Centre de Documentation Campus Montignies
Horaires :
Lundi : 8h-18h30
Mardi : 8h-17h30
Mercredi 9h-16h30
Jeudi : 8h-18h30
Vendredi : 8h30-12h30 et 13h-14h30
Attention,
Votre centre de documentation sera fermé ce lundi 26 août.
Également, ce mercredi 28 août il sera fermé de 12 à 13h.
Enfin, ce jeudi 29 août il ouvrira à 14h45.
Lundi : 8h-18h30
Mardi : 8h-17h30
Mercredi 9h-16h30
Jeudi : 8h-18h30
Vendredi : 8h30-12h30 et 13h-14h30
Attention,
Votre centre de documentation sera fermé ce lundi 26 août.
Également, ce mercredi 28 août il sera fermé de 12 à 13h.
Enfin, ce jeudi 29 août il ouvrira à 14h45.
Bienvenue sur le catalogue du centre de documentation du campus de Montignies.
Détail de l'éditeur
Helha. Paramédical - Biologie médicale
localisé à :
Montignies-sur-Sambre
|
Documents disponibles chez cet éditeur
Ajouter le résultat dans votre panier Faire une suggestion Affiner la recherche
Identification d’ARN circulaires encodés par le virus de la maladie de Marek / Céline Istasse
Titre : Identification d’ARN circulaires encodés par le virus de la maladie de Marek Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Céline Istasse, Auteur ; Gaël Gilbert, Directeur de la recherche Editeur : Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale Année de publication : 2019 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale NARILI NAmur Research Institute for LIfe Sciences Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Au début des années 90, des chercheurs ont mis en évidence une nouvelle forme d’ARN. L’ARN en question était caractérisé par une suite d’exons dont l’ordre ne correspondait pas à celui des exons de l’ADN à partir duquel la transcription a été réalisée. L’hypothèse qui en est ressortie est qu’il s’agissait de produits aberrants issus du mécanisme d’épissage (Nigro et al. 1991). Plus tard, il s’avèrera que ces aberrations de l’épissage sont en réalité des ARN circulaires. L’idée qu’il s’agisse d’une forme d’ARN à part entière s’est renforcée par la mise en évidence d’une expression qui leur est propre, différente de celle de leur homologue linéaire. Depuis, de nombreuses études se sont articulées autour du sujet afin de comprendre leur implication au niveau de la régulation transcriptionnelle, post-transcriptionnelle et traductionnelle. Il a été montré qu’un désordre de ces derniers étaient liés à de nombreuses pathologies connues. C’est pourquoi, un grand nombre de projets concernant les ARN circulaires des cellules eucaryotes ont récemment vu le jour en vue de trouver de potentiels biomarqueurs propres à certaines situations pathologiques.
Depuis peu, il semblerait que ces transcrits circulaires soient aussi présent chez les virus. Ainsi, les virus semblent capables d’interférer avec les ARNcirc de la cellule hôte et également d’en produire. A ce jour, cinq virus font l’objet de multiples études concernant les ARN circulaires. Ce travail tente de mettre en évidence la production de ces derniers par l’herpès virus de la maladie de Marek. Pour ce faire, un protocole est mis au point dans le but de concentrer les ARN circulaires au sein de l’échantillon, de les amplifier et finalement de les caractériser. Au terme de ce travail, plusieurs transcrits circulaires ont été mis en évidence. Les ARN circulaires semblent concentrés autour de l’origine de réplication lytique. Ce qui suggère qu’ils pourraient jouer un rôle à ce niveau. De plus, un transcrit apparaît plus exprimé que les autres et pourrait être impliqué de manière non-négligeable dans l’oncogenèse du virus de la maladie de Marek. La base de ce projet étant établie, de nombreuses perspectives de recherche peuvent être envisagées.Note de contenu : Remerciements : ............................................................................................................................................. 3
Table des matières : ........................................................................................................................................ 4
Description du lieu de stage : .......................................................................................................................... 6
Introduction :................................................................................................................................................... 7
Première partie : concepts théoriques ............................................................................................................ 9
1 Les ARN circulaires : ............................................................................................................................ 9
1.1 Qu’est-ce qu’un ARN circulaire ? ................................................................................................ 9
1.2 Les ARNcirc dans les domaines du vivant : ............................................................................... 10
1.2.1 Cellules eucaryotes animales : ............................................................................................. 12
1.3 Biogenèse des ARN circulaires :................................................................................................ 12
1.3.1 Transcription : ...................................................................................................................... 13
1.3.2 L’épissage (ou splicing) : ....................................................................................................... 13
1.4 Régulation de la synthèse des ARN circulaires : ....................................................................... 23
1.4.1 Séquences répétées inversées (inverted repeats) (IRs) : ..................................................... 23
1.4.2 Séquences cis et facteurs trans : .......................................................................................... 24
1.4.3 Facteurs splicéosomaux centraux : ...................................................................................... 24
1.5 Fonctions des ARN circulaires :................................................................................................. 25
1.5.1 Rôle des ARNcirc dans la régulation transcriptionnelle : ..................................................... 26
1.5.2 Eponge à microARN : ............................................................................................................ 26
1.5.3 Interaction des ARN circulaires avec les protéines : ............................................................ 26
1.5.4 Les ARN circulaires traduits : ................................................................................................ 27
2 ARN circulaires et virus : .................................................................................................................... 27
3 Le virus de la maladie de Marek : ...................................................................................................... 29
3.1 Cycle infectieux du virus de la maladie de Marek : .................................................................. 29
3.2 Carte génétique de GaHV-2 : .................................................................................................... 30
Deuxième partie : Objectifs et stratégie ....................................................................................................... 33
Troisième partie : matériels et méthodes ..................................................................................................... 35
1 Lignées cellulaires et souches virales : .............................................................................................. 35
2 Extraction d’ARN ............................................................................................................................... 35
3 Traitement DNase ............................................................................................................................. 36
4 Purification par phénol-chloroforme-alcool isoamylique : ............................................................... 36
