Application en cytométrie en flux du « monoscore » au diagnostic différentiel des monocytoses / Chloé Picaro

Public ISBD Titre : Application en cytométrie en flux du « monoscore » au diagnostic différentiel des monocytoses Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Chloé Picaro, Auteur ; Louise-Marie Vincent, Directeur de la recherche Editeur : Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale Année de publication : 2021 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : Grand Hôpital de Charleroi Saint Joseph  GHdC  Gilly  Laboratoire Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Ce travail de fin d’études a été effectué dans le laboratoire d’hématologie du Grand Hôpital de Charleroi Saint Joseph à Gilly (GHdC) et porte sur le diagnostic différentiel entre Leucémie Myélomonocytaire Chronique et monocytose réactionnelle par cytométrie en flux sur base du protocole d’un groupe français, le CytHem. La Leucémie Myélomonocytaire Chronique est une maladie touchant la lignée des monocytes. Elle peut présenter un versant prolifératif, c’est-à-dire une prolifération anarchique des monocytes, mais aussi un versant dysplasique, avec présence de cellules anormales. C’est une pathologie touchant principalement les personnes âgées.La monocytose réactionnelle est la conséquence d’une pathologie sous-jacente. Elle est caractérisée par une monocytose supérieure à 1000/mm³ dans le sang périphérique. Diverses causes peuvent être à l’origine d’une monocytose réactionnelle comme lors d’une prise de médicament, en cas de syndrome inflammatoire ou encore après une chirurgie. La technique utilisée est la cytométrie en flux qui permet de classer les cellules en fonction de leur taille, de leur complexité intracellulaire et de leur fluorescence. La cytométrie regroupe trois principes : la focalisation hydrodynamique permettant l’alignement des cellules une par une, l'optique permettant le passage des cellules à travers les lasers et l'électronique qui permet la conversion des signaux lumineux en signaux électriques digitalisés pour ensuite être traités par informatique. A la fin de cette étude, les résultats obtenus montraient que le protocole utilisé (CytHem) pouvait être utilisé en routine dans n’importe quel laboratoire d’hématologie. Note de contenu : Table des matières Présentation du lieu de stage................................................................................................. 1 Introduction générale............................................................................................................. 3 Partie théorique ............................................................................................................... 4 La cytométrie en flux .............................................................................................................. 5 I. Définition ..................................................................................................................... 5 II. Principes ...................................................................................................................... 5 III. Les fluorochromes.................................................................................................. 11 Cytomètre utilisé au laboratoire .......................................................................................... 19 Lignée monocytaire .............................................................................................................. 20 La Leucémie myélomonocytaire chronique (LMMC) ........................................................... 24 I. Définition ................................................................................................................... 24 II. Clinique ...................................................................................................................... 25 III. Critères diagnostiques de la LMMC ....................................................................... 25 IV. Hémogramme ........................................................................................................ 26 V. Immunophénotypage ................................................................................................ 26 VI. Aspects cytogénétiques et moléculaires ............................................................... 26 VII. Traitement ............................................................................................................. 27 La monocytose réactionnelle ............................................................................................... 28 I. Définition ................................................................................................................... 28 II. Diagnostic différentiel des monocytoses sanguines ................................................. 29 III. Traitement ............................................................................................................. 29 Partie pratique ................................................................................................................30 But......................................................................................................................................... 31 Stratégie de gating pour l’identification des sous populations monocytaires..................... 32 Matériel ................................................................................................................................ 37 Méthode ............................................................................................................................... 37 Résultats ............................................................................................................................... 38 I. Présentation des différents cas ................................................................................. 38 Discussion et conclusion....................................................................................................... 44 Abréviations.......................................................................................................................... 47 Liste des figures .................................................................................................................... 48 Liste des tableaux ................................................................................................................. 50 Bibliographie ...................................................................................................................51 Table des matière des annexes ............................................................................................ 55 Annexes...........................................................................................................................56 Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=100336 Application en cytométrie en flux du « monoscore » au diagnostic différentiel des monocytoses [TFE / Mémoire] / Chloé Picaro, Auteur ; Louise-Marie Vincent, Directeur de la recherche . - Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale, 2021. Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : Grand Hôpital de Charleroi Saint Joseph  GHdC  Gilly  Laboratoire Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Ce travail de fin d’études a été effectué dans le laboratoire d’hématologie du Grand Hôpital de Charleroi Saint Joseph à Gilly (GHdC) et porte sur le diagnostic différentiel entre Leucémie Myélomonocytaire Chronique et monocytose réactionnelle par cytométrie en flux sur base du protocole d’un groupe français, le CytHem. La Leucémie Myélomonocytaire Chronique est une maladie touchant la lignée des monocytes. Elle peut présenter un versant prolifératif, c’est-à-dire une prolifération anarchique des monocytes, mais aussi un versant dysplasique, avec présence de cellules anormales. C’est une pathologie touchant principalement les personnes âgées.La monocytose réactionnelle est la conséquence d’une pathologie sous-jacente. Elle est caractérisée par une monocytose supérieure à 1000/mm³ dans le sang périphérique. Diverses causes peuvent être à l’origine d’une monocytose réactionnelle comme lors d’une prise de médicament, en cas de syndrome inflammatoire ou encore après une chirurgie. La technique utilisée est la cytométrie en flux qui permet de classer les cellules en fonction de leur taille, de leur complexité intracellulaire et de leur fluorescence. La cytométrie regroupe trois principes : la focalisation hydrodynamique permettant l’alignement des cellules une par une, l'optique permettant le passage des cellules à travers les lasers et l'électronique qui permet la conversion des signaux lumineux en signaux électriques digitalisés pour ensuite être traités par informatique. A la fin de cette étude, les résultats obtenus montraient que le protocole utilisé (CytHem) pouvait être utilisé en routine dans n’importe quel laboratoire d’hématologie. Note de contenu : Table des matières Présentation du lieu de stage................................................................................................. 1 Introduction générale............................................................................................................. 3 Partie théorique ............................................................................................................... 4 La cytométrie en flux .............................................................................................................. 5 I. Définition ..................................................................................................................... 5 II. Principes ...................................................................................................................... 5 III. Les fluorochromes.................................................................................................. 11 Cytomètre utilisé au laboratoire .......................................................................................... 19 Lignée monocytaire .............................................................................................................. 20 La Leucémie myélomonocytaire chronique (LMMC) ........................................................... 24 I. Définition ................................................................................................................... 24 II. Clinique ...................................................................................................................... 25 III. Critères diagnostiques de la LMMC ....................................................................... 25 IV. Hémogramme ........................................................................................................ 26 V. Immunophénotypage ................................................................................................ 26 VI. Aspects cytogénétiques et moléculaires ............................................................... 26 VII. Traitement ............................................................................................................. 27 La monocytose réactionnelle ............................................................................................... 28 I. Définition ................................................................................................................... 28 II. Diagnostic différentiel des monocytoses sanguines ................................................. 29 III. Traitement ............................................................................................................. 29 Partie pratique ................................................................................................................30 But......................................................................................................................................... 31 Stratégie de gating pour l’identification des sous populations monocytaires..................... 32 Matériel ................................................................................................................................ 37 Méthode ............................................................................................................................... 37 Résultats ............................................................................................................................... 38 I. Présentation des différents cas ................................................................................. 38 Discussion et conclusion....................................................................................................... 44 Abréviations.......................................................................................................................... 47 Liste des figures .................................................................................................................... 48 Liste des tableaux ................................................................................................................. 50 Bibliographie ...................................................................................................................51 Table des matière des annexes ............................................................................................ 55 Annexes...........................................................................................................................56 Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=100336

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