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14 résultat(s) recherche sur le mot-clé 'Rat'
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Le rat, prenons-en soin [Dossier] / Céline Levrier in Le Point vétérinaire Expert Canin, 400 (Novembre 2019)
[article]
Titre : Le rat, prenons-en soin [Dossier] Type de document : texte imprimé Auteurs : Céline Levrier ; Lucas Flenghi ; Christophe Bulliot Année de publication : 2019 Article en page(s) : p. 21-36 Langues : Français (fre) Mots-clés : Médecine vétérinaire rat rat : reproduction rat : tumeurs mammaires rat : infections respiratoires Résumé : Petit compagnon attachant, social et intelligent, le rat s’est fait une place de choix parmi les petits mammifères de compagnie et est de plus en plus présent dans nos foyers. Cette espèce grégaire et très prolifique est souvent détenue en petits groupes, où cohabitent mâles et femelles. La stérilisation de ces animaux fait donc l’objet d’une demande croissante auprès des vétérinaires.
Plusieurs techniques chirurgicales existent, avec plusieurs abords possibles. Une méthode de stérilisation chimique apparaît en outre prometteuse. Redoutées en raison de leur fréquence, les tumeurs mammaires sont principalement bénignes et sous l’influence hormonale. Si elles touchent
les deux sexes, les femelles sont les plus atteintes. Là encore, la prise en charge est chirurgicale et consiste en une ou plusieurs nodulectomies. Après les atteintes cutanées, les maladies respiratoires sont le deuxième motif de consultation chez le rat de compagnie, porteur de nombreux germes infectieux. Comme ces affections sont favorisées par des paramètres environnementaux inadaptés et par le stress, l’approche infectieuse est aussi utile que l’appréhension globale des conditions de vie du rat.Note de contenu : 22 I REPRODUCTION
Stérilisation des rats : intérêts et techniques
Céline Levrier et coll.
28 I ONCOLOGIE
Les tumeurs mammaires chez le rat
Lucas Flenghi et coll.
32 I APPAREIL RESPIRATOIRE
Les infections respiratoires chez le rat de compagnie
Christophe Bulliot et coll.Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=84330
in Le Point vétérinaire Expert Canin > 400 (Novembre 2019) . - p. 21-36[article] Le rat, prenons-en soin [Dossier] [texte imprimé] / Céline Levrier ; Lucas Flenghi ; Christophe Bulliot . - 2019 . - p. 21-36.
Langues : Français (fre)
in Le Point vétérinaire Expert Canin > 400 (Novembre 2019) . - p. 21-36
Mots-clés : Médecine vétérinaire rat rat : reproduction rat : tumeurs mammaires rat : infections respiratoires Résumé : Petit compagnon attachant, social et intelligent, le rat s’est fait une place de choix parmi les petits mammifères de compagnie et est de plus en plus présent dans nos foyers. Cette espèce grégaire et très prolifique est souvent détenue en petits groupes, où cohabitent mâles et femelles. La stérilisation de ces animaux fait donc l’objet d’une demande croissante auprès des vétérinaires.
Plusieurs techniques chirurgicales existent, avec plusieurs abords possibles. Une méthode de stérilisation chimique apparaît en outre prometteuse. Redoutées en raison de leur fréquence, les tumeurs mammaires sont principalement bénignes et sous l’influence hormonale. Si elles touchent
les deux sexes, les femelles sont les plus atteintes. Là encore, la prise en charge est chirurgicale et consiste en une ou plusieurs nodulectomies. Après les atteintes cutanées, les maladies respiratoires sont le deuxième motif de consultation chez le rat de compagnie, porteur de nombreux germes infectieux. Comme ces affections sont favorisées par des paramètres environnementaux inadaptés et par le stress, l’approche infectieuse est aussi utile que l’appréhension globale des conditions de vie du rat.Note de contenu : 22 I REPRODUCTION
Stérilisation des rats : intérêts et techniques
Céline Levrier et coll.
28 I ONCOLOGIE
Les tumeurs mammaires chez le rat
Lucas Flenghi et coll.
