectif principal de ce travail de fin d’étude, réalisé au laboratoire de biologie médicale de la clinique Saint-Pierre à Ottignies, était de comparer les performances d’un nouvel automate mesurant la vitesse de sédimentation, le Ves-Matic Cube 30®, avec l’automate utilisé par la clinique, le Monitor V20®, et la méthode de Westergren (méthode de référence). Dans le but de le valider pour prouver son utilisation dans la routine de l’hôpital. La vitesse de sédimentation est un test non spécifique utile dans l’évaluation des syndromes inflammatoires aigus et chroniques. C’est un test influencé par de nombreux paramètres biologiques et qui nécessite la relation avec d’autres marqueurs biologiques pour déterminer un état inflammatoire. Le second objectif était, dans un premier temps, d’évaluer l’influence de certains de ces paramètres (hématocrite, fibrinogène et immunoglobulines) sur la vitesse de sédimentation. Et dans un second temps, d’établir si une relation avec certains marqueurs biologiques (protéine C réactive, procalcitonine et leucocytes) existe. Ce travail de fin d’étude explique la démarche et la conclusion des différents objectifs. Note de contenu : INTRODUCTION ......................................................................................................................................... 9 PARTIE THEORIQUE 1. Réaction inflammatoire ........................................................................................................................... 11 1.1 Définition ............................................................................................................................................. 11 1.2 Les types d’inflammation .................................................................................................................... 11 1.3 Les cellules impliquées dans l’inflammation ...................................................................................... 12 1.3.1 Les cellules de la circulation sanguine ......................................................................................... 12 1.3.2 Les cellules endothéliales ............................................................................................................. 13 1.4 Les médiateurs de l’inflammation ....................................................................................................... 13 1.4.1 Les systèmes d’activation plasmatiques ....................................................................................... 14 1.4.2 Les médiateurs cellulaires ........................................................................................................... 14 1.4.2.1 L’histamine ........................................................................................................................ 14 1.4.2.2 Les radicaux libres ............................................................................................................. 14 1.4.2.3 Les cytokines ..................................................................................................................... 14 1.5 Les médiateurs de l’inflammation ....................................................................................................... 15 1.5.1 Protéine C réactive (CRP) ............................................................................................................ 15 1.5.2 Fibrinogène ................................................................................................................................... 15 1.5.3 Procalcitonine ............................................................................................................................... 16 1.5.4 Les immunoglobulines ................................................................................................................. 16 2. La Vitesse de sédimentation.................................................................................................................... 16 2.1 Définition ............................................................................................................................................. 16 2.2 Caractéristiques ................................................................................................................................... 17 2.3 Causes de variation de la vitesse de sédimentation ............................................................................. 17 2.4 Intérêt clinique ..................................................................................................................................... 18 PARTIE PRATIQUE 1. Objectifs.................................................................................................................................................... 20 2. Matériels et méthodes .............................................................................................................................. 20 2.1 Appareils utilisés ................................................................................................................................. 20 2.1.1 Ves-Matic Cube 30® .................................................................................................................... 21 2.1.1.1 Schéma général de l’appareil .............................................................................................. 21 2.1.1.2 Déroulement d’un cycle d’analyse .................................................................................... 22 2.1.1.3 Principe de lecture ............................................................................................................. 22 2.1.2 Monitor V20® .............................................................................................................................. 23 2.1.2.1 Schéma général de l’appareil .............................................................................................. 23 7 2.1.2.2 Etapes d’analyse ............................................................................................................... 23 2.1.2.3 Principe de lecture ............................................................................................................. 24 2.2 Contrôles et types d’échantillons ......................................................................................................... 24 2.2.1 Les contrôles ................................................................................................................................. 24 2.2.2 Sélection des échantillons............................................................................................................. 24 2.3 Techniques et dosages ........................................................................................................................ 25 2.3.1 Technique de Westergren ............................................................................................................. 25 2.3.2 Dosage de la protéine C réactive ................................................................................................. 25 2.3.3 Dosage du fibrinogène ................................................................................................................. 