Centre de Documentation Campus Montignies
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Lundi : 8h-18h30
Mardi : 8h-17h30
Mercredi 9h-16h30
Jeudi : 8h-18h30
Vendredi : 8h30-12h30 et 13h-14h30
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2.5 TFE Biologie médicale
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ABONDANCE ET ACTIVITE DU FACTEUR DE TRANSCRIPTION HIF-1 DANS DIFFERENTES CONDITIONS D’HYPOXIE / Wiâme BEN EL MOSTAPHA
Titre : ABONDANCE ET ACTIVITE DU FACTEUR DE TRANSCRIPTION HIF-1 DANS DIFFERENTES CONDITIONS D’HYPOXIE Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Wiâme BEN EL MOSTAPHA, Auteur ; Guillaume Van Beersel, Directeur de la recherche Année de publication : 2015 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale Université de Namur Cellules souches cancéreuses Sein : cancer Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Présentation du lieu de stage ........................................................................................................7
Introduction générale ...................................................................................................................9
1. Introduction théorique ......................................................................................................... 11
1.1. Le sein .......................................................................................................................... 11
1.1.1. Structure du sein................................................................................................... 11
1.1.2. Cellules souches .................................................................................................... 13
1.1.3. Tumeur du sein .................................................................................................... 14
1.1.3.1. Généralités.................................................................................................... 14
1.1.3.2. Cellules souches cancéreuses ........................................................................ 16
1.2. Hypoxie ........................................................................................................................ 17
1.3. Facteur Inductible par l'Hypoxie (HIF) ........................................................................... 18
1.3.1. Généralités ........................................................................................................... 18
1.3.2. Rôle de HIF-1 en hypoxie....................................................................................... 19
1.3.3. HIF-1α ................................................................................................................... 20
1.3.4. Régulation du facteur HIF-1α ................................................................................ 21
1.3.4.1. Mécanisme de dégradation ........................................................................... 21
1.3.4.2. Mécanisme de stabilisation hypoxique .......................................................... 22
2. Objectifs............................................................................................................................... 23
3. Matériel et méthodes .......................................................................................................... 23
3.1. Culture cellulaire .......................................................................................................... 23
3.1.1. Lignée cellulaire utilisée ........................................................................................ 23
3.1.2. Culture cellulaire ................................................................................................... 24
3.2. Extraction de protéines et dosage................................................................................. 25
3.2.1. Extraction des protéines ....................................................................................... 25
3.2.2. Dosage protéique avec le réactif de Pierce ............................................................ 26
3.2.2.1. Principe ......................................................................................................... 26
3.2.2.2. Protocole ...................................................................................................... 27
3.3. Western blot ................................................................................................................ 28
3.3.1. Préparation des échantillons ................................................................................. 28
3.3.2. Préparation du gel polyacrylamide ........................................................................ 28
3.3.3. Chargement des protéines et électrophorèse ....................................................... 29
3.3.4. Transfert semi-humide .......................................................................................... 30
3.3.5. Incubation de la membrane avec les anticorps primaires et secondaires ............... 31
3.3.5.1. Fluorescence ................................................................................................. 31
3.3.5.2. Chémiluminescence ...................................................................................... 32
3.3.6. Révélation et quantification .................................................................................. 33
3.3.6.1. Fluorescence ................................................................................................. 33
3.3.6.2. Chémiluminescence ...................................................................................... 34
3.4. PCR quantitative en temps réel (RT-PCR) ...................................................................... 34
3.4.1. Principe ................................................................................................................ 34
3.4.2. Extraction d’ARN ................................................................................................... 35
3.4.3. Transcription inverse ............................................................................................ 36
3.4.4. PCR en temps réel (RT-PCR) .................................................................................. 37
3.4.5. Analyse des résultats ............................................................................................ 38
4. Résultats et discussion ......................................................................................................... 39
4.1. Détection de la protéine HIF-1α .................................................................................... 39
4.1.1. Western blot « classique » et fluorescent .............................................................. 39
4.2. Analyse de l’expression de gènes cibles de HIF-1 .......................................................... 48
4.2.1. Expression du gène SOX2 ...................................................................................... 48
4.2.2. Expression du gène NDRG1B ................................................................................. 49
Conclusions et perspectives ........................................................................................................ 51
Liste des abréviations .................................................................................................................. 53