32 I APPAREIL RESPIRATOIRE
Les infections respiratoires chez le rat de compagnie
Christophe Bulliot et coll.Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=84330 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Caractérisation fonctionnelle de l'insufisance rénale aiguë ischémique chez le rat : approche analytique / JADOT Bénédicte
Titre : Caractérisation fonctionnelle de l'insufisance rénale aiguë ischémique chez le rat : approche analytique Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : JADOT Bénédicte, Année de publication : 2009 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Mots-clés : INSUFFISANCE RENALE RAT ISCHEMIE FILTRATION GLOMERULAIRE DIURESE OSMOLARITE URINAIRE NATRIURESE KALIURESE HISTOLOGIE ISCHEMIE-REPERFUSION RENALE Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64556 Caractérisation fonctionnelle de l'insufisance rénale aiguë ischémique chez le rat : approche analytique [TFE / Mémoire] / JADOT Bénédicte, . - 2009.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Mots-clés : INSUFFISANCE RENALE RAT ISCHEMIE FILTRATION GLOMERULAIRE DIURESE OSMOLARITE URINAIRE NATRIURESE KALIURESE HISTOLOGIE ISCHEMIE-REPERFUSION RENALE Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64556 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Caractérisation morphologique de l’effet de la Propolis sur une plaie cutanée chez le rat / Xavier Blecha
Titre : Caractérisation morphologique de l’effet de la Propolis sur une plaie cutanée chez le rat Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Xavier Blecha, Auteur ; Charles Nicaise, Directeur de la recherche Année de publication : 2017 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale Université de Namur URPhym Unité de recherche en physiologie moléculaire propolis plaie rat peau cicatrisation cutanée lésion cutanée immunomarquage Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : La peau est l’organe le plus superficiel du corps humain. Elle exerce plusieurs fonctions différentes et est composée de trois couches qui se superposent, l’épiderme, le derme et l’hypoderme. Le derme qui va nous intéresser dans ce travail est le tissu connectif de la peau, il est vascularisé et joue un rôle nutritif et de soutien. Il est composé de matrice extracellulaire qui contient les vaisseaux sanguins, les nerfs ainsi que les fibroblastes. Lorsque la peau est endommagée, celle-ci va se reformer dans un processus nommé cicatrisation. La cicatrisation est divisée en quatre phases : l’hémostase, la phase inflammatoire, la phase de prolifération et la phase de remodélisation. Lors de la cicatrisation, les fibroblastes et les myofibroblastes jouent un rôle important, ils vont sécréter le collagène et aider la cicatrice à se refermer. Dans ce travail, nous nous sommes intéressés à la repopulation du lit cellulaire par les fibroblastes et les myofibroblastes et l’effet qu’exercerait la Propolis sur cette repopulation. La Propolis est une substance produite par les abeilles qui possède un grand nombre de propriétés thérapeutiques.
Le but du travail est d’évaluer l’effet de la Propolis sur la cicatrisation cutanée et plus particulièrement sur la repopulation du lit cellulaire par les fibroblastes et les myofibroblastes. Diverses techniques histologiques ont été utilisées comme des colorations topographiques (Hémalun-Eosine-Safran, Trichrome de Masson vert et le Rouge Picrosirius) ainsi que des immunomarquages spécifiques des fibroblastes et des myofibroblastes. Les immunomarquages sont dirigés contre la vimentine, qui est un marqueur des fibroblastes et des myofibroblastes, contre l’α-SMA qui est un marqueur des myofibroblastes et contre Iba-1 qui est un marqueur des macrophages et va nous permettre d’avoir une idée du processus inflammatoire.
