Centre de Documentation Campus Montignies
Horaires :
Lundi : 8h-18h30
Mardi : 8h-17h30
Mercredi 9h-16h30
Jeudi : 8h30-18h30
Vendredi : 8h30-12h30 et 13h-14h30
Votre centre de documentation sera exceptionnellement fermé de 12h30 à 13h ce lundi 18 novembre.
Egalement, il sera fermé de 12h30 à 13h30 ce mercredi 20 novembre.
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Auteur Rémy Demer |
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Etude des voies de sénescence induites lors de la sous-expression de UGT72A2 chez le peuplier / Rémy Demer
Titre : Etude des voies de sénescence induites lors de la sous-expression de UGT72A2 chez le peuplier Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Rémy Demer, Auteur ; Jenny Pouyez, Directeur de publication, rédacteur en chef Année de publication : 2019 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : Agronomie AIBT Index. décimale : TFE AIBT TFE Agro-industries et biotechnologies Note de contenu : Table des matières
REMERCIEMENTS ……………………………………………………………………………………………………………………………………………… 2
INTRODUCTION ........................................................................................................................................................ 9
1.INTRODUCTION THEORIQUE ............................................................................................................................... 11
1.1. LE PEUPLIER ........................................................................................................................................... 11
1.2. LES GLYCOSYLTRANSFERASES ..................................................................................................................... 11
1.3. LES UGT DE LA FAMILLE UGT72 ............................................................................................................... 12
1.4. IMPORTANCE DE LA SENESCENCE POUR LES ARBRES ........................................................................................ 13
1.5. SENESCENCE EN GENERAL ; PROCESSUS GENETIQUES, BIOCHIMIQUES ET DEVELOPPEMENTAUX ................................ 13
1.6. GENES ASSOCIES A LA SENESCENCE ............................................................................................................. 15
2.OBJECTIF DU TRAVAIL DE FIN D’ETUDE ............................................................................................................... 16
3.MATERIEL ET METHODES .................................................................................................................................... 17
3.1. MATERIEL BIOLOGIQUE ............................................................................................................................ 17
3.2. CULTURE IN VITRO ................................................................................................................................... 17
3.3. MATERIEL PRELEVE POUR LA CARACTERISATION DU PHENOTYPE DE SENESCENCE DANS LES LIGNEES RNAI500 ET WT . 18
3.4. EXTRACTION D’ARN DE FEUILLES DE PEUPLIER .............................................................................................. 19
3.5. LA TRANSCRIPTION INVERSE (RT) ............................................................................................................... 19
3.6. QPCR ................................................................................................................................................... 20
3.7. DOSAGE DE LA CHLOROPHYLLE ET DES CAROTENOIDES .................................................................................... 20
3.8. ACTIVITE PAL (PHENYLALANINE AMMONIA-LYASE) ........................................................................................ 20
3.9. ACTIVITE PEROXYDASE .............................................................................................................................. 21
3.10. PEROXYDATION DES LIPIDES....................................................................................................................... 22
3.11. ACTIVITE DU PROTEASOME 20S ................................................................................................................. 22
3.12. MESURE DU POUVOIR OXYDANT ................................................................................................................. 23
3.13. MESURE DE LA TENEUR EN POLYPHENOLS TOTAUX ......................................................................................... 23
3.14. TEST HISTOCHIMIQUE GUS ....................................................................................................................... 24
4.ANALYSE DES RESULTATS .................................................................................................................................... 25
4.1. CARACTERISATION DE L’EXPRESSION DU GENE UGT72A2 ............................................................................... 25
4.2. ANALYSE DES LIGNEES DE PEUPLIERS TRANSGENIQUES SOUS-EXPRIMANT UGT72A2 ............................................ 25
4.2.1. Phénotype global d’une lignée sous-exprimant UGT72A2 comparé au WT .................................. 25
4.2.2. Phénotype de sénescence précoce des feuilles de peupliers sous-exprimant RNAi500-04............ 26
4.2.3. Activité de la phénylalanine ammonia-lyase (PAL) ....................................................................... 27
4.2.4. Mesure de la concentration en anthocyanes ................................................................................ 28
4.3. ETUDE DES PROCESSUS ASSOCIÉS À UNE SÉNESCENCE DÉVELOPPEMENTALE ......................................................... 29
4.3.1. Mesure de la concentration relative en chlorophylle .................................................................... 29
4.3.2. Détermination de la concentration absolue en chlorophylle ......................................................... 30
4.3.3. Analyse du niveau d’expression des différents gènes marqueurs de la sénescence ...................... 31
4.3.3.1. SAG12 .................................................................................................................................................. 31
4.3.3.2. SAG 13 ................................................................................................................................................. 32
4.3.3.3. EIN3 ..................................................................................................................................................... 32
4.3.3.4. REV ...................................................................................................................................................... 33
4.3.4. Analyse de l’activité du protéasome 20S ....................................................................................... 34
4.4. STRESS OXYDATIF .................................................................................................................................... 35
4.4.1. Détermination du pouvoir antioxydant par la méthode DPPH ...................................................... 35
4.4.2. Dosage des polyphénols totaux ..................................................................................................... 37
4.4.3. Activité des peroxydases solubles .................................................................................................. 38
4.4.4. Peroxydation des lipides ................................................................................................................ 38
4.5. SELECTION DE LIGNEES SUR-EXPRIMANT UGT72A2....................................................................................... 39
5.DISCUSSION ........................................................................................................................................................ 41
5.1. LOCALISATION DE L’EXPRESSION DE UGT72A2 ............................................................................................. 41
5.2. LE PHENOTYPE FOLIAIRE OBSERVE CHEZ LES LIGNEES RNAI500-04 NE SEMBLE PAS LIE A UNE SENESCENCE
DEVELOPPEMENTALE. ............................................................................................................................................. 41
5.3. LE PHENOTYPE FOLIAIRE OBSERVE PEUT ETRE ASSOCIE A UNE BAISSE DE PIGMENTS................................................ 42
5.4. L’AUGMENTATION DE L’ACTIVITE PAL DANS LA LIGNEE RNAI500-04 SUGGERE UN STRESS OXYDATIF. ..................... 42
5.5. PROTEASOME 20S .................................................................................................................................. 42
5.6. STRESS OXYDATIF .................................................................................................................................... 43
CONCLUSION ET PERSPECTIVES ............................................................................................................................. 45
BIBLIOGRAPHIE ...................................................................................................................................................... 47
ANNEXES ................................................................................................................................................................ 49
ANNEXE N°1 : PROTOCOLE DE CULTURE IN VITRO ......................................................................................................... 49
ANNEXE N°2 : PROTOCOLE D’EXTRACTION D’ARN AVEC LE KIT AGILENT PLANT RNA ISOLATION MINI KIT ............................. 51
ANNEXE N°3 : PROTOCOLE REVERSE TRANSCRIPTASE AVEC LE KIT GOSCRIPT REVERSE TRANSCRIPTION MIX, OLIGO (DT) .......... 52
ANNEXE N°4 : PROTOCOLE QPCR AVEC LE KIT LUNA UNIVERSAL QPCR MASTER MIX ........................................................ 53
ANNEXE N°5 : AMORCE UTILISEE + REFERENCE GENE .................................................................................................... 54
ANNEXE N°6 : DOSAGE DE LA CHLOROPHYLLE ............................................................................................................. 54
ANNEXE N°7 : ACTIVITE PAL ................................................................................................................................... 55
ANNEXE N°8 : ACTIVITE PEROXYDASE ........................................................................................................................ 55
ANNEXE N°9 : PEROXYDATION DES LIPIDES ................................................................................................................. 56
ANNEXE N°10 : PROTOCOLE WESTERN BLOT SEMI-DRY ................................................................................................ 57
ANNEXE N°11 : PROTOCOLE DE DOSAGE DU POUVOIR ANTIOXYDANT PAR LA METHODE DPPH ............................................. 59