Bibliographie ............................................................................................................................... 55Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65561 ABONDANCE ET ACTIVITE DU FACTEUR DE TRANSCRIPTION HIF-1 DANS DIFFERENTES CONDITIONS D’HYPOXIE [TFE / Mémoire] / Wiâme BEN EL MOSTAPHA, Auteur ; Guillaume Van Beersel, Directeur de la recherche . - 2015.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : biologie médicale Université de Namur Cellules souches cancéreuses Sein : cancer Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Présentation du lieu de stage ........................................................................................................7
Introduction générale ...................................................................................................................9
1. Introduction théorique ......................................................................................................... 11
1.1. Le sein .......................................................................................................................... 11
1.1.1. Structure du sein................................................................................................... 11
1.1.2. Cellules souches .................................................................................................... 13
1.1.3. Tumeur du sein .................................................................................................... 14
1.1.3.1. Généralités.................................................................................................... 14
1.1.3.2. Cellules souches cancéreuses ........................................................................ 16
1.2. Hypoxie ........................................................................................................................ 17
1.3. Facteur Inductible par l'Hypoxie (HIF) ........................................................................... 18
1.3.1. Généralités ........................................................................................................... 18
1.3.2. Rôle de HIF-1 en hypoxie....................................................................................... 19
1.3.3. HIF-1α ................................................................................................................... 20
1.3.4. Régulation du facteur HIF-1α ................................................................................ 21
1.3.4.1. Mécanisme de dégradation ........................................................................... 21
1.3.4.2. Mécanisme de stabilisation hypoxique .......................................................... 22
2. Objectifs............................................................................................................................... 23
3. Matériel et méthodes .......................................................................................................... 23
3.1. Culture cellulaire .......................................................................................................... 23
3.1.1. Lignée cellulaire utilisée ........................................................................................ 23
3.1.2. Culture cellulaire ................................................................................................... 24
3.2. Extraction de protéines et dosage................................................................................. 25
3.2.1. Extraction des protéines ....................................................................................... 25
3.2.2. Dosage protéique avec le réactif de Pierce ............................................................ 26
3.2.2.1. Principe ......................................................................................................... 26
3.2.2.2. Protocole ...................................................................................................... 27
3.3. Western blot ................................................................................................................ 28
3.3.1. Préparation des échantillons ................................................................................. 28
3.3.2. Préparation du gel polyacrylamide ........................................................................ 28
3.3.3. Chargement des protéines et électrophorèse ....................................................... 29
3.3.4. Transfert semi-humide .......................................................................................... 30
3.3.5. Incubation de la membrane avec les anticorps primaires et secondaires ............... 31
3.3.5.1. Fluorescence ................................................................................................. 31
3.3.5.2. Chémiluminescence ...................................................................................... 32
3.3.6. Révélation et quantification .................................................................................. 33
3.3.6.1. Fluorescence ................................................................................................. 33
3.3.6.2. Chémiluminescence ...................................................................................... 34
3.4. PCR quantitative en temps réel (RT-PCR) ...................................................................... 34
3.4.1. Principe ................................................................................................................ 34
3.4.2. Extraction d’ARN ................................................................................................... 35
3.4.3. Transcription inverse ............................................................................................ 36
3.4.4. PCR en temps réel (RT-PCR) .................................................................................. 37
3.4.5. Analyse des résultats ............................................................................................ 38
4. Résultats et discussion ......................................................................................................... 39
4.1. Détection de la protéine HIF-1α .................................................................................... 39
4.1.1. Western blot « classique » et fluorescent .............................................................. 39
4.2. Analyse de l’expression de gènes cibles de HIF-1 .......................................................... 48
4.2.1. Expression du gène SOX2 ...................................................................................... 48
4.2.2. Expression du gène NDRG1B ................................................................................. 49
Conclusions et perspectives ........................................................................................................ 51
Liste des abréviations .................................................................................................................. 53
Bibliographie ............................................................................................................................... 55Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65561 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Actualisation des méthodes de dépistage de la sphérocytose héréditaire. / Nicolas Bailly
