[article]
Titre : |
Détermination des limites acceptables des paramètres de précision pour la numération des sous-populations lymphocytaires par cytométrie en flux |
Type de document : |
texte imprimé |
Auteurs : |
Françoise Durrieu ; Chantal Brouzes ; Claude Lambert |
Année de publication : |
2018 |
Article en page(s) : |
p. 687-693 |
Langues : |
Français (fre) |
Mots-clés : |
cytométrie en flux numération lymphocytaire précision accréditation contrôle qualité |
Résumé : |
Les performances de la numération lymphocytaire sont difficiles à évaluer par le manque de recommandations consensuelles. Le but de ce travail était de proposer des valeurs cibles pour les paramètres de précision. Les données de répétabilité et de reproductibilité de 2 niveaux de contrôle interne de qualité (CIQ) ont été transmises par 64 laboratoires. Pour chaque population cellulaire, un coefficient de variation (CV) limite a été défini comme le CV moyen obtenu par méthodes statistiques robustes, plus 3 déviations standards. Le CV cible de répétabilité variait de 2,0 % à 10,6 % respectivement pour les CD3+ et les NK exprimés en pourcentage, et de 6,2 % à 11,4 % respectivement pour les CD3+ et les NK en valeur absolue. Les données de reproductibilité ont été obtenues à partir d’une moyenne de 21 ± 11 mesures. Le CV cible de reproductibilité variait de 2,5 % à 9,1 % respectivement pour les CD3+ et les NK exprimés en pourcentage, et de 9,7 % à 14,2 % respectivement pour les CD3+ et les NK en valeur absolue ; 90 % des laboratoires avaient un CV inférieur aux valeurs cibles. Les deux paramètres de précision étaient inversement proportionnels à la représentativité cellulaire. Ces résultats soulignent la précision de la méthode malgré les variations techniques liées aux instruments, anticorps, types de CIQ et de systèmes de comptage. Il est donc possible de recommander des CV cibles reflétant « l’état de l’art » permettant d’évaluer et de suivre dans le temps les performances de cette méthode et d’extrapoler ces résultats aux cellules rares. |
Permalink : |
./index.php?lvl=notice_display&id=77384 |
in Annales de Biologie Clinique > 76/6 (novembre-décembre 2018) . - p. 687-693
[article] Détermination des limites acceptables des paramètres de précision pour la numération des sous-populations lymphocytaires par cytométrie en flux [texte imprimé] / Françoise Durrieu ; Chantal Brouzes ; Claude Lambert . - 2018 . - p. 687-693. Langues : Français ( fre) in Annales de Biologie Clinique > 76/6 (novembre-décembre 2018) . - p. 687-693
Mots-clés : |
cytométrie en flux numération lymphocytaire précision accréditation contrôle qualité |
Résumé : |
Les performances de la numération lymphocytaire sont difficiles à évaluer par le manque de recommandations consensuelles. Le but de ce travail était de proposer des valeurs cibles pour les paramètres de précision. Les données de répétabilité et de reproductibilité de 2 niveaux de contrôle interne de qualité (CIQ) ont été transmises par 64 laboratoires. Pour chaque population cellulaire, un coefficient de variation (CV) limite a été défini comme le CV moyen obtenu par méthodes statistiques robustes, plus 3 déviations standards. Le CV cible de répétabilité variait de 2,0 % à 10,6 % respectivement pour les CD3+ et les NK exprimés en pourcentage, et de 6,2 % à 11,4 % respectivement pour les CD3+ et les NK en valeur absolue. Les données de reproductibilité ont été obtenues à partir d’une moyenne de 21 ± 11 mesures. Le CV cible de reproductibilité variait de 2,5 % à 9,1 % respectivement pour les CD3+ et les NK exprimés en pourcentage, et de 9,7 % à 14,2 % respectivement pour les CD3+ et les NK en valeur absolue ; 90 % des laboratoires avaient un CV inférieur aux valeurs cibles. Les deux paramètres de précision étaient inversement proportionnels à la représentativité cellulaire. Ces résultats soulignent la précision de la méthode malgré les variations techniques liées aux instruments, anticorps, types de CIQ et de systèmes de comptage. Il est donc possible de recommander des CV cibles reflétant « l’état de l’art » permettant d’évaluer et de suivre dans le temps les performances de cette méthode et d’extrapoler ces résultats aux cellules rares. |
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