26 2.3.4 Dosage de la procalcitonine ......................................................................................................... 26 2.3.5 Dosage des immunoglobulines .................................................................................................... 26 2.3.6 Hémogramme .............................................................................................................................. 27 3. Validation ................................................................................................................................................. 27 3.1 Evaluation de la répétabilité ................................................................................................................ 27 3.2 Evaluation de la reproductibilité ........................................................................................................ 28 3.3 Evaluation de la stabilité de l’échantillon ........................................................................................... 28 3.4 Intervalle de référence ......................................................................................................................... 28 3.5 Interférences ........................................................................................................................................ 29 3.6 Evaluation de l’effet du volume de l’échantillon ................................................................................ 29 4. Comparaison statistique entre les techniques ....................................................................................... 29 4.1 Test de Bland Altman .......................................................................................................................... 30 5. Relation entre la vitesse de sédimentation et des marqueurs biologiques .......................................... 30 RESULTATS ET DISCUSSION Résultats 1. Validation .............................................................................................................................................. 32 1.1 Evaluation de la répétabilité ............................................................................................................ 32 1.2 Evaluation de la reproductibilité ..................................................................................................... 33 1.3 Evaluation de la stabilité de l’échantillon ........................................................................................ 33 1.4 Intervalle de référence ...................................................................................................................... 36 1.5 Interférences ..................................................................................................................................... 36 1.6 Evaluation de l’effet du volume de l’échantillon ............................................................................. 37 2. Comparaison statistique entre les techniques ................................................................................... 39 2.1 Comparaison entre la méthode de Westergren et le Monitor V20® ............................................... 39 2.2 Comparaison entre la méthode de Westergren et le Ves-Matic Cube30 ® .................................... 40 2.3 Comparaison entre le Ves-Matic Cube30 ® et le Monitor V20® ................................................... 41 3. Comparaison entre la vitesse de sédimentation et les marqueurs biologique ................................ 42 3.1 Hématocrite ..................................................................................................................................... 42 8 3.2 Fibrinogène ..................................................................................................................................... 42 3.3 Immunoglobuline G ......................................................................................................................... 43 3.4 Immunoglobuline A ........................................................................................................................ 43 3.5 Immunoglobuline M........................................................................................................................ 44 3.6 CRP .................................................................................................................................................. 44 3.7 Procalcitonine .................................................................................................................................. 45 3.8 Leucocytes ....................................................................................................................................... 45 Discussion 1. Validation ............................................................................................................................................. 47 1.1 Evaluation de la répétabilité ............................................................................................................ 47 1.2 Evaluation de la reproductibilité ..................................................................................................... 47 1.3 Evaluation de la stabilité de l’échantillon ........................................................................................ 47 1.4 Intervalle de référence ...................................................................................................................... 47 1.5 Interférences ..................................................................................................................................... 48 1.6 Evaluation de l’effet du volume de l’échantillon ............................................................................. 48 2. Comparaison statistique entre les techniques ................................................................................... 48 2.1 Avis sur les automates ..................................................................................................................... 48 3. Relation entre la vitesse de sédimentation et des marqueurs biologiques ...................................... 49 CONCLUSION ............................................................................................................................................ 51 BIBLIOGRAPHIE ANNEXES Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64606

Exemplaires

Cote	Support	Localisation	Section	Disponibilité
aucun exemplaire

Immuno-soustraction (Capillarys 3 Tera® Sebia) versus immunofixation (Hydrasys 2 Scan Focusing® Sebia) : Comparaison de deux méthodes qualitatives d’immunotypage sérique de gammapathies monoclonales mises en évidence par électrophorèse des protéines / Adrien Mabille

Permalink

IMPACT DU TRAITEMENT DE SÉCURISATION SUR LA BIOACTIVITÉ D’ALLOGREFFES DE TISSUS HUMAINS / Daniel MBOME BIDIAS

Permalink

Mise au point immunohistochimique de l’anticorps anti PD-L1 / Antoine Higuet

Permalink

Recherche de la fonction de la maspardine, une protéine déficiente dans la paraplégie spastique 21 / Anaïs Dupuis

Permalink

Validation d’une méthode de dosage antigénique du SARS-CoV-2 dans le sérum / Nathan Hanot

Permalink

---

1 (1 - 10 / 10)