5 Traitement RNase R ........................................................................................................................... 37
6 Rétrotranscription des ARNcirc : ....................................................................................................... 37
7 PCR avec amorces divergentes : ........................................................................................................ 38
Table des matières :
8 Electrophorèse sur gel d’agarose : .................................................................................................... 39
9 Purification ........................................................................................................................................ 39
10 Ligation .......................................................................................................................................... 40
11 Transformation de bactéries et mise en culture ........................................................................... 41
12 Criblage des colonies contenant le plasmide recombinant : ........................................................ 42
13 Séquençage et analyse des transcrits. .......................................................................................... 42
Quatrième partie : résultats et discussion .................................................................................................... 44
1 Analyse de la carte transcriptionnelle de la région IRL/TRL et choix des amorces aptes à identifier des ARNcirc :.............................................................................................................................................. 44
2 Amplification des potentiels ARN circulaires produits dans la région IRL/TRL de GaHV- 2 : ............. 46
3 Description des séquences des transcrits circulaires générés par la région IRL/TRL de GaHV-2 : ..... 49
4 Discussion générale : ......................................................................................................................... 54
Cinquième partie : conclusion et perspectives ............................................................................................. 57
Liste des figures : ........................................................................................................................................... 59
Liste des abréviations : .................................................................................................................................. 60
Bibliographie ................................................................................................................................................. 62Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=79991 Identification d’ARN circulaires encodés par le virus de la maladie de Marek [TFE / Mémoire] / Céline Istasse, Auteur ; Gaël Gilbert, Directeur de la recherche . - Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale, 2019.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : biologie médicale NARILI NAmur Research Institute for LIfe Sciences Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Au début des années 90, des chercheurs ont mis en évidence une nouvelle forme d’ARN. L’ARN en question était caractérisé par une suite d’exons dont l’ordre ne correspondait pas à celui des exons de l’ADN à partir duquel la transcription a été réalisée. L’hypothèse qui en est ressortie est qu’il s’agissait de produits aberrants issus du mécanisme d’épissage (Nigro et al. 1991). Plus tard, il s’avèrera que ces aberrations de l’épissage sont en réalité des ARN circulaires. L’idée qu’il s’agisse d’une forme d’ARN à part entière s’est renforcée par la mise en évidence d’une expression qui leur est propre, différente de celle de leur homologue linéaire. Depuis, de nombreuses études se sont articulées autour du sujet afin de comprendre leur implication au niveau de la régulation transcriptionnelle, post-transcriptionnelle et traductionnelle. Il a été montré qu’un désordre de ces derniers étaient liés à de nombreuses pathologies connues. C’est pourquoi, un grand nombre de projets concernant les ARN circulaires des cellules eucaryotes ont récemment vu le jour en vue de trouver de potentiels biomarqueurs propres à certaines situations pathologiques.
Depuis peu, il semblerait que ces transcrits circulaires soient aussi présent chez les virus. Ainsi, les virus semblent capables d’interférer avec les ARNcirc de la cellule hôte et également d’en produire. A ce jour, cinq virus font l’objet de multiples études concernant les ARN circulaires. Ce travail tente de mettre en évidence la production de ces derniers par l’herpès virus de la maladie de Marek. Pour ce faire, un protocole est mis au point dans le but de concentrer les ARN circulaires au sein de l’échantillon, de les amplifier et finalement de les caractériser. Au terme de ce travail, plusieurs transcrits circulaires ont été mis en évidence. Les ARN circulaires semblent concentrés autour de l’origine de réplication lytique. Ce qui suggère qu’ils pourraient jouer un rôle à ce niveau. De plus, un transcrit apparaît plus exprimé que les autres et pourrait être impliqué de manière non-négligeable dans l’oncogenèse du virus de la maladie de Marek. La base de ce projet étant établie, de nombreuses perspectives de recherche peuvent être envisagées.Note de contenu : Remerciements : ............................................................................................................................................. 3
Table des matières : ........................................................................................................................................ 4
Description du lieu de stage : .......................................................................................................................... 6
Introduction :................................................................................................................................................... 7
Première partie : concepts théoriques ............................................................................................................ 9
1 Les ARN circulaires : ............................................................................................................................ 9
1.1 Qu’est-ce qu’un ARN circulaire ? ................................................................................................ 9
1.2 Les ARNcirc dans les domaines du vivant : ............................................................................... 10
1.2.1 Cellules eucaryotes animales : ............................................................................................. 12
1.3 Biogenèse des ARN circulaires :................................................................................................ 12
1.3.1 Transcription : ...................................................................................................................... 13
1.3.2 L’épissage (ou splicing) : ....................................................................................................... 13
1.4 Régulation de la synthèse des ARN circulaires : ....................................................................... 23
1.4.1 Séquences répétées inversées (inverted repeats) (IRs) : ..................................................... 23
1.4.2 Séquences cis et facteurs trans : .......................................................................................... 24
1.4.3 Facteurs splicéosomaux centraux : ...................................................................................... 24
1.5 Fonctions des ARN circulaires :................................................................................................. 25
1.5.1 Rôle des ARNcirc dans la régulation transcriptionnelle : ..................................................... 26
1.5.2 Eponge à microARN : ............................................................................................................ 26