Les résultats obtenus nous montrent que l’application de Propolis accélère de quelques heures la fermeture de la cicatrice au niveau macroscopique, comparativement à l’excipient seul (Macrogol). Ceci pourrait être expliqué par le fait que la Propolis stimule l’apparition des myofibroblastes qui vont jouer un rôle important dans la fermeture de la lésion. La Propolis augmente aussi le nombre de cellules vimentines positives au jour 7, c’est-à-dire au jour au il y a le plus de différence au niveau macroscopique. La Propolis agit sur la sécrétion du collagène, en effet, les fibres de collagène de type I des peaux traitées avec de la Propolis « récupèrent » plus rapidement leur orientation et en accélérant leur sécrétion. Enfin, la Propolis n’a pas d’effet apparent sur l’inflammation car aucune différence a été relevée entre les peaux traitées avec de la Propolis et les peaux traitées avec du Macrogol.Note de contenu : Table des matières
Présentation du lieu de stage .................................................................................................................. 7
1. Introduction ..................................................................................................................................... 9
1.1 La peau .......................................................................................................................................... 9
1.1.1 L’épiderme ............................................................................................................................ 10
1.1.1.1 La couche basale ........................................................................................................ 10
1.1.1.2 La couche épineuse ................................................................................................... 11
1.1.1.3 La couche granuleuse .................................................................................................... 12
1.1.1.4 La couche cornée ........................................................................................................... 12
1.1.2 Le derme ............................................................................................................................... 13
1.1.2.1 Les fibroblastes .............................................................................................................. 13
1.1.2.2 Les myofibroblastes ....................................................................................................... 14
1.1.2.3 Le collagène ................................................................................................................... 15
1.2 La cicatrisation cutanée ............................................................................................................... 16
1.2.1. Généralités .......................................................................................................................... 16
1.2.2 L’hémostase .......................................................................................................................... 17
1.2.3 La phase inflammatoire ........................................................................................................ 19
1.2.4 La phase proliférative ........................................................................................................... 20
1.2.4.1 La réépithalisation ......................................................................................................... 20
1.2.4.2 La fibroplasie ................................................................................................................. 21
1.2.4.3 L’angiogenèse ................................................................................................................ 22
1.2.5 La phase de remodélisation ................................................................................................. 23
1.3 La Propolis ................................................................................................................................... 24
1.4. But du travail .............................................................................................................................. 25
2. Matériel et méthodes .................................................................................................................... 27
2.1 Animaux et modèle de lésion cutanée .................................................................................. 27
2.2. Histologie .................................................................................................................................... 28
2.2.1 Fixateur ................................................................................................................................. 28
2.2.2. Déshydratation et mise en paraffine des échantillons ........................................................ 28
2.2.3. Microtomisation et étalement des coupons sur lames ....................................................... 29
2.2.4. Coloration hématoxyline-éosine-safran (HES) .................................................................... 30
2.2.5. Coloration trichrome de Masson vert ................................................................................. 31
2.2.6. Coloration rouge picrosirius ................................................................................................ 32
2.2.4. Immunohistochimie ............................................................................................................ 33
2.2.7. Immunofluorescence ........................................................................................................... 36
3. Résultats ........................................................................................................................................ 39
3.1. Analyse macroscopique des plaies ............................................................................................. 39
3.2. Analyse microscopique des plaies .............................................................................................. 40
3.2.1. H.E.S ..................................................................................................................................... 40
3.2.2 Trichrome de Masson vert ................................................................................................... 43
3.2.3 Rouge picrosirius .................................................................................................................. 45
3.3. Immunomarquage de la vimentine ............................................................................................ 47
3.3.1. Révélation chromogénique ............................................................................................. 47
3.3.2 Quantification de la densité des cellules vimentine positive ........................................... 50
3.3.3. Immunofluorescence ....................................................................................................... 51
3.4. Immunomarquage de l’alpha SMA ......................................................................................... 51
3.4.1 Révélation chromogénique .............................................................................................. 51
3.4.2 Immunofluorescence ........................................................................................................ 54
3.5. Immunomarquage d’Iba 1 ...................................................................................................... 54
4. Discussion et perspectives ............................................................................................................ 57
Conclusion ............................................................................................................................................. 65
Liste des abréviations ............................................................................................................................ 67
Liste des figures ..................................................................................................................................... 69
Bibliographie.......................................................................................................................................... 71Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64855 Caractérisation morphologique de l’effet de la Propolis sur une plaie cutanée chez le rat [TFE / Mémoire] / Xavier Blecha, Auteur ; Charles Nicaise, Directeur de la recherche . - 2017.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : biologie médicale Université de Namur URPhym Unité de recherche en physiologie moléculaire propolis plaie rat peau cicatrisation cutanée lésion cutanée immunomarquage Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : La peau est l’organe le plus superficiel du corps humain. Elle exerce plusieurs fonctions différentes et est composée de trois couches qui se superposent, l’épiderme, le derme et l’hypoderme. Le derme qui va nous intéresser dans ce travail est le tissu connectif de la peau, il est vascularisé et joue un rôle nutritif et de soutien. Il est composé de matrice extracellulaire qui contient les vaisseaux sanguins, les nerfs ainsi que les fibroblastes. Lorsque la peau est endommagée, celle-ci va se reformer dans un processus nommé cicatrisation. La cicatrisation est divisée en quatre phases : l’hémostase, la phase inflammatoire, la phase de prolifération et la phase de remodélisation. Lors de la cicatrisation, les fibroblastes et les myofibroblastes jouent un rôle important, ils vont sécréter le collagène et aider la cicatrice à se refermer. Dans ce travail, nous nous sommes intéressés à la repopulation du lit cellulaire par les fibroblastes et les myofibroblastes et l’effet qu’exercerait la Propolis sur cette repopulation. La Propolis est une substance produite par les abeilles qui possède un grand nombre de propriétés thérapeutiques.
