Centre de Documentation Campus Montignies
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Lundi : 8h-18h30
Mardi : 8h-18h30
Mercredi 9h-16h30
Jeudi : 8h-18h30
Vendredi : 8h-16h30
Attention, votre centre de documentation sera fermé du 27/04 au 12/05 inclus.
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2 résultat(s) recherche sur le mot-clé 'UCL Woluwé St Lambert'
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Caractérisation de plasmides d’Escherichia coli productrices de bêta-lactamase à spectre étendu provenant d’Afrique centrale / Sara BOUSSALAÂ
Titre : Caractérisation de plasmides d’Escherichia coli productrices de bêta-lactamase à spectre étendu provenant d’Afrique centrale Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Sara BOUSSALAÂ, Auteur ; M Irenge, Directeur de la recherche Année de publication : 2017 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale UCL Woluwé St Lambert Centre de technologie moléculaire appliqué. Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : TABLE DES MATIERES
Remerciements
Présentation du lieu de stage
Introduction générale ...................................................................................................................... 7
1. Contexte et principes de base à la compréhension de l’étude ............................................... 8
1.1. La problématique de la résistance des microorganismes aux antibiotiques .............. 8
1.2. Les bêta-lactamines ..................................................................................................... 9
1.3. Mécanisme d’action des bêta-lactamines ................................................................. 10
1.3.1. Pénétration dans la bactérie .............................................................................. 10
1.3.2. Activité antibactérienne ..................................................................................... 10
1.4. Mécanisme de résistance aux bêta-lactamines ........................................................ 12
1.4.1. Les bêta-lactamases ........................................................................................... 12
1.4.2. Les bêta-lactamases à spectre étendu (BLSE) .................................................... 13
1.4.3. Gènes de la résistance BLSE ............................................................................... 13
1.4.4. Mobilité de la résistance aux bêta-lactamines .................................................. 15
2. Présentation de la question de recherche ............................................................................. 16
3. Matériel et méthodes............................................................................................................. 17
3.1 Plan de travail ............................................................................................................ 17
3.2 Liste des bactéries et des transconjugants ................................................................ 18
3.3 Isolement des bactéries ............................................................................................. 19
3.4 Antibiogramme et test de double synergie ............................................................... 20
3.5 Test Indole et MR/VP ................................................................................................. 22
3.6 Extraction d’ADN chromosomique ............................................................................ 23
3.7 Extraction d’ADN plasmidique sur les transconjugants obtenus à partir des souches africaines. .............................................................................................................................. 25
3.8 Dosage de la concentration en ADN par Nanodrop .................................................. 28
3.9 Dosage de la concentration en ADN par Qubit ......................................................... 29
3.10 Restriction enzymatique ............................................................................................ 31
3.11 Estimation de la taille des plasmides après digestion enzymatique ......................... 32
3.12 PCR (A-tailing) ............................................................................................................ 33
3.13 Purification du produit PCR ....................................................................................... 35
3.14 Clonage (TA Cloning).................................................................................................. 35
3.15 Le séquençage des produits après restriction ........................................................... 39
3.16 Traitement des données obtenues après séquençage ............................................. 41
4. Résultats et discussion ........................................................................................................... 42
4.1. Isolement d’Enterobacteriaceae provenant d’Afrique sur gélose ............................ 42
4.2. Antibiogramme et test de double synergie ............................................................... 44
4.3. Test MR/VP et indole ................................................................................................. 47
4.4. Estimation de la taille des plasmides......................................................................... 48
4.5. Transformation de cellules compétentes .................................................................. 52
5
4.6. Migration des ADN plasmidiques recombinants après digestion par XhoI ............... 52
4.7. Séquençage des produits après digestion ................................................................. 53
Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65826 Caractérisation de plasmides d’Escherichia coli productrices de bêta-lactamase à spectre étendu provenant d’Afrique centrale [TFE / Mémoire] / Sara BOUSSALAÂ, Auteur ; M Irenge, Directeur de la recherche . - 2017.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : biologie médicale UCL Woluwé St Lambert Centre de technologie moléculaire appliqué. Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : TABLE DES MATIERES
Remerciements
Présentation du lieu de stage
Introduction générale ...................................................................................................................... 7
1. Contexte et principes de base à la compréhension de l’étude ............................................... 8
1.1. La problématique de la résistance des microorganismes aux antibiotiques .............. 8
1.2. Les bêta-lactamines ..................................................................................................... 9
1.3. Mécanisme d’action des bêta-lactamines ................................................................. 10
1.3.1. Pénétration dans la bactérie .............................................................................. 10
1.3.2. Activité antibactérienne ..................................................................................... 10
1.4. Mécanisme de résistance aux bêta-lactamines ........................................................ 12
1.4.1. Les bêta-lactamases ........................................................................................... 12
1.4.2. Les bêta-lactamases à spectre étendu (BLSE) .................................................... 13
1.4.3. Gènes de la résistance BLSE ............................................................................... 13