Titre : Actualisation des méthodes de dépistage de la sphérocytose héréditaire. Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Nicolas Bailly, Année de publication : 2008 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Mots-clés : HEMATOLOGIE ANOMALIE GLOBULES ROUGES SPHEROCYTOSE HEREDITAIRE MALADIE MINKOWSKI CHAUFFARD HEMOGRAMME FROTTIS SANGUIN CRYOHEMOLYSE RESISTANCE OSMOTIQUE CYTOMETRIE DE FLUX Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64419 Actualisation des méthodes de dépistage de la sphérocytose héréditaire. [TFE / Mémoire] / Nicolas Bailly, . - 2008.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur
Mots-clés : HEMATOLOGIE ANOMALIE GLOBULES ROUGES SPHEROCYTOSE HEREDITAIRE MALADIE MINKOWSKI CHAUFFARD HEMOGRAMME FROTTIS SANGUIN CRYOHEMOLYSE RESISTANCE OSMOTIQUE CYTOMETRIE DE FLUX Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64419 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Adaptation du kit Innovance® VWF:Ac (Siemens) sur STAR-MAX (Stago) / Sevgi Yoldas
Titre : Adaptation du kit Innovance® VWF:Ac (Siemens) sur STAR-MAX (Stago) Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Sevgi Yoldas, Auteur ; Patrick Vankerkhoven, Directeur de la recherche Editeur : Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale Année de publication : 2021 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : CHU Charleroi maladie Willebrand dosage fonctionnel VWF:Ac diagnostic biologique protocole Stago et GRAF validation méthode Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : La maladie de Von Willebrand est la maladie héréditaire hémorragique la plus fréquente de l’hémostase primaire avec une prévalence de l’ordre de 1 %. Elle est due soit à une anomalie qualitative (type 2) ou quantitative (type 1 ou type 3) du VWF. Le diagnostic de la maladie de Von Willebrand reste complexe du fait de la très grande hétérogénéité clinique et biologique. La détermination de l’activité de liaison au GP1b reste un point important dans le diagnostic de la maladie. Pendant de longues années, le VWF:Rco c’est-à-dire la liaison du VWF au GP1b plaquettaire en présence de ristocétine a été utilisé. Cependant, cette méthode présente de nombreux désavantages : défaut de reproductibilité, sensibilité, polymorphisme du domaine A1 ne répondant pas à la ristocétine. Tous ces défauts ont conduit à l’apparition de nouveaux tests sur le marché, notamment le coffret Innovance® VWF:Ac de la firme Siemens. Dans cette méthode, une GP1b possédant deux mutations-de-gains se lie spontanément au VWF en
absence de ristocétine. Elle offre même une meilleure reproductibilité et une limite de détection plus basse d’après l’insert. Le laboratoire du CHU de Charleroi utilise l’Innovance® sur l’automate BCS-XP de la firme Siemens pour la détermination de l’activité du VWF (méthode de référence). Mais, cet automate n’est utilisé qu'une fois par semaine et donc est incompatible avec des dosages en urgence. De plus, effectuer un dosage en urgence sur BCS-XP coûte cher, c’est un appareil avec un système d’allumage spécifique qui nécessite la reconstitution de contrôles coûteux. La société Diagnostica Stago et GRAF L. ont proposé deux protocoles différents pour adapter ce dosage sur STAR-MAX, l’automate de routine d’hémostase. L’objectif de ce travail est d’adapter le coffret Innovance sur STAR-MAX selon les deux méthodes, effectuer une
validation en évaluant différents critères (répétabilité, reproductibilité, calibration, courbe dose-réponse, sensibilité, stabilité et les interférences liées à l’hémoglobine) et enfin, de comparer à la méthode de référence pour savoir si les deux méthodes offrent des résultats similaires et peuvent être échangées sans altération du diagnostic du patient. La méthode de GRAF a rapidement été abandonnée due à une mauvaise réponse. Malgré que des résultats satisfaisants ont été obtenus pour la plupart des critères dans méthode de Stago, elle n’a pas été mise au point dû à un défaut de sensibilité.Note de contenu : Table des matières
Remerciements...........................................................................................................................1
Table des matières......................................................................................................................2
Contexte général ........................................................................................................................1
1. L’hémostase ...................................................................................................................1
1.1 L’hémostase primaire ...................................................................................................1
1.2 La coagulation ..............................................................................................................1
1.3 La fibrinolyse................................................................................................................2
1.4 La régulation de l’hémostase........................................................................................2
1.5 Troubles de l’hémostase ...............................................................................................3
2. Le facteur Von Willebrand ............................................................................................3
2.1 Biosynthèse : du gène à la protéine ..............................................................................4
2.2 Les domaines fonctionnels du VWF ............................................................................5
2.3 ADAMTS13 .................................................................................................................6
2.4 Rôles physiologiques....................................................................................................7
2.4.1 Hémostase primaire : adhésion et agrégation plaquettaire ...................................7
2.4.2 Coagulation : transport et protection du FVIII .....................................................7
2.4.3 Participation à la thrombopoïèse...........................................................................7
2.5 Les valeurs normales et les variations physiologiques .................................................8
3. La maladie de Von Willebrand ......................................................................................9
3.1 Classification ................................................................................................................9
3.1.1 Maladie de Von Willebrand de type 1 ..................................................................9
3.1.2 Maladie de Von Willebrand de type 2 ................................................................10
3.1.3 Maladie de Von Willebrand de type 3 ................................................................11
3.2 Diagnostic biologique de la maladie de Von Willebrand...........................................12
3.2.2 Diagnostic difficile..............................................................................................12
3.2.3 Diagnostic différentiel ........................................................................................12
3.2.4 Différents tests réalisés dans un laboratoire médical ..........................................13
A. Test de routine................................................................................................13
B. Test spécifique réalisé lors d’une suspicion de la maladie de Willebrand.....13
C. Tests discriminatifs et spécialisés ..................................................................16
3.3 Traitement...................................................................................................................19
3.3.1 La DDAVP.....................................................................................................19
3.3.2 Les concentrés du VWF .................................................................................19
Objectif et stratégie ..................................................................................................................20
Matériels et méthode................................................................................................................21
1. Réactifs ........................................................................................................................21
1.1 Le coffret Innovance® VWF Ac ................................................................................21
1.2 Autres réactifs, contrôles et calibrateurs.....................................................................23
2. Matériels et appareils ...................................................................................................23
2.1 Matériels .....................................................................................................................23
2.2 Appareils.....................................................................................................................24
2.2.1 STAR®-Max.......................................................................................................24
2.2.2 BCS-XP® ...........................................................................................................25
3. Échantillons..................................................................................................................26
4. Mise au point de la méthode ........................................................................................27
4.1 Le facteur de dilution de l’automate...........................................................................27
4.2 Les volumes des réactifs 1, 2 et 3...............................................................................28
4.3 Le volume d’échantillon.............................................................................................28
Validation de la méthode .........................................................................................................30
1. La fidélité .....................................................................................................................30
1.1 La répétabilité ........................................................................................................31
1.2 La reproductibilité .................................................................................................31
2. La calibration ...............................................................................................................32
3. La courbe dose-réponse ...............................................................................................32
3.1 La sensibilité...............................................................................................................33
4. La stabilité....................................................................................................................34
4.1 La stabilité des QC-Routine Stago .............................................................................34
4.2 La stabilité du réactif 1 ...............................................................................................34
5. La corrélation ...............................................................................................................36
5.1 Passing-Bablok ...........................................................................................................36
5.2 Bland-Altman .............................................................................................................36
6. Les interférences ..........................................................................................................37
Résultats...................................................................................................................................39
1. Évaluation de la répétabilité.........................................................................................39
2. Évaluation de la reproductibilité..................................................................................41
3. La calibration ...............................................................................................................43
4. La courbe dose-réponse ...............................................................................................44
4.1 La sensibilité...............................................................................................................45
5. La stabilité....................................................................................................................46
5.1 Du réactif 1 .................................................................................................................46
5.2 Des QC-routine...........................................................................................................49
6. La corrélation ...............................................................................................................50
7. Les interférences liées à l’Hb.......................................................................................52
Discussion ................................................................................................................................53
Comparaison des automates.....................................................................................................54
1. Nombre de tests............................................................................................................54
2. Prix...............................................................................................................................54
Conclusion ...............................................................................................................................56
Liste des figures .........................................................................................................................1
Liste des tables...........................................................................................................................2
Liste des abréviations.................................................................................................................4
Bibliographie..............................................................................................................................5
Annexes......................................................................................................................................9
Résumé.....................................................................................................................................16
Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=100374 Adaptation du kit Innovance® VWF:Ac (Siemens) sur STAR-MAX (Stago) [TFE / Mémoire] / Sevgi Yoldas, Auteur ; Patrick Vankerkhoven, Directeur de la recherche . - Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale, 2021.
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Langues : Français (fre)
Mots-clés : CHU Charleroi maladie Willebrand dosage fonctionnel VWF:Ac diagnostic biologique protocole Stago et GRAF validation méthode Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : La maladie de Von Willebrand est la maladie héréditaire hémorragique la plus fréquente de l’hémostase primaire avec une prévalence de l’ordre de 1 %. Elle est due soit à une anomalie qualitative (type 2) ou quantitative (type 1 ou type 3) du VWF. Le diagnostic de la maladie de Von Willebrand reste complexe du fait de la très grande hétérogénéité clinique et biologique. La détermination de l’activité de liaison au GP1b reste un point important dans le diagnostic de la maladie. Pendant de longues années, le VWF:Rco c’est-à-dire la liaison du VWF au GP1b plaquettaire en présence de ristocétine a été utilisé. Cependant, cette méthode présente de nombreux désavantages : défaut de reproductibilité, sensibilité, polymorphisme du domaine A1 ne répondant pas à la ristocétine. Tous ces défauts ont conduit à l’apparition de nouveaux tests sur le marché, notamment le coffret Innovance® VWF:Ac de la firme Siemens. Dans cette méthode, une GP1b possédant deux mutations-de-gains se lie spontanément au VWF en
absence de ristocétine. Elle offre même une meilleure reproductibilité et une limite de détection plus basse d’après l’insert. Le laboratoire du CHU de Charleroi utilise l’Innovance® sur l’automate BCS-XP de la firme Siemens pour la détermination de l’activité du VWF (méthode de référence). Mais, cet automate n’est utilisé qu'une fois par semaine et donc est incompatible avec des dosages en urgence. De plus, effectuer un dosage en urgence sur BCS-XP coûte cher, c’est un appareil avec un système d’allumage spécifique qui nécessite la reconstitution de contrôles coûteux. La société Diagnostica Stago et GRAF L. ont proposé deux protocoles différents pour adapter ce dosage sur STAR-MAX, l’automate de routine d’hémostase. L’objectif de ce travail est d’adapter le coffret Innovance sur STAR-MAX selon les deux méthodes, effectuer une
validation en évaluant différents critères (répétabilité, reproductibilité, calibration, courbe dose-réponse, sensibilité, stabilité et les interférences liées à l’hémoglobine) et enfin, de comparer à la méthode de référence pour savoir si les deux méthodes offrent des résultats similaires et peuvent être échangées sans altération du diagnostic du patient. La méthode de GRAF a rapidement été abandonnée due à une mauvaise réponse. Malgré que des résultats satisfaisants ont été obtenus pour la plupart des critères dans méthode de Stago, elle n’a pas été mise au point dû à un défaut de sensibilité.Note de contenu : Table des matières
Remerciements...........................................................................................................................1
Table des matières......................................................................................................................2
Contexte général ........................................................................................................................1
1. L’hémostase ...................................................................................................................1
1.1 L’hémostase primaire ...................................................................................................1
1.2 La coagulation ..............................................................................................................1
1.3 La fibrinolyse................................................................................................................2
1.4 La régulation de l’hémostase........................................................................................2
1.5 Troubles de l’hémostase ...............................................................................................3
2. Le facteur Von Willebrand ............................................................................................3
2.1 Biosynthèse : du gène à la protéine ..............................................................................4
2.2 Les domaines fonctionnels du VWF ............................................................................5
2.3 ADAMTS13 .................................................................................................................6
2.4 Rôles physiologiques....................................................................................................7
2.4.1 Hémostase primaire : adhésion et agrégation plaquettaire ...................................7
2.4.2 Coagulation : transport et protection du FVIII .....................................................7
2.4.3 Participation à la thrombopoïèse...........................................................................7
2.5 Les valeurs normales et les variations physiologiques .................................................8
3. La maladie de Von Willebrand ......................................................................................9
3.1 Classification ................................................................................................................9
3.1.1 Maladie de Von Willebrand de type 1 ..................................................................9
3.1.2 Maladie de Von Willebrand de type 2 ................................................................10
3.1.3 Maladie de Von Willebrand de type 3 ................................................................11
3.2 Diagnostic biologique de la maladie de Von Willebrand...........................................12
3.2.2 Diagnostic difficile..............................................................................................12
3.2.3 Diagnostic différentiel ........................................................................................12
3.2.4 Différents tests réalisés dans un laboratoire médical ..........................................13
A. Test de routine................................................................................................13
B. Test spécifique réalisé lors d’une suspicion de la maladie de Willebrand.....13
C. Tests discriminatifs et spécialisés ..................................................................16
3.3 Traitement...................................................................................................................19
3.3.1 La DDAVP.....................................................................................................19
3.3.2 Les concentrés du VWF .................................................................................19
Objectif et stratégie ..................................................................................................................20
Matériels et méthode................................................................................................................21
1. Réactifs ........................................................................................................................21
1.1 Le coffret Innovance® VWF Ac ................................................................................21
1.2 Autres réactifs, contrôles et calibrateurs.....................................................................23