1.5.3 Interaction des ARN circulaires avec les protéines : ............................................................ 26
1.5.4 Les ARN circulaires traduits : ................................................................................................ 27
2 ARN circulaires et virus : .................................................................................................................... 27
3 Le virus de la maladie de Marek : ...................................................................................................... 29
3.1 Cycle infectieux du virus de la maladie de Marek : .................................................................. 29
3.2 Carte génétique de GaHV-2 : .................................................................................................... 30
Deuxième partie : Objectifs et stratégie ....................................................................................................... 33
Troisième partie : matériels et méthodes ..................................................................................................... 35
1 Lignées cellulaires et souches virales : .............................................................................................. 35
2 Extraction d’ARN ............................................................................................................................... 35
3 Traitement DNase ............................................................................................................................. 36
4 Purification par phénol-chloroforme-alcool isoamylique : ............................................................... 36
5 Traitement RNase R ........................................................................................................................... 37
6 Rétrotranscription des ARNcirc : ....................................................................................................... 37
7 PCR avec amorces divergentes : ........................................................................................................ 38
Table des matières :
8 Electrophorèse sur gel d’agarose : .................................................................................................... 39
9 Purification ........................................................................................................................................ 39
10 Ligation .......................................................................................................................................... 40
11 Transformation de bactéries et mise en culture ........................................................................... 41
12 Criblage des colonies contenant le plasmide recombinant : ........................................................ 42
13 Séquençage et analyse des transcrits. .......................................................................................... 42
Quatrième partie : résultats et discussion .................................................................................................... 44
1 Analyse de la carte transcriptionnelle de la région IRL/TRL et choix des amorces aptes à identifier des ARNcirc :.............................................................................................................................................. 44
2 Amplification des potentiels ARN circulaires produits dans la région IRL/TRL de GaHV- 2 : ............. 46
3 Description des séquences des transcrits circulaires générés par la région IRL/TRL de GaHV-2 : ..... 49
4 Discussion générale : ......................................................................................................................... 54
Cinquième partie : conclusion et perspectives ............................................................................................. 57
Liste des figures : ........................................................................................................................................... 59
Liste des abréviations : .................................................................................................................................. 60
Bibliographie ................................................................................................................................................. 62Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=79991 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Identification de germes dans les hémocultures positives par le Maldi-Tof : comparaison du kit Sepsityper de Bruker par rapport à un protocole « maison » / Tennessee Cocheteux
Titre : Identification de germes dans les hémocultures positives par le Maldi-Tof : comparaison du kit Sepsityper de Bruker par rapport à un protocole « maison » Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Tennessee Cocheteux, Auteur ; Nicolas Kesteman, Directeur de la recherche Editeur : Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale Année de publication : 2019 Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale Jolimont Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : La présence de bactéries dans le sang (bactériémie) peut conduire à des états critiques pour le patient. Il est dès lors important d’analyser le plus rapidement possible les échantillons afin d’ajuster au mieux le traitement. En effet, les techniques actuelles ne permettent de répondre l’identification qu’après 24h et l’antibiogramme après 48h. Ces dernières années, avec l’arrivée dans les laboratoires de nouvelles techniques telles que la spectrométrie de masse (MALDI-TOF) de nouveau protocoles ont été développés.
Dans ce travail, nous proposons de comparer 2 méthodes d’identification : la méthode « maison » et la méthode avec le kit Sepsityper de chez Bruker. Ces techniques permettent d’identifier les organismes le même jour de leur positivité au niveau du BACTEC FX et ainsi rendre un antibiogramme le lendemain (en 24h).
Note de contenu : Table des matières
Présentation du lieu de stage
Introduction générale 6
I. Problématique 6
Partie théorique 9
II. Contexte général 9
i. Bactériémie des états infectieux 9
ii. Bactéries responsables de bactériémies 10
iii. Epidémiologie 13
iv. Physiopathologie 14
v. Antibiogramme 19
vi. Hémocultures 21
vii. MALDI-TOF 25
III. Objectifs 29
Partie pratique 30
I. Matériel et méthodes 30
i. Méthode classique/de routine 30
ii. Méthode « maison » 31
iii. Kit Sepsityper 32
iv. Antibiogramme 33
II. Résultats et discussion 36
Conclusion générale 46
Abréviations 48
Bibliographie 49
Annexes
I. Mode opératoire galeries d’antibiotiques (BD Phoenix)
II. Tableau de résultats
III. Antibiogrammes
Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=79986 Identification de germes dans les hémocultures positives par le Maldi-Tof : comparaison du kit Sepsityper de Bruker par rapport à un protocole « maison » [TFE / Mémoire] / Tennessee Cocheteux, Auteur ; Nicolas Kesteman, Directeur de la recherche . - Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale, 2019.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : biologie médicale Jolimont Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : La présence de bactéries dans le sang (bactériémie) peut conduire à des états critiques pour le patient. Il est dès lors important d’analyser le plus rapidement possible les échantillons afin d’ajuster au mieux le traitement. En effet, les techniques actuelles ne permettent de répondre l’identification qu’après 24h et l’antibiogramme après 48h. Ces dernières années, avec l’arrivée dans les laboratoires de nouvelles techniques telles que la spectrométrie de masse (MALDI-TOF) de nouveau protocoles ont été développés.
Dans ce travail, nous proposons de comparer 2 méthodes d’identification : la méthode « maison » et la méthode avec le kit Sepsityper de chez Bruker. Ces techniques permettent d’identifier les organismes le même jour de leur positivité au niveau du BACTEC FX et ainsi rendre un antibiogramme le lendemain (en 24h).