1.4.4. Mobilité de la résistance aux bêta-lactamines .................................................. 15
2. Présentation de la question de recherche ............................................................................. 16
3. Matériel et méthodes............................................................................................................. 17
3.1 Plan de travail ............................................................................................................ 17
3.2 Liste des bactéries et des transconjugants ................................................................ 18
3.3 Isolement des bactéries ............................................................................................. 19
3.4 Antibiogramme et test de double synergie ............................................................... 20
3.5 Test Indole et MR/VP ................................................................................................. 22
3.6 Extraction d’ADN chromosomique ............................................................................ 23
3.7 Extraction d’ADN plasmidique sur les transconjugants obtenus à partir des souches africaines. .............................................................................................................................. 25
3.8 Dosage de la concentration en ADN par Nanodrop .................................................. 28
3.9 Dosage de la concentration en ADN par Qubit ......................................................... 29
3.10 Restriction enzymatique ............................................................................................ 31
3.11 Estimation de la taille des plasmides après digestion enzymatique ......................... 32
3.12 PCR (A-tailing) ............................................................................................................ 33
3.13 Purification du produit PCR ....................................................................................... 35
3.14 Clonage (TA Cloning).................................................................................................. 35
3.15 Le séquençage des produits après restriction ........................................................... 39
3.16 Traitement des données obtenues après séquençage ............................................. 41
4. Résultats et discussion ........................................................................................................... 42
4.1. Isolement d’Enterobacteriaceae provenant d’Afrique sur gélose ............................ 42
4.2. Antibiogramme et test de double synergie ............................................................... 44
4.3. Test MR/VP et indole ................................................................................................. 47
4.4. Estimation de la taille des plasmides......................................................................... 48
4.5. Transformation de cellules compétentes .................................................................. 52
5
4.6. Migration des ADN plasmidiques recombinants après digestion par XhoI ............... 52
4.7. Séquençage des produits après digestion ................................................................. 53
Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65826 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Stratégie de recellularisation de tissus composites / Valérie KEIL
Titre : Stratégie de recellularisation de tissus composites Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Valérie KEIL, Auteur ; Jérôme DUIIST, Directeur de la recherche Année de publication : 2017 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale UCL Woluwé St Lambert Institut de Recherche Expérimentale et Clinique. Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
REMERCIEMENTS
PRÉSENTATION DU LIEU DE STAGE
INTRODUCTION ................................................................................................................................... 11
1. CONTEXTE GÉNÉRAL ................................................................................................................... 13
1.1 HISTORIQUE .................................................................................................................................... 13
1.2 PROBLÉMATIQUE .............................................................................................................................. 14
1.3 SOLUTIONS ...................................................................................................................................... 14
1.4 TRAITEMENT DU GREFFON .................................................................................................................. 15
1.4.1 Matrice extracellulaire (MEC) ............................................................................................ 16
1.4.2 Décellularisation ................................................................................................................ 18
1.4.3 Stérilisation ........................................................................................................................ 21
1.4.4 Recellularisation ................................................................................................................. 22
1.5 BIORÉACTEUR .................................................................................................................................. 27
1.5.1 Rôle du bioréacteur ............................................................................................................ 27
1.5.2 Caractéristiques d’un bioréacteur ...................................................................................... 27
1.5.3 Structure d’un bioréacteur ................................................................................................. 27
1.5.4 Avancées futures ................................................................................................................ 28
2. OBJECTIFS ET STRATÉGIES .......................................................................................................... 29
2.1 OBJECTIFS ....................................................................................................................................... 29
2.2 STRATÉGIES ..................................................................................................................................... 29
3. MATÉRIELS ET MÉTHODES .......................................................................................................... 31
3.1 GREFFONS UTILISÉS ........................................................................................................................... 31
3.2 TECHNIQUES DE CULTURE CELLULAIRE ................................................................................................... 32
3.2.1 Types de cellules utilisées ................................................................................................... 32
3.3 MÉTHODE DE DÉCELLULARISATION ....................................................................................................... 33
3.4 MÉTHODE DE STÉRILISATION DU GREFFON ............................................................................................. 34
3.5 MÉTHODE DE RECELLULARISATION SIMPLE ............................................................................................. 34