2. Matériels et appareils ...................................................................................................23
2.1 Matériels .....................................................................................................................23
2.2 Appareils.....................................................................................................................24
2.2.1 STAR®-Max.......................................................................................................24
2.2.2 BCS-XP® ...........................................................................................................25
3. Échantillons..................................................................................................................26
4. Mise au point de la méthode ........................................................................................27
4.1 Le facteur de dilution de l’automate...........................................................................27
4.2 Les volumes des réactifs 1, 2 et 3...............................................................................28
4.3 Le volume d’échantillon.............................................................................................28
Validation de la méthode .........................................................................................................30
1. La fidélité .....................................................................................................................30
1.1 La répétabilité ........................................................................................................31
1.2 La reproductibilité .................................................................................................31
2. La calibration ...............................................................................................................32
3. La courbe dose-réponse ...............................................................................................32
3.1 La sensibilité...............................................................................................................33
4. La stabilité....................................................................................................................34
4.1 La stabilité des QC-Routine Stago .............................................................................34
4.2 La stabilité du réactif 1 ...............................................................................................34
5. La corrélation ...............................................................................................................36
5.1 Passing-Bablok ...........................................................................................................36
5.2 Bland-Altman .............................................................................................................36
6. Les interférences ..........................................................................................................37
Résultats...................................................................................................................................39
1. Évaluation de la répétabilité.........................................................................................39
2. Évaluation de la reproductibilité..................................................................................41
3. La calibration ...............................................................................................................43
4. La courbe dose-réponse ...............................................................................................44
4.1 La sensibilité...............................................................................................................45
5. La stabilité....................................................................................................................46
5.1 Du réactif 1 .................................................................................................................46
5.2 Des QC-routine...........................................................................................................49
6. La corrélation ...............................................................................................................50
7. Les interférences liées à l’Hb.......................................................................................52
Discussion ................................................................................................................................53
Comparaison des automates.....................................................................................................54
1. Nombre de tests............................................................................................................54
2. Prix...............................................................................................................................54
Conclusion ...............................................................................................................................56
Liste des figures .........................................................................................................................1
Liste des tables...........................................................................................................................2
Liste des abréviations.................................................................................................................4
Bibliographie..............................................................................................................................5
Annexes......................................................................................................................................9
Résumé.....................................................................................................................................16
Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=100374 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Adaptation de la méthodologie de dépistage du MRSA dans un laboratoire accrédité ISO 15189 / Franz DEBRUXELLES
Titre : Adaptation de la méthodologie de dépistage du MRSA dans un laboratoire accrédité ISO 15189 Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Franz DEBRUXELLES, Auteur ; Eddine LALI SALAH, Directeur de la recherche Année de publication : 2017 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale Centre Hospitalier Marie Curie Département de Bactériologie. Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Remerciements
Présentation du lieu de stage
Introduction
Partie théorique ...................................................................................................................................... 1
1. Le Staphylococcus aureus ................................................................................................................ 1
1.1 Généralités ................................................................................................................................ 1
1.2 Infections ................................................................................................................................... 1
1.3 Virulence .................................................................................................................................... 1