Note de contenu : Table des matières
Présentation du lieu de stage
Introduction générale 6
I. Problématique 6
Partie théorique 9
II. Contexte général 9
i. Bactériémie des états infectieux 9
ii. Bactéries responsables de bactériémies 10
iii. Epidémiologie 13
iv. Physiopathologie 14
v. Antibiogramme 19
vi. Hémocultures 21
vii. MALDI-TOF 25
III. Objectifs 29
Partie pratique 30
I. Matériel et méthodes 30
i. Méthode classique/de routine 30
ii. Méthode « maison » 31
iii. Kit Sepsityper 32
iv. Antibiogramme 33
II. Résultats et discussion 36
Conclusion générale 46
Abréviations 48
Bibliographie 49
Annexes
I. Mode opératoire galeries d’antibiotiques (BD Phoenix)
II. Tableau de résultats
III. Antibiogrammes
Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=79986 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire L’implémentation du dosage de la CDT par l’électrophorèse capillaire / Samia Oulhaj
Titre : L’implémentation du dosage de la CDT par l’électrophorèse capillaire Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Samia Oulhaj, Auteur ; Jérôme Cornil, Directeur de la recherche Editeur : Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale Année de publication : 2022 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : CDT IFCC transferrine standardisation implémentation électrophorèse capillaire Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : L’intérêt principal de ce travail de fin d’étude est l’implémentation du dosage de la CDT par électrophorèse capillaire dans le laboratoire su CHRSM du site de la Sambre. La CDT ( carbohydrate-deficient transferrine) est un marqueur d’éthylisme chronique, avec une meilleur sensibilité et spécificité que les autre marqueurs biologiques historiques citée dans ce travail. La consommation d’alcool altère la métabolisation de la transferrine, en altérant des enzymes hépatique, le pourcentage en CDT se voit alors augmenté. Le dosage de la CDT est prescrit pour détecter une consommation précoce d’un éthylisme chronique pour prévenir des complication hépatique par exemple, le suivi de sevrage à l’alcool, dans la médecine de travail, comme pour l’obtention d’un certificat de pilote d’avion, ou encore la réattribution ou suspension du permis de conduite. La standardisation mis en place par l’IFCC, ne contribue pas qu’à l’étalonnage du dosage, mais aussi à la redéfinition de CDT, seul la disialotransferrine sera dosée, l’asialotransferrine ne sera plus compris dans la valeurs de CDT due à son instabilité. La standardisation du dosage de la CDT montre d’excellent résultats de répétabilité et de reproductibilité par rapport aux résultats du dosage non calibrée. Les limites de dosage manipulations ont mis en évidence l’interférence par le pics monoclonaux ou polyclonaux rencontrés lors de électrophorèses des protéines sériques. Note de contenu : Présentation du lieu de stage ............................................................................................. 4
Introduction générale......................................................................................................... 5
Contexte général ................................................................................................................ 6
1. Chapitre 1 : La CDT .............................................................................................................. 6
1.1. Consommation d’alcool .................................................................................................................. 6
1.2. L’alcool ............................................................................................................................................ 7
1.3. Marqueurs biologiques d’éthylisme ............................................................................................... 8
1.4. La Transferrine et ses isoformes ................................................................................................... 10
1.5. L’alcool et la transferrine .............................................................................................................. 12
1.6. La CDT ........................................................................................................................................... 13
2. Chapitre 2 : L’électrophorèse capillaire ............................................................................. 25
2.1. Principe ......................................................................................................................................... 25
2.2. Composition .................................................................................................................................. 26
2.3. Exemples de dosage ...................................................................................................................... 27
Objectifs et stratégie ........................................................................................................ 31
Matériels et méthodes ..................................................................................................... 32
1. Réactifs ............................................................................................................................. 32
1.1. Kit capillarys® CDT ......................................................................................................................... 32
1.2. Autres réactifs, contrôles et calibreur........................................................................................... 33
2. Matériels et appareils ....................................................................................................... 33
2.1. Matériels ....................................................................................................................................... 33
2.2. Appareil ......................................................................................................................................... 34
3. Échantillons ...................................................................................................................... 35
4. Implémentation du dosage ............................................................................................... 35
5. Calibration ........................................................................................................................ 36
6. Contrôle normal et pathologique ...................................................................................... 37
7. La fidélité .......................................................................................................................... 37
8. La répétabilité ................................................................................................................... 38
9. La reproductibilité ............................................................................................................. 38
10. La stabilité .................................................................................................................... 38
11. Interférences du dosage ................................................................................................ 39
11.1. L’hémolyse .................................................................................................................................... 39
11.2. Variantes génétiques de la transferrine ........................................................................................ 39
11.3. Lésions hépatiques (maladie grave en phase terminale). ............................................................. 39
11.4. Les composants monoclonaux ou fraction polyclonale élevée ..................................................... 40
Résultats .......................................................................................................................... 41
1. Calibration ........................................................................................................................ 41
1.1. Calibration à l’installation ............................................................................................................. 41
1.2. Calibration changement de lot...................................................................................................... 41
3
2. Évaluation de la répétabilité ............................................................................................. 42
2.1. Répétabilité .................................................................................................................. 42
2.2. Répétabilité du POOL bas ............................................................................................................. 43
2.3. Répétabilité du POOL intermédiaire ............................................................................................ 44
2.4. Répétabilité du POOL intermédiaire ............................................................................................ 45
2.5. Répétabilité du POOL haut ........................................................................................................... 46
2.6. Répétabilité du POOL haut ........................................................................................................... 47
3. Évaluation de la reproductibilité ....................................................................................... 48
3.1. Reproductibilité « Contrôle normal » ........................................................................................... 48
3.2. Reproductibilité « Contrôle pathologique » ................................................................................. 49
3.3. Reproductibilité « contrôle normal » inter lot .............................................................................. 50
4. Stabilité du sérum pour le dosage de la CDT ...................................................................... 51
5. Interférences .................................................................................................................... 54
5.1. Variants transferrines ................................................................................................................... 54