3.6 TECHNIQUES HISTOLOGIQUES .............................................................................................................. 34
4. RÉSULTATS ................................................................................................................................. 37
4.1 RECELLULARISATION D’UN GREFFON LABIAL HUMAIN ............................................................................... 37
4.1.1 Prélèvement du greffon de lèvre ........................................................................................ 37
4.1.2 Décellularisation-Stérilisation-Recellularisation ................................................................ 37
4.1.3 Stimulation électrique ........................................................................................................ 39
4.1.4 Histologie ........................................................................................................................... 39
4.2 RECELLULARISATION D’UN DOIGT HUMAIN AVEC DES CELLULES NIH 3T3 ..................................................... 42
4.3 RÉ-ENDOTHÉLIALISATION D’UNE OREILLE HUMAINE AVEC DES CELLULES HAEC ............................................. 44
4.3.1 Tests ................................................................................................................................... 45
4.4 RÉ-ENDOTHÉLIALISATION D’UN DOIGT HUMAIN AVEC DES CELLULES HAEC .................................................. 49
4.5 MISE AU POINT DU PROTOCOLE DE MONTAGE D’UN PROTOTYPE DE BIORÉACTEUR SPÉCIFIQUE AUX TISSUS COMPOSITES EN CONDITIONS STÉRILES ............................................................................................................ 50Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65842 Stratégie de recellularisation de tissus composites [TFE / Mémoire] / Valérie KEIL, Auteur ; Jérôme DUIIST, Directeur de la recherche . - 2017.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : biologie médicale UCL Woluwé St Lambert Institut de Recherche Expérimentale et Clinique. Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
REMERCIEMENTS
PRÉSENTATION DU LIEU DE STAGE
INTRODUCTION ................................................................................................................................... 11
1. CONTEXTE GÉNÉRAL ................................................................................................................... 13
1.1 HISTORIQUE .................................................................................................................................... 13
1.2 PROBLÉMATIQUE .............................................................................................................................. 14
1.3 SOLUTIONS ...................................................................................................................................... 14
1.4 TRAITEMENT DU GREFFON .................................................................................................................. 15
1.4.1 Matrice extracellulaire (MEC) ............................................................................................ 16
1.4.2 Décellularisation ................................................................................................................ 18
1.4.3 Stérilisation ........................................................................................................................ 21
1.4.4 Recellularisation ................................................................................................................. 22
1.5 BIORÉACTEUR .................................................................................................................................. 27
1.5.1 Rôle du bioréacteur ............................................................................................................ 27
1.5.2 Caractéristiques d’un bioréacteur ...................................................................................... 27
1.5.3 Structure d’un bioréacteur ................................................................................................. 27
1.5.4 Avancées futures ................................................................................................................ 28
2. OBJECTIFS ET STRATÉGIES .......................................................................................................... 29
2.1 OBJECTIFS ....................................................................................................................................... 29
2.2 STRATÉGIES ..................................................................................................................................... 29
3. MATÉRIELS ET MÉTHODES .......................................................................................................... 31
3.1 GREFFONS UTILISÉS ........................................................................................................................... 31
3.2 TECHNIQUES DE CULTURE CELLULAIRE ................................................................................................... 32
3.2.1 Types de cellules utilisées ................................................................................................... 32
3.3 MÉTHODE DE DÉCELLULARISATION ....................................................................................................... 33
3.4 MÉTHODE DE STÉRILISATION DU GREFFON ............................................................................................. 34
3.5 MÉTHODE DE RECELLULARISATION SIMPLE ............................................................................................. 34
3.6 TECHNIQUES HISTOLOGIQUES .............................................................................................................. 34
4. RÉSULTATS ................................................................................................................................. 37
4.1 RECELLULARISATION D’UN GREFFON LABIAL HUMAIN ............................................................................... 37
4.1.1 Prélèvement du greffon de lèvre ........................................................................................ 37
4.1.2 Décellularisation-Stérilisation-Recellularisation ................................................................ 37
4.1.3 Stimulation électrique ........................................................................................................ 39
4.1.4 Histologie ........................................................................................................................... 39
4.2 RECELLULARISATION D’UN DOIGT HUMAIN AVEC DES CELLULES NIH 3T3 ..................................................... 42
4.3 RÉ-ENDOTHÉLIALISATION D’UNE OREILLE HUMAINE AVEC DES CELLULES HAEC ............................................. 44
4.3.1 Tests ................................................................................................................................... 45
4.4 RÉ-ENDOTHÉLIALISATION D’UN DOIGT HUMAIN AVEC DES CELLULES HAEC .................................................. 49
4.5 MISE AU POINT DU PROTOCOLE DE MONTAGE D’UN PROTOTYPE DE BIORÉACTEUR SPÉCIFIQUE AUX TISSUS COMPOSITES EN CONDITIONS STÉRILES ............................................................................................................ 50Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65842 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire