Apports et perspectives d’évolution des indicateurs qualité de l’hémoculture / Emilie Cardot Martin in Annales de Biologie Clinique, Vol. 77, n° 3 (Mai-juin 2019)

Public ISBD [article]  inAnnales de Biologie Clinique > Vol. 77, n° 3 (Mai-juin 2019) . - p.331-338 Titre : Apports et perspectives d’évolution des indicateurs qualité de l’hémoculture Type de document : texte imprimé Auteurs : Emilie Cardot Martin ; Pierre Martinucci ; Lucie Limousin ; Pierre Cahen ; Eric Farfour ; Marc Vasse ; Damien Mathonnet Année de publication : 2019 Article en page(s) : p.331-338 Langues : Français (fre) Mots-clés : Hemoculture  Qualité Résumé : Le suivi d’indicateurs qualité, associé à une analyse de risque détaillée, permet de valider le processus de l’hémoculture automatisée. Nous rapportons la méthodologie du suivi pendant 5 ans de 5 indicateurs au laboratoire de biologie médicale de l’hôpital Foch : volume de remplissage des flacons d’hémoculture, proportion de contamination, proportion de flacons positifs par automate et étuve, proportion des espèces bactériennes retrouvées et proportion de faux positifs analytiques. Les objectifs que nous nous sommes fixés pour chaque indicateur sont atteints à l’exception des volumes de remplissage des flacons d’hémocultures. L’analyse de ces résultats nous amène à discuter de l’évolution des indicateurs qualité et plus particulièrement la gestion de leur non-conformité, leur périodicité, leur pertinence ainsi que la nécessité d’affiner leurs résultats pour mener des actions ciblées. Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=80023 [article] Apports et perspectives d’évolution des indicateurs qualité de l’hémoculture [texte imprimé] / Emilie Cardot Martin ; Pierre Martinucci ; Lucie Limousin ; Pierre Cahen ; Eric Farfour ; Marc Vasse ; Damien Mathonnet . - 2019 . - p.331-338. Langues : Français (fre) in Annales de Biologie Clinique > Vol. 77, n° 3 (Mai-juin 2019) . - p.331-338 Mots-clés : Hemoculture  Qualité Résumé : Le suivi d’indicateurs qualité, associé à une analyse de risque détaillée, permet de valider le processus de l’hémoculture automatisée. Nous rapportons la méthodologie du suivi pendant 5 ans de 5 indicateurs au laboratoire de biologie médicale de l’hôpital Foch : volume de remplissage des flacons d’hémoculture, proportion de contamination, proportion de flacons positifs par automate et étuve, proportion des espèces bactériennes retrouvées et proportion de faux positifs analytiques. Les objectifs que nous nous sommes fixés pour chaque indicateur sont atteints à l’exception des volumes de remplissage des flacons d’hémocultures. L’analyse de ces résultats nous amène à discuter de l’évolution des indicateurs qualité et plus particulièrement la gestion de leur non-conformité, leur périodicité, leur pertinence ainsi que la nécessité d’affiner leurs résultats pour mener des actions ciblées. Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=80023

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Optimisation des durées d’incubation des milieux de culture en microbiologie / Eric Farfour in Annales de Biologie Clinique, Vol. 77, n° 5 (Septembre-octobre 2019)

Public ISBD [article]  inAnnales de Biologie Clinique > Vol. 77, n° 5 (Septembre-octobre 2019) . - p. 525-531 Titre : Optimisation des durées d’incubation des milieux de culture en microbiologie Type de document : texte imprimé Auteurs : Eric Farfour ; Didier Lecointe ; Pierre Cahen ; Emilie Cardot ; Amandine Henry ; Lucie Limousin ; Damien Mathonnet ; Marc Vasse ; Emilie Jolly Année de publication : 2019 Article en page(s) : p. 525-531 Note générale : https://www.jle.com/10.1684/abc.2019.1474 Langues : Français (fre) Mots-clés : Agrément  Hemoculture Résumé : Afin de réaliser les examens de biologie médicale, les laboratoires appliquent les instructions des fournisseurs de réactifs. Pour les milieux de cultures, celles-ci sont souvent incomplètes et peu adaptées à la diversité des prélèvements et des micro-organismes recherchés. Les préconisations du REMIC permettent de pallier ces lacunes. Des délais d’incubations établis en fonction de la nature du prélèvement et du type de micro-organisme recherché sont ainsi proposés. Néanmoins, ils sont le plus souvent exprimés en multiple de 24 heures et sont souvent considérés comme des durées minimales par les laboratoires. Les échantillons étant ensemencés « en continu », alors que les lectures sont effectuées le plus souvent à un moment unique défini de la journée, nous proposons une stratégie visant à optimiser les durées d’incubation des milieux. Une heure de mise en incubation dans la journée dite heure “limite” est définie. À partir de celle-ci les incubations sont arrêtées ou prolongées en fonction des résultats de la culture et de l’examen microscopique notamment. Les instructions des fournisseurs de milieux de culture étant peu adaptées, il apparaît nécessaire que ces fournisseurs s’appuient sur les référentiels des sociétés savantes comme c’est le cas pour les géloses utilisées dans le cadre de la réalisation de l’antibiogramme. Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=81908 [article] Optimisation des durées d’incubation des milieux de culture en microbiologie [texte imprimé] / Eric Farfour ; Didier Lecointe ; Pierre Cahen ; Emilie Cardot ; Amandine Henry ; Lucie Limousin ; Damien Mathonnet ; Marc Vasse ; Emilie Jolly . - 2019 . - p. 525-531. https://www.jle.com/10.1684/abc.2019.1474 Langues : Français (fre) in Annales de Biologie Clinique > Vol. 77, n° 5 (Septembre-octobre 2019) . - p. 525-531 Mots-clés : Agrément  Hemoculture Résumé : Afin de réaliser les examens de biologie médicale, les laboratoires appliquent les instructions des fournisseurs de réactifs. Pour les milieux de cultures, celles-ci sont souvent incomplètes et peu adaptées à la diversité des prélèvements et des micro-organismes recherchés. Les préconisations du REMIC permettent de pallier ces lacunes. Des délais d’incubations établis en fonction de la nature du prélèvement et du type de micro-organisme recherché sont ainsi proposés. Néanmoins, ils sont le plus souvent exprimés en multiple de 24 heures et sont souvent considérés comme des durées minimales par les laboratoires. Les échantillons étant ensemencés « en continu », alors que les lectures sont effectuées le plus souvent à un moment unique défini de la journée, nous proposons une stratégie visant à optimiser les durées d’incubation des milieux. Une heure de mise en incubation dans la journée dite heure “limite” est définie. À partir de celle-ci les incubations sont arrêtées ou prolongées en fonction des résultats de la culture et de l’examen microscopique notamment. Les instructions des fournisseurs de milieux de culture étant peu adaptées, il apparaît nécessaire que ces fournisseurs s’appuient sur les référentiels des sociétés savantes comme c’est le cas pour les géloses utilisées dans le cadre de la réalisation de l’antibiogramme. Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=81908

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