Le but du travail est d’évaluer l’effet de la Propolis sur la cicatrisation cutanée et plus particulièrement sur la repopulation du lit cellulaire par les fibroblastes et les myofibroblastes. Diverses techniques histologiques ont été utilisées comme des colorations topographiques (Hémalun-Eosine-Safran, Trichrome de Masson vert et le Rouge Picrosirius) ainsi que des immunomarquages spécifiques des fibroblastes et des myofibroblastes. Les immunomarquages sont dirigés contre la vimentine, qui est un marqueur des fibroblastes et des myofibroblastes, contre l’α-SMA qui est un marqueur des myofibroblastes et contre Iba-1 qui est un marqueur des macrophages et va nous permettre d’avoir une idée du processus inflammatoire.
Les résultats obtenus nous montrent que l’application de Propolis accélère de quelques heures la fermeture de la cicatrice au niveau macroscopique, comparativement à l’excipient seul (Macrogol). Ceci pourrait être expliqué par le fait que la Propolis stimule l’apparition des myofibroblastes qui vont jouer un rôle important dans la fermeture de la lésion. La Propolis augmente aussi le nombre de cellules vimentines positives au jour 7, c’est-à-dire au jour au il y a le plus de différence au niveau macroscopique. La Propolis agit sur la sécrétion du collagène, en effet, les fibres de collagène de type I des peaux traitées avec de la Propolis « récupèrent » plus rapidement leur orientation et en accélérant leur sécrétion. Enfin, la Propolis n’a pas d’effet apparent sur l’inflammation car aucune différence a été relevée entre les peaux traitées avec de la Propolis et les peaux traitées avec du Macrogol.Note de contenu : Table des matières
Présentation du lieu de stage .................................................................................................................. 7
1. Introduction ..................................................................................................................................... 9
1.1 La peau .......................................................................................................................................... 9
1.1.1 L’épiderme ............................................................................................................................ 10
1.1.1.1 La couche basale ........................................................................................................ 10
1.1.1.2 La couche épineuse ................................................................................................... 11
1.1.1.3 La couche granuleuse .................................................................................................... 12
1.1.1.4 La couche cornée ........................................................................................................... 12
1.1.2 Le derme ............................................................................................................................... 13
1.1.2.1 Les fibroblastes .............................................................................................................. 13
1.1.2.2 Les myofibroblastes ....................................................................................................... 14
1.1.2.3 Le collagène ................................................................................................................... 15
1.2 La cicatrisation cutanée ............................................................................................................... 16
1.2.1. Généralités .......................................................................................................................... 16
1.2.2 L’hémostase .......................................................................................................................... 17
1.2.3 La phase inflammatoire ........................................................................................................ 19
1.2.4 La phase proliférative ........................................................................................................... 20
1.2.4.1 La réépithalisation ......................................................................................................... 20
1.2.4.2 La fibroplasie ................................................................................................................. 21
1.2.4.3 L’angiogenèse ................................................................................................................ 22
1.2.5 La phase de remodélisation ................................................................................................. 23
1.3 La Propolis ................................................................................................................................... 24
1.4. But du travail .............................................................................................................................. 25
2. Matériel et méthodes .................................................................................................................... 27
2.1 Animaux et modèle de lésion cutanée .................................................................................. 27
2.2. Histologie .................................................................................................................................... 28
2.2.1 Fixateur ................................................................................................................................. 28
2.2.2. Déshydratation et mise en paraffine des échantillons ........................................................ 28
2.2.3. Microtomisation et étalement des coupons sur lames ....................................................... 29
2.2.4. Coloration hématoxyline-éosine-safran (HES) .................................................................... 30
2.2.5. Coloration trichrome de Masson vert ................................................................................. 31
2.2.6. Coloration rouge picrosirius ................................................................................................ 32
2.2.4. Immunohistochimie ............................................................................................................ 33
2.2.7. Immunofluorescence ........................................................................................................... 36
3. Résultats ........................................................................................................................................ 39
3.1. Analyse macroscopique des plaies ............................................................................................. 39
3.2. Analyse microscopique des plaies .............................................................................................. 40
3.2.1. H.E.S ..................................................................................................................................... 40
3.2.2 Trichrome de Masson vert ................................................................................................... 43
3.2.3 Rouge picrosirius .................................................................................................................. 45
3.3. Immunomarquage de la vimentine ............................................................................................ 47
3.3.1. Révélation chromogénique ............................................................................................. 47
3.3.2 Quantification de la densité des cellules vimentine positive ........................................... 50
3.3.3. Immunofluorescence ....................................................................................................... 51
3.4. Immunomarquage de l’alpha SMA ......................................................................................... 51
3.4.1 Révélation chromogénique .............................................................................................. 51
3.4.2 Immunofluorescence ........................................................................................................ 54
3.5. Immunomarquage d’Iba 1 ...................................................................................................... 54
4. Discussion et perspectives ............................................................................................................ 57
Conclusion ............................................................................................................................................. 65
Liste des abréviations ............................................................................................................................ 67
Liste des figures ..................................................................................................................................... 69
Bibliographie.......................................................................................................................................... 71Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64855 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Effect of exercise training before mating on mRNA expression of breast cancer-related genes in offspring in rats / M. Sofiabadi in Science & sports, Vol. 35, n°5 (2020)
[article]
Titre : Effect of exercise training before mating on mRNA expression of breast cancer-related genes in offspring in rats Titre original : Effet de l’entraînement physique avant l’accouplement sur l’expression de l’ARNm de gènes liés au cancer du sein chez la progéniture du rat Auteurs : M. Sofiabadi ; N. Khosravi ; A. Peymani ; M. Koushki Jahromi ; A. Abdolahpour ; R. Zarbaf Année de publication : 2020 Article en page(s) : p. 312.e1-312.e9 Note générale : 10.1016/j.scispo.2020.03.004 Langues : Français (fre) Mots-clés : Mise en condition physique de l'homme Recherche Rat Tumeurs du sein ARN messager Résumé : Objectif
L’exercice est associé à une réduction du risque de cancer du sein. Cependant, l’effet de l’exercice parental sur le risque de cancer du sein chez les enfants n’a pas été étudié. Ainsi, l’objectif de la présente étude était d’évaluer l’effet de l’entraînement aérobie des parents avant la grossesse sur l’expression de certains des principaux gènes du cancer du sein dans le tissu mammaire de leur progéniture.
Méthode
Dix-huit rats Sprague Dawley femelles et 6 mâles ont été répartis au hasard en deux groupes d’entraînement et de contrôle. Après l’entraînement, chaque mâle s’est marié avec 2 femelles. Un entraînement aérobique parental d’intensité modérée a été réalisé sur un tapis roulant pendant 4 semaines, à raison de 5 séances par semaine. Enfin, les paires 4, 5 et 6 de tissus mammaires adultes ont été réalisées pour évaluer l’expression de BRCA1, TP53, ER-α, IGF-1 et IGF-1R.
Résultats
Nous avons constaté que l’entraînement aérobique modéré de la mère avant la grossesse, en particulier avec le père, entraînait une augmentation significative de l’ARNm des gènes BRCA1, P53 et ER-α, ainsi qu’une réduction significative de l’IGF-1 et de l’IGF-1R.