5.2. L’hémolyse .................................................................................................................................... 55
5.3. Analyse d’interférences apporté par les blocs beta- gamma des électrogrammes des protéines
sérique 56
5.4. Analyse d’interférences apporté par des pics monoclonaux ou polyclonaux des électrogrammes
des protéines sérique .................................................................................................................................. 57
6. Comparaison des résultats avec le laboratoire sous-traitant. ............................................ 60
7. Résultats d’échantillon du laboratoire partenaire ............................................................. 62
8. Exemples de dosage de CDT de patients en urgence .......................................................... 62
9. Suivi de patient éthylique lors d’une hospitalisation ......................................................... 63
Discussion ........................................................................................................................ 64
1. La calibration (Point 1 page 40) ......................................................................................... 64
2. Évaluation de la répétabilité et la reproductivité de la CDT et CDT-IFCC (Point 2 et 3 pages
41-46 et 47-49) .......................................................................................................................... 65
4.1. Variants transferrine (Point 5.1 pages 53) .................................................................................... 67
4.2. L’hémolyse. (Point 5.2 pages 54) .................................................................................................. 67
4.3. Analyse d’interférences apporté par des blocs beta-gamma des électrogrammes des protéines
sérique (Point 5.3 page 55) ......................................................................................................................... 69
5. Comparaison des résultats avec le laboratoire sous-traitant. (Point 6 pages 59-60) ........... 70
6. Comparaison des résultats avec le laboratoire partenaire. (Point 7 des résultats à la page
61) 71
7. Dosage de la CDT de patients en urgences. (Point 8 des résultats à la page 61) ................. 71
8. Suivi de patient éthylique lors d’une hospitalisation (Point 9 des résultats de la page 62) . 71
Conclusion........................................................................................................................ 73
Liste des figures ............................................................................................................... 74
Liste des tables ................................................................................................................. 76
Bibliographie ................................................................................................................... 77
Annexes ........................................................................................................................... 80
Résumé ............................................................................................................................ 83Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=105748 L’implémentation du dosage de la CDT par l’électrophorèse capillaire [TFE / Mémoire] / Samia Oulhaj, Auteur ; Jérôme Cornil, Directeur de la recherche . - Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale, 2022.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur
Langues : Français (fre)
Mots-clés : CDT IFCC transferrine standardisation implémentation électrophorèse capillaire Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : L’intérêt principal de ce travail de fin d’étude est l’implémentation du dosage de la CDT par électrophorèse capillaire dans le laboratoire su CHRSM du site de la Sambre. La CDT ( carbohydrate-deficient transferrine) est un marqueur d’éthylisme chronique, avec une meilleur sensibilité et spécificité que les autre marqueurs biologiques historiques citée dans ce travail. La consommation d’alcool altère la métabolisation de la transferrine, en altérant des enzymes hépatique, le pourcentage en CDT se voit alors augmenté. Le dosage de la CDT est prescrit pour détecter une consommation précoce d’un éthylisme chronique pour prévenir des complication hépatique par exemple, le suivi de sevrage à l’alcool, dans la médecine de travail, comme pour l’obtention d’un certificat de pilote d’avion, ou encore la réattribution ou suspension du permis de conduite. La standardisation mis en place par l’IFCC, ne contribue pas qu’à l’étalonnage du dosage, mais aussi à la redéfinition de CDT, seul la disialotransferrine sera dosée, l’asialotransferrine ne sera plus compris dans la valeurs de CDT due à son instabilité. La standardisation du dosage de la CDT montre d’excellent résultats de répétabilité et de reproductibilité par rapport aux résultats du dosage non calibrée. Les limites de dosage manipulations ont mis en évidence l’interférence par le pics monoclonaux ou polyclonaux rencontrés lors de électrophorèses des protéines sériques. Note de contenu : Présentation du lieu de stage ............................................................................................. 4
Introduction générale......................................................................................................... 5
Contexte général ................................................................................................................ 6
1. Chapitre 1 : La CDT .............................................................................................................. 6
1.1. Consommation d’alcool .................................................................................................................. 6
1.2. L’alcool ............................................................................................................................................ 7
1.3. Marqueurs biologiques d’éthylisme ............................................................................................... 8
1.4. La Transferrine et ses isoformes ................................................................................................... 10
1.5. L’alcool et la transferrine .............................................................................................................. 12
1.6. La CDT ........................................................................................................................................... 13
2. Chapitre 2 : L’électrophorèse capillaire ............................................................................. 25
2.1. Principe ......................................................................................................................................... 25
2.2. Composition .................................................................................................................................. 26
2.3. Exemples de dosage ...................................................................................................................... 27
Objectifs et stratégie ........................................................................................................ 31
Matériels et méthodes ..................................................................................................... 32
1. Réactifs ............................................................................................................................. 32
1.1. Kit capillarys® CDT ......................................................................................................................... 32
1.2. Autres réactifs, contrôles et calibreur........................................................................................... 33
2. Matériels et appareils ....................................................................................................... 33
2.1. Matériels ....................................................................................................................................... 33
2.2. Appareil ......................................................................................................................................... 34
3. Échantillons ...................................................................................................................... 35
4. Implémentation du dosage ............................................................................................... 35
5. Calibration ........................................................................................................................ 36
6. Contrôle normal et pathologique ...................................................................................... 37
7. La fidélité .......................................................................................................................... 37
8. La répétabilité ................................................................................................................... 38
9. La reproductibilité ............................................................................................................. 38
10. La stabilité .................................................................................................................... 38
11. Interférences du dosage ................................................................................................ 39
11.1. L’hémolyse .................................................................................................................................... 39
11.2. Variantes génétiques de la transferrine ........................................................................................ 39
11.3. Lésions hépatiques (maladie grave en phase terminale). ............................................................. 39
11.4. Les composants monoclonaux ou fraction polyclonale élevée ..................................................... 40
Résultats .......................................................................................................................... 41
1. Calibration ........................................................................................................................ 41