1.4 Traitement ................................................................................................................................. 2
2. Le MRSA ........................................................................................................................................... 2
2.1 Origine de la résistance à la méticilline ..................................................................................... 2
2.2 Historique de la détection de la résistance à la méticilline ....................................................... 2
2.3 Le MRSA dans le monde ............................................................................................................ 3
2.4 Méthodes mises en place pour contrer le MRSA ...................................................................... 3
3. L’étude ............................................................................................................................................. 4
Partie pratique ......................................................................................................................................... 9
1. But ................................................................................................................................................... 9
2. Principe ............................................................................................................................................ 9
3. Matériel et réactifs .......................................................................................................................... 9
4. Méthode .......................................................................................................................................... 9
4.1 Validation de la méthode ........................................................................................................ 10
4.2 Une colonie typique est-elle un S.aureus ? ............................................................................. 10
4.3 Est-ce que le temps d’incubation est compris entre 18 et 24h ? ............................................ 11
4.4 Quelle est la température optimale entre 35 et 37°C ? .......................................................... 11
5. Résultats ........................................................................................................................................ 12
5.1 Validation des résultats obtenus ............................................................................................. 12
5.2 Une colonie typique est-elle un S.aureus ? ............................................................................. 13
5.3 Est-ce que le temps d’incubation est compris entre 18 et 24h ? ............................................ 15
5.4 Quelle est la température optimale entre 35 et 37°C ? .......................................................... 18Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65830 Adaptation de la méthodologie de dépistage du MRSA dans un laboratoire accrédité ISO 15189 [TFE / Mémoire] / Franz DEBRUXELLES, Auteur ; Eddine LALI SALAH, Directeur de la recherche . - 2017.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : biologie médicale Centre Hospitalier Marie Curie Département de Bactériologie. Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Remerciements
Présentation du lieu de stage
Introduction
Partie théorique ...................................................................................................................................... 1
1. Le Staphylococcus aureus ................................................................................................................ 1
1.1 Généralités ................................................................................................................................ 1
1.2 Infections ................................................................................................................................... 1
1.3 Virulence .................................................................................................................................... 1
1.4 Traitement ................................................................................................................................. 2
2. Le MRSA ........................................................................................................................................... 2
2.1 Origine de la résistance à la méticilline ..................................................................................... 2
2.2 Historique de la détection de la résistance à la méticilline ....................................................... 2
2.3 Le MRSA dans le monde ............................................................................................................ 3
2.4 Méthodes mises en place pour contrer le MRSA ...................................................................... 3
3. L’étude ............................................................................................................................................. 4
Partie pratique ......................................................................................................................................... 9
1. But ................................................................................................................................................... 9
2. Principe ............................................................................................................................................ 9
3. Matériel et réactifs .......................................................................................................................... 9
4. Méthode .......................................................................................................................................... 9
4.1 Validation de la méthode ........................................................................................................ 10
4.2 Une colonie typique est-elle un S.aureus ? ............................................................................. 10
4.3 Est-ce que le temps d’incubation est compris entre 18 et 24h ? ............................................ 11
4.4 Quelle est la température optimale entre 35 et 37°C ? .......................................................... 11
5. Résultats ........................................................................................................................................ 12
5.1 Validation des résultats obtenus ............................................................................................. 12
5.2 Une colonie typique est-elle un S.aureus ? ............................................................................. 13
5.3 Est-ce que le temps d’incubation est compris entre 18 et 24h ? ............................................ 15
5.4 Quelle est la température optimale entre 35 et 37°C ? .......................................................... 18Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65830 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Adaptation de la ration alimentaire et de l'hébergement d'animaux sauvages en captivité au Parc Paradisio / CAYPHAS Virginie