Conclusion
L’exercice d’intensité modérée avant l’accouplement a affecté de manière significative l’expression des gènes BRCA1, P53, IGF-1, IGF-1R et ER-α. Nous suggérons donc que les parents qui font de l’exercice régulièrement avant la grossesse induire une diminution du risque de cancer du sein chez les enfants.Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=90129
in Science & sports > Vol. 35, n°5 (2020) . - p. 312.e1-312.e9[article] Effect of exercise training before mating on mRNA expression of breast cancer-related genes in offspring in rats = Effet de l’entraînement physique avant l’accouplement sur l’expression de l’ARNm de gènes liés au cancer du sein chez la progéniture du rat [] / M. Sofiabadi ; N. Khosravi ; A. Peymani ; M. Koushki Jahromi ; A. Abdolahpour ; R. Zarbaf . - 2020 . - p. 312.e1-312.e9.
10.1016/j.scispo.2020.03.004
Langues : Français (fre)
in Science & sports > Vol. 35, n°5 (2020) . - p. 312.e1-312.e9
Mots-clés : Mise en condition physique de l'homme Recherche Rat Tumeurs du sein ARN messager Résumé : Objectif
L’exercice est associé à une réduction du risque de cancer du sein. Cependant, l’effet de l’exercice parental sur le risque de cancer du sein chez les enfants n’a pas été étudié. Ainsi, l’objectif de la présente étude était d’évaluer l’effet de l’entraînement aérobie des parents avant la grossesse sur l’expression de certains des principaux gènes du cancer du sein dans le tissu mammaire de leur progéniture.
Méthode
Dix-huit rats Sprague Dawley femelles et 6 mâles ont été répartis au hasard en deux groupes d’entraînement et de contrôle. Après l’entraînement, chaque mâle s’est marié avec 2 femelles. Un entraînement aérobique parental d’intensité modérée a été réalisé sur un tapis roulant pendant 4 semaines, à raison de 5 séances par semaine. Enfin, les paires 4, 5 et 6 de tissus mammaires adultes ont été réalisées pour évaluer l’expression de BRCA1, TP53, ER-α, IGF-1 et IGF-1R.
Résultats
Nous avons constaté que l’entraînement aérobique modéré de la mère avant la grossesse, en particulier avec le père, entraînait une augmentation significative de l’ARNm des gènes BRCA1, P53 et ER-α, ainsi qu’une réduction significative de l’IGF-1 et de l’IGF-1R.
Conclusion
L’exercice d’intensité modérée avant l’accouplement a affecté de manière significative l’expression des gènes BRCA1, P53, IGF-1, IGF-1R et ER-α. Nous suggérons donc que les parents qui font de l’exercice régulièrement avant la grossesse induire une diminution du risque de cancer du sein chez les enfants.Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=90129 Exemplaires (1)
Cote Support Localisation Section Disponibilité Revue Revue Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Armoires à volets Document exclu du prêt - à consulter sur place
Exclu du prêtRats et hermines, tremblez! / Jean-Michel Debry in Athena : Recherche et développement technologique, 308 (Février 2015)
[article]
Titre : Rats et hermines, tremblez! Type de document : texte imprimé Auteurs : Jean-Michel Debry, Auteur Année de publication : 2015 Article en page(s) : p.39 Langues : Français (fre) Mots-clés : rat hermine prolifération Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=35042
in Athena : Recherche et développement technologique > 308 (Février 2015) . - p.39[article] Rats et hermines, tremblez! [texte imprimé] / Jean-Michel Debry, Auteur . - 2015 . - p.39.
Langues : Français (fre)
in Athena : Recherche et développement technologique > 308 (Février 2015) . - p.39
Mots-clés : rat hermine prolifération Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=35042 Exemplaires (1)
Cote Support Localisation Section Disponibilité Revue Revue Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Armoires à volets Document exclu du prêt - à consulter sur place
Exclu du prêtAnalgesic effects of tramadol, carprofen or multimodal analgesia in rats undergoing ventral laparotomy / C. Cannon in LabAnimal-Europe, 4/11 (Avril 2011)
PermalinkAtlas d'anatomie du chien, du chat et des NAC / Thomas O. MCCRACKEN
PermalinkComprendre le comportement des NAC / Teresa BRADLEY BAYS
PermalinkDossier: Nutrition des petits mammifères de compagnie / A. LINSART in Le Point vétérinaire Expert Canin, 353 (Mars 2015)
PermalinkEvaluation de l'implication de l'acide urique dans les maladies auto-immunes / LAMBERT Axel
Permalink