1.1. Calibration à l’installation ............................................................................................................. 41
1.2. Calibration changement de lot...................................................................................................... 41
3
2. Évaluation de la répétabilité ............................................................................................. 42
2.1. Répétabilité .................................................................................................................. 42
2.2. Répétabilité du POOL bas ............................................................................................................. 43
2.3. Répétabilité du POOL intermédiaire ............................................................................................ 44
2.4. Répétabilité du POOL intermédiaire ............................................................................................ 45
2.5. Répétabilité du POOL haut ........................................................................................................... 46
2.6. Répétabilité du POOL haut ........................................................................................................... 47
3. Évaluation de la reproductibilité ....................................................................................... 48
3.1. Reproductibilité « Contrôle normal » ........................................................................................... 48
3.2. Reproductibilité « Contrôle pathologique » ................................................................................. 49
3.3. Reproductibilité « contrôle normal » inter lot .............................................................................. 50
4. Stabilité du sérum pour le dosage de la CDT ...................................................................... 51
5. Interférences .................................................................................................................... 54
5.1. Variants transferrines ................................................................................................................... 54
5.2. L’hémolyse .................................................................................................................................... 55
5.3. Analyse d’interférences apporté par les blocs beta- gamma des électrogrammes des protéines
sérique 56
5.4. Analyse d’interférences apporté par des pics monoclonaux ou polyclonaux des électrogrammes
des protéines sérique .................................................................................................................................. 57
6. Comparaison des résultats avec le laboratoire sous-traitant. ............................................ 60
7. Résultats d’échantillon du laboratoire partenaire ............................................................. 62
8. Exemples de dosage de CDT de patients en urgence .......................................................... 62
9. Suivi de patient éthylique lors d’une hospitalisation ......................................................... 63
Discussion ........................................................................................................................ 64
1. La calibration (Point 1 page 40) ......................................................................................... 64
2. Évaluation de la répétabilité et la reproductivité de la CDT et CDT-IFCC (Point 2 et 3 pages
41-46 et 47-49) .......................................................................................................................... 65
4.1. Variants transferrine (Point 5.1 pages 53) .................................................................................... 67
4.2. L’hémolyse. (Point 5.2 pages 54) .................................................................................................. 67
4.3. Analyse d’interférences apporté par des blocs beta-gamma des électrogrammes des protéines
sérique (Point 5.3 page 55) ......................................................................................................................... 69
5. Comparaison des résultats avec le laboratoire sous-traitant. (Point 6 pages 59-60) ........... 70
6. Comparaison des résultats avec le laboratoire partenaire. (Point 7 des résultats à la page
61) 71
7. Dosage de la CDT de patients en urgences. (Point 8 des résultats à la page 61) ................. 71
8. Suivi de patient éthylique lors d’une hospitalisation (Point 9 des résultats de la page 62) . 71
Conclusion........................................................................................................................ 73
Liste des figures ............................................................................................................... 74
Liste des tables ................................................................................................................. 76
Bibliographie ................................................................................................................... 77
Annexes ........................................................................................................................... 80
Résumé ............................................................................................................................ 83Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=105748 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Influence épitranscriptomique sur la distribution cellulaire des ARN messagers / Jérémy Blondeau
Titre : Influence épitranscriptomique sur la distribution cellulaire des ARN messagers Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Jérémy Blondeau, Auteur ; Françoise Motte, Directeur de la recherche Editeur : Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale Année de publication : 2019 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale ULB Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=79793 Influence épitranscriptomique sur la distribution cellulaire des ARN messagers [TFE / Mémoire] / Jérémy Blondeau, Auteur ; Françoise Motte, Directeur de la recherche . - Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale, 2019.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur
Langues : Français (fre)
Mots-clés : biologie médicale ULB Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=79793 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Influence du sulfate de dextran sur les tests anti-Xa et le test de génération de thrombine après neutralisation de l’héparine / Antoine De Liège
Titre : Influence du sulfate de dextran sur les tests anti-Xa et le test de génération de thrombine après neutralisation de l’héparine Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Antoine De Liège, Auteur ; Gaël Gilbert, Directeur de la recherche Editeur : Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale Année de publication : 2022 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Méthode : Les tests anti-Xa ont été réalisés sur le StaR Max 2 et les tests de génération de thrombine sur le ST Genesiia. Le plasma utilisé pour l’étude consiste en un pool de plasma pauvre en plaquettes issus de donneurs sains. Autrement dit, nous avons utilisé du NPP (normal npool plasma) ou « Cryocheck » congelés à -80°C jusqu’à leur utilisation.
La gamme de concentration en HNF utilisée pour l’étude était la suivante : 0 ; 0 ;1 ; 0,3 ; 0,5 ; 0,7 et 1 UI/ml.
Résultats : Lorsque du sulfate de dextran était ajouté, une surestimation des résultats par rapport aux valeurs en HNF spikées était constatée. De plus, plus la concentration en HNF était élevée, plus le plateau du sulfate de dextran était rapidement atteint contrairement au plancher qui a été atteint pour toutes les concentrations en HNF utilisée avec une concentration de 1μg/ml en sulfate de dextran. Ensuite, il a été déterminé que la concentration en sulfate de dextran qui annule l’effet d’un inhibiteur de l’héparine est de plus ou moins 320μg/ml pour du polybrène et 80μg/ml pour la protamine.
Pour finir, dans la deuxième phase, il a été observé que le sulfate de dextran avait une influence sur les tests de génération de thrombine.
Conclusion : Les résultats ont montré que le dextran permet de déplacer l’HNF liée par le PF4 ou d’autres protéines plasmatiques ce qui a pour effet d’augmenter l’activité anti-Xa apparente mais aussi que la quantité d’HNF déplacée de sa liaison aspécifique par le dextran est significative car elle est suffisante pour abolir la génération de thrombine en PPP.Note de contenu : Table des matières
Remerciements ........................................................................................................................... 4
Table des matières ...................................................................................................................... 5
Présentation du lieu de stage ...................................................................................................... 8
Introduction ................................................................................................................................ 9
Contexte théorique ................................................................................................................... 11
1. Physiologie de l’hémostase .......................................................................................... 12
2. L’héparine .................................................................................................................... 16
2.1. Les HNF ................................................................................................................. 16
2.2. HBPM .................................................................................................................... 17
2.3. Interférences de l’héparine ..................................................................................... 17
2.4. Surveillance de l’héparine...................................................................................... 17
2.5. Comment doser l’héparine ? .................................................................................. 17