Titre : Adaptation de la ration alimentaire et de l'hébergement d'animaux sauvages en captivité au Parc Paradisio Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : CAYPHAS Virginie, Année de publication : 2008 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Mots-clés : ZOOLOGIE PARC ANIMALIER ANIMAUX SAUVAGES ALIMENTATION ANIMALE RATION ALIMENTAIRE PROTECTION ANIMALE Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64454 Adaptation de la ration alimentaire et de l'hébergement d'animaux sauvages en captivité au Parc Paradisio [TFE / Mémoire] / CAYPHAS Virginie, . - 2008.
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Mots-clés : ZOOLOGIE PARC ANIMALIER ANIMAUX SAUVAGES ALIMENTATION ANIMALE RATION ALIMENTAIRE PROTECTION ANIMALE Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64454 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Ammine chirali enantiopure per la sintesi stereoselettiva(TFE réalisé à l'Université de Padoue . Echange ERASMUS) / RINALDI Lucrezia
PermalinkAnalyse comparative de deux panels d’immunophénotypage cinq et dix couleurs en cytométrie en flux / Coleen Delatte
PermalinkAnalyse de l'effet de la molécule leucyl-Leucine-O-Méthyle sur la perméabilité lysosomale et la prolifération de cellules cancéreuses mammaires in vitro / Kimberley Bouvier
PermalinkAnalyse des éléments figurés de l'échantillon urinaire.Comparaison de cinq techniques : la cytométrie de flux (UF-100), la microscopie automatisée (SediMax), la microscopie classique, les tigettes urinaires (AutionMax) et la culture. / MOTIN Mélissa
PermalinkAnalyse de l'éthylsulfate dans l'urine par électrophorèse capillaire à pH 2.5 / LUYCKX Olivier
PermalinkAnalyse du liquide céphalo-rachidien par cytométrie en flux / CHARLOTTE NYS
PermalinkAnalyse de mélanges d’hydrogène dans des matrices différentes et leur certification en tant que standard d’analyse / MAJID AKAJOUA
PermalinkAnalyse morpho-fonctionnelles de modèles d'insuffisance rénale aiguë chez le rat et la souris / Benjamin FERRACIN
PermalinkAnalyse par les systèmes biomimétiques des interactions membranaires des oxylipines impliquées dans la réponse aux stress des plantes. / Franck KONCHECHOU
PermalinkAnalyse du sperme :Révision de l'approche et nouvelles recommandations 2010 de l'OMS / Justine Van Thuyne
PermalinkAnalyse du traitement pré-analytique et post-analytique des échantillons chez GLM / Benoit Lambert
PermalinkL'antibiogramme :EUCAST versus CLSI :impact sur le frofil de résistance / EVRARD Elodie
PermalinkLes anticoagulants directs sous les projecteurs : quel(s) test(s) pour quelle molécule ? / Anaïs LEFEVRE
PermalinkAnticorps anti-CCP : Apports diagnostiques et validation de méthode / Doygu Sanak
PermalinkApixaban : Eliquis. Impact de l'apixaban sur les tests de la coagulation et détermination de bonnes pratiques de laboratoire pour le suivi de l'anti-coagulation / Adrien COLLARD
PermalinkApplication en cytométrie en flux du « monoscore » au diagnostic différentiel des monocytoses / Chloé Picaro
PermalinkApplication de méthodes chromatographiques à l'étude de sémiochimiques dans le cadre de la lutte biologique contre le puceron / FARMAKIDIS Julien
PermalinkApplication des profils d’exactitude pour la validation de l’analyse élémentaire dans des matrices alimentaires par une méthode de spectrométrie d’émission atomique à plasma généré par micro-ondes / Anthony Debroux
PermalinkApplication du score Sigma en biologie clinique : Difficultés et approche pragmatique / Laura Di Chiaro
PermalinkApplication du test de liaison de l'antigène du facteur de Willebrand au collagène à un protocole de recherche clinique : Sténose aortique et syndrome de Willebrand acquis(TFE réalisé au Centre de Biologie Pathologique de Lille. Echange ERASMUS) / BAUDAR Justine
PermalinkApport du séquençage du gène ftsI pour l’étude de la résistance aux bêta-lactamines de souches invasives et non-invasives d’Haemophilus influenzae en Belgique / Fatima El Askri
PermalinkApproche microscopique et fonctionnelle de la thrombocytopénie chez les souris Knock-out pour le gène HYAL-2. / PARMENTIER Geoffroy
PermalinkApproche des techniques de microfluidique pour la production de tensioactifs biosoursés / Amaury Lanoy
PermalinkApproche technologique des conditions de reconstruction d'épiderme humain en culture: glucose, glycogène et antibiotiques / Anushea ANANTHARAJAH
PermalinkAspects quantitatif et qualitatif de l'ADN extrait après différents temps de digestion et différentes températures de conservation . Validation du kit Argus X-12 / WIEST Mélissa
PermalinkAssessment of the epidemiological importance of experimentally ZIKA virus competent Culex quinquefasciatus / William Maroy
PermalinkAtlas of parasites observed at Durrell Wildlife Conservation Trust (TFE réalisé à JERSEY . EHcange ERASMUS) / RINALDI Jean-Benoît
PermalinkAutomatisation sur Liaison de la détection de pathogènes dans les selles : Validation du nouveau tampon d'extraction. / Audrey Iovine
PermalinkBilan de fertilité : Evaluation d'un immuno-analyseur de nouvelle génération / Khalid Mahrach
PermalinkBiosynthèse, caractérisation physico-chimique et analyse des interactions membranaires d’une oxylipine libre impliquée dans la réponse des plantes au stress / Maxime GRIMAUDO
PermalinkLa calibration du temps de Quick en pourcent et en INR, le point sur la question / LADRILLE Julie
PermalinkCalibration du temps de Quick sur base d'un système homogène. Existe-t-il un calibrateur universel ? / NOIRET Anaïs
PermalinkLA CALPROTECTINE FECALE: BIOMARQUEUR COMMERCIAL OU INDISPENSABLE? : COMPARAISON DE DEUX METHODES DE DOSAGE DANS LES SELLES DE PATIENTS ATTEINTS DE MALADIES INFLAMMATOIRES DES INTESTINS / ZAHIA SALMI
PermalinkLes Campylobacter : Test antigénétique ou Culture ? Le dilemme… / Marius MEBOUPYEWO
PermalinkCaractérisation de l’abondance mitochondriale sur des cellules A549 après irradiation par des rayons X. / Christopher Bond
PermalinkCaractérisation des activités fibrogéniques des cellules MDSC (Myeloïd-Derived Suppressor Cells) mises en co-culture avec des fibroblastes pulmonaires. / LISA BROMBIN
PermalinkCaractérisation de la biogenèse des ARN circulaires non canoniques / Lohan Dethier
PermalinkCaractérisation de deux enzymes impliquées dans la biosynthèse des isoprénoïdes : ID12 et DXR / Aurélie CANON
PermalinkCaractérisation fonctionnelle de l'insufisance rénale aiguë ischémique chez le rat : approche analytique / JADOT Bénédicte
PermalinkCaractérisation génotypique et phénotypique des souches S1 et S1H de la bactérie Rhodospirillum rubrum dans le cadre du projet MELiSSA / VITALINE DE GREEF
PermalinkCaractérisation de l’implication de l’érythritol et des acides aminés dans la réplication de brucella sp. Au sein de la cellule hôte / KEVIN WILLEMART
PermalinkCaractérisation d’inhibiteurs potentiels de l’interaction entre le domaine PWWP de la DNMT3B et le marqueur épigénétique H3K36me3 / Fauve UITTERHAEGEN
PermalinkCaractérisation des interactions des huiles essentielles avec des systèmes biomimétiques des membranes / Thibault SCHELLENS
PermalinkCaractérisation des microparticules générées à partir de cellules cancéreuses (CPSS disc centrifuge) et étude de l'implication du facteur tissulaire sur leur activité procoagulante (CAT) / NASSAUX Alisson
PermalinkCaractérisation des microvésicules libérées par les cellules cancéreuses / Lionel LIZEN
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