2.6. Star max 2 .............................................................................................................. 18
2.6.1. Généralités ...................................................................................................... 18
2.6.2. Test chronométrique ....................................................................................... 19
2.6.3. Test chromogénique ....................................................................................... 19
2.6.4. Test immunologique ....................................................................................... 19
3. Le sulfate de dextran .................................................................................................... 20
3.1. Le sulfate de dextran : généralités ......................................................................... 20
3.2. Dans quel kit peut-on trouver du sulfate de dextran ? ........................................... 23
4. Test de génération de thrombine .................................................................................. 23
4.1. Méthode de mesure ................................................................................................ 25
4.2. Les inhibiteurs de l’héparine .................................................................................. 26
Partie Pratique .......................................................................................................................... 27
1. Hypothèse ..................................................................................................................... 27
2. Objectifs ....................................................................................................................... 27
3. Stratégie ........................................................................................................................ 27
3.1. Test anti-Xa ............................................................................................................ 27
3.1.1. Pré-étude ......................................................................................................... 27
3.1.2. Première phase ................................................................................................ 28
3.2. Test de génération de thrombine ............................................................................ 29
3.2.1. Seconde phase................................................................................................. 29
4. Matériel et réactifs ........................................................................................................ 30
4.1. Matériel .................................................................................................................. 30
4.2. Réactifs .................................................................................................................. 30
5. Méthodologie ............................................................................................................... 33
5.1. Préparation des différentes solutions ..................................................................... 33
5.2. Préparation des différents échantillons .................................................................. 37
5.2.1. Traitement pré-analytique des échantillons de plasma ................................... 38
5.3. Méthodologie pour les tests anti-Xa ...................................................................... 38
5.4. Méthodologie pour les tests de génération de thrombine ...................................... 39
Partie résultats .......................................................................................................................... 27
1. Résultats ....................................................................................................................... 40
1.1. Calibration.............................................................................................................. 40
1.1.1. StaR Max 2 ..................................................................................................... 40
1.1.2. ST Genesiia..................................................................................................... 40
1.2. Contrôles de qualités .............................................................................................. 41
1.2.1. StaR Max 2 ..................................................................................................... 41
1.2.2. ST Genesiia..................................................................................................... 42
1.3. Tests anti-Xa .......................................................................................................... 42
1.3.1. Pré-étude ......................................................................................................... 42
1.3.1.1. Vérification de la précision et de la reproductibilité du technicien avec du
NPP spiké avec de l’HNF......................................................................................... 42
1.3.1.2. Première approche sur l’effet du sulfate de dextran ................................. 44
1.3.1.3. Comparaison des résultats des tests anti-Xa avec et sans dextran ............ 44
1.3.1.4. Recherche du plateau haut et du plancher ................................................ 47
1.3.2. Première phase ................................................................................................ 49
1.3.2.1. Recherche de la concentration en sulfate de dextran qui annule l’effet d’un
inhibiteur de l’héparine ............................................................................................ 49
1.4. Test de génération de thrombine ............................................................................ 51
1.4.1. Seconde phase................................................................................................. 51
1.4.1.1. NPP seul ................................................................................................... 51
1.4.1.2. TGT: sulfate de dextran + eau PPI ........................................................... 52
1.4.1.3. TGT: protamine + eau PPI........................................................................ 53
1.4.1.4. TGT: Protamine + HNF + eau PPI ........................................................... 54
1.4.1.5. TGT: Protamine + HNF + 10μg/ml de sulfate de dextran ....................... 56
1.4.1.6. TGT: Protamine + HNF + 20μg/ml de sulfate de dextran ....................... 57
1.4.1.7. TGT: Polybrène + HNF + 10μg/ml de sulfate de dextran ........................ 58
1.4.1.8. TGT: Polybrène + HNF + 20μg/ml de sulfate de dextran ........................ 59
2. Discussion .................................................................................................................... 61
2.1. Tests anti-Xa .......................................................................................................... 61
2.2. Test de génération de thrombine ............................................................................ 63
Conclusion ................................................................................................................................ 65
Perspectives .............................................................................................................................. 65
Abréviations ............................................................................................................................. 66
Glossaire ................................................................................................................................... 67
Liste des figures et des tableaux ............................................................................................... 68
Figures ...................................................................................................................................... 68
Tableaux ................................................................................................................................... 69
Bibliographie ............................................................................................................................ 71
Table des matières des annexes ............................................................................................ 75
Annexes .................................................................................................................................... 76
Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=105751 Influence du sulfate de dextran sur les tests anti-Xa et le test de génération de thrombine après neutralisation de l’héparine [TFE / Mémoire] / Antoine De Liège, Auteur ; Gaël Gilbert, Directeur de la recherche . - Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale, 2022.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur
Langues : Français (fre)
Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Méthode : Les tests anti-Xa ont été réalisés sur le StaR Max 2 et les tests de génération de thrombine sur le ST Genesiia. Le plasma utilisé pour l’étude consiste en un pool de plasma pauvre en plaquettes issus de donneurs sains. Autrement dit, nous avons utilisé du NPP (normal npool plasma) ou « Cryocheck » congelés à -80°C jusqu’à leur utilisation.
La gamme de concentration en HNF utilisée pour l’étude était la suivante : 0 ; 0 ;1 ; 0,3 ; 0,5 ; 0,7 et 1 UI/ml.
Résultats : Lorsque du sulfate de dextran était ajouté, une surestimation des résultats par rapport aux valeurs en HNF spikées était constatée. De plus, plus la concentration en HNF était élevée, plus le plateau du sulfate de dextran était rapidement atteint contrairement au plancher qui a été atteint pour toutes les concentrations en HNF utilisée avec une concentration de 1μg/ml en sulfate de dextran. Ensuite, il a été déterminé que la concentration en sulfate de dextran qui annule l’effet d’un inhibiteur de l’héparine est de plus ou moins 320μg/ml pour du polybrène et 80μg/ml pour la protamine.
Pour finir, dans la deuxième phase, il a été observé que le sulfate de dextran avait une influence sur les tests de génération de thrombine.
Conclusion : Les résultats ont montré que le dextran permet de déplacer l’HNF liée par le PF4 ou d’autres protéines plasmatiques ce qui a pour effet d’augmenter l’activité anti-Xa apparente mais aussi que la quantité d’HNF déplacée de sa liaison aspécifique par le dextran est significative car elle est suffisante pour abolir la génération de thrombine en PPP.Note de contenu : Table des matières
Remerciements ........................................................................................................................... 4
Table des matières ...................................................................................................................... 5
Présentation du lieu de stage ...................................................................................................... 8
Introduction ................................................................................................................................ 9
Contexte théorique ................................................................................................................... 11
1. Physiologie de l’hémostase .......................................................................................... 12
2. L’héparine .................................................................................................................... 16
2.1. Les HNF ................................................................................................................. 16
2.2. HBPM .................................................................................................................... 17
2.3. Interférences de l’héparine ..................................................................................... 17
2.4. Surveillance de l’héparine...................................................................................... 17
2.5. Comment doser l’héparine ? .................................................................................. 17
2.6. Star max 2 .............................................................................................................. 18
2.6.1. Généralités ...................................................................................................... 18
2.6.2. Test chronométrique ....................................................................................... 19
2.6.3. Test chromogénique ....................................................................................... 19
2.6.4. Test immunologique ....................................................................................... 19
3. Le sulfate de dextran .................................................................................................... 20
3.1. Le sulfate de dextran : généralités ......................................................................... 20
3.2. Dans quel kit peut-on trouver du sulfate de dextran ? ........................................... 23
4. Test de génération de thrombine .................................................................................. 23
4.1. Méthode de mesure ................................................................................................ 25
4.2. Les inhibiteurs de l’héparine .................................................................................. 26
Partie Pratique .......................................................................................................................... 27
1. Hypothèse ..................................................................................................................... 27
2. Objectifs ....................................................................................................................... 27
3. Stratégie ........................................................................................................................ 27
3.1. Test anti-Xa ............................................................................................................ 27
3.1.1. Pré-étude ......................................................................................................... 27
3.1.2. Première phase ................................................................................................ 28
3.2. Test de génération de thrombine ............................................................................ 29
3.2.1. Seconde phase................................................................................................. 29
4. Matériel et réactifs ........................................................................................................ 30
4.1. Matériel .................................................................................................................. 30
4.2. Réactifs .................................................................................................................. 30
5. Méthodologie ............................................................................................................... 33
5.1. Préparation des différentes solutions ..................................................................... 33
5.2. Préparation des différents échantillons .................................................................. 37
5.2.1. Traitement pré-analytique des échantillons de plasma ................................... 38
5.3. Méthodologie pour les tests anti-Xa ...................................................................... 38
5.4. Méthodologie pour les tests de génération de thrombine ...................................... 39
Partie résultats .......................................................................................................................... 27
1. Résultats ....................................................................................................................... 40
1.1. Calibration.............................................................................................................. 40
1.1.1. StaR Max 2 ..................................................................................................... 40
1.1.2. ST Genesiia..................................................................................................... 40
1.2. Contrôles de qualités .............................................................................................. 41
1.2.1. StaR Max 2 ..................................................................................................... 41
1.2.2. ST Genesiia..................................................................................................... 42
1.3. Tests anti-Xa .......................................................................................................... 42
1.3.1. Pré-étude ......................................................................................................... 42
1.3.1.1. Vérification de la précision et de la reproductibilité du technicien avec du
NPP spiké avec de l’HNF......................................................................................... 42
1.3.1.2. Première approche sur l’effet du sulfate de dextran ................................. 44
1.3.1.3. Comparaison des résultats des tests anti-Xa avec et sans dextran ............ 44
1.3.1.4. Recherche du plateau haut et du plancher ................................................ 47
1.3.2. Première phase ................................................................................................ 49
1.3.2.1. Recherche de la concentration en sulfate de dextran qui annule l’effet d’un
inhibiteur de l’héparine ............................................................................................ 49
1.4. Test de génération de thrombine ............................................................................ 51
1.4.1. Seconde phase................................................................................................. 51
1.4.1.1. NPP seul ................................................................................................... 51
1.4.1.2. TGT: sulfate de dextran + eau PPI ........................................................... 52
1.4.1.3. TGT: protamine + eau PPI........................................................................ 53
1.4.1.4. TGT: Protamine + HNF + eau PPI ........................................................... 54
1.4.1.5. TGT: Protamine + HNF + 10μg/ml de sulfate de dextran ....................... 56
1.4.1.6. TGT: Protamine + HNF + 20μg/ml de sulfate de dextran ....................... 57
1.4.1.7. TGT: Polybrène + HNF + 10μg/ml de sulfate de dextran ........................ 58
1.4.1.8. TGT: Polybrène + HNF + 20μg/ml de sulfate de dextran ........................ 59
2. Discussion .................................................................................................................... 61
2.1. Tests anti-Xa .......................................................................................................... 61
2.2. Test de génération de thrombine ............................................................................ 63
Conclusion ................................................................................................................................ 65
Perspectives .............................................................................................................................. 65
Abréviations ............................................................................................................................. 66
Glossaire ................................................................................................................................... 67
Liste des figures et des tableaux ............................................................................................... 68
Figures ...................................................................................................................................... 68
Tableaux ................................................................................................................................... 69
Bibliographie ............................................................................................................................ 71
Table des matières des annexes ............................................................................................ 75
Annexes .................................................................................................................................... 76
Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=105751 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Mécanismes de résistance aux aminoglycosides : le rôle du polyphosphate / Margaux Etienne
PermalinkMécanismes de résistance aux aminoglycosides : le rôle du polyphosphate / Myriam Belmahi
PermalinkMicrobiologie revisitée : quels avantages des panels multiplex pour le diagnostic des entéropathogènes ? / Wythney Fostier
PermalinkMise au point du dosage du cortisol libre urinaire par UHPLC et détection de masse / Quentin Dhesse
PermalinkMise au point d’une méthode de confirmation des drogues urinaires par LC-MS/MS / Hermann Wouantou Djoumatchou
PermalinkMise au point de RT-qPCR ciblant les transcrits de fusion BCR-ABL1 pour le diagnostic et le suivi thérapeutique des leucémies myéloïdes chroniques / Sarah Verardo
PermalinkMise au point d’une technique d’identification des dermatophytes par MALDI-TOF et étude des modifications du protéome après passage sur un épiderme / Louanne Nihoul
PermalinkMise au point du test ENA Symphony réalisé sur le Phadia 250 / Chloé Troch
PermalinkMise en routine d’une nouvelle technique dans un laboratoire de biologie moléculaire : le dépistage prénatal non invasif (DPNI) / Tamara Ramlot
PermalinkOptimisation d’une méthode de titrage viral par standardisation de la concentration cellulaire / Aaron Niaz
Permalink