ANNEXE N°12 : DOSAGE DES POLYPHENOLS TOTAUX PAR LA METHODE DE FOLIN-CIOCALTEU............................................... 61
ANNEXE N°13 : COLORATION GUS .......................................................................................................................... 62
ANNEXE N°14 : PROTOCOLE BRADFORD .................................................................................................................... 63Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=79722 Etude des voies de sénescence induites lors de la sous-expression de UGT72A2 chez le peuplier [TFE / Mémoire] / Rémy Demer, Auteur ; Jenny Pouyez, Directeur de publication, rédacteur en chef . - 2019.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : Agronomie AIBT Index. décimale : TFE AIBT TFE Agro-industries et biotechnologies Note de contenu : Table des matières
REMERCIEMENTS ……………………………………………………………………………………………………………………………………………… 2
INTRODUCTION ........................................................................................................................................................ 9
1.INTRODUCTION THEORIQUE ............................................................................................................................... 11
1.1. LE PEUPLIER ........................................................................................................................................... 11
1.2. LES GLYCOSYLTRANSFERASES ..................................................................................................................... 11
1.3. LES UGT DE LA FAMILLE UGT72 ............................................................................................................... 12
1.4. IMPORTANCE DE LA SENESCENCE POUR LES ARBRES ........................................................................................ 13
1.5. SENESCENCE EN GENERAL ; PROCESSUS GENETIQUES, BIOCHIMIQUES ET DEVELOPPEMENTAUX ................................ 13
1.6. GENES ASSOCIES A LA SENESCENCE ............................................................................................................. 15
2.OBJECTIF DU TRAVAIL DE FIN D’ETUDE ............................................................................................................... 16
3.MATERIEL ET METHODES .................................................................................................................................... 17
3.1. MATERIEL BIOLOGIQUE ............................................................................................................................ 17
3.2. CULTURE IN VITRO ................................................................................................................................... 17
3.3. MATERIEL PRELEVE POUR LA CARACTERISATION DU PHENOTYPE DE SENESCENCE DANS LES LIGNEES RNAI500 ET WT . 18
3.4. EXTRACTION D’ARN DE FEUILLES DE PEUPLIER .............................................................................................. 19
3.5. LA TRANSCRIPTION INVERSE (RT) ............................................................................................................... 19
3.6. QPCR ................................................................................................................................................... 20
3.7. DOSAGE DE LA CHLOROPHYLLE ET DES CAROTENOIDES .................................................................................... 20
3.8. ACTIVITE PAL (PHENYLALANINE AMMONIA-LYASE) ........................................................................................ 20
3.9. ACTIVITE PEROXYDASE .............................................................................................................................. 21
3.10. PEROXYDATION DES LIPIDES....................................................................................................................... 22
3.11. ACTIVITE DU PROTEASOME 20S ................................................................................................................. 22
3.12. MESURE DU POUVOIR OXYDANT ................................................................................................................. 23
3.13. MESURE DE LA TENEUR EN POLYPHENOLS TOTAUX ......................................................................................... 23
3.14. TEST HISTOCHIMIQUE GUS ....................................................................................................................... 24
4.ANALYSE DES RESULTATS .................................................................................................................................... 25
4.1. CARACTERISATION DE L’EXPRESSION DU GENE UGT72A2 ............................................................................... 25
4.2. ANALYSE DES LIGNEES DE PEUPLIERS TRANSGENIQUES SOUS-EXPRIMANT UGT72A2 ............................................ 25
4.2.1. Phénotype global d’une lignée sous-exprimant UGT72A2 comparé au WT .................................. 25
4.2.2. Phénotype de sénescence précoce des feuilles de peupliers sous-exprimant RNAi500-04............ 26
4.2.3. Activité de la phénylalanine ammonia-lyase (PAL) ....................................................................... 27
4.2.4. Mesure de la concentration en anthocyanes ................................................................................ 28
4.3. ETUDE DES PROCESSUS ASSOCIÉS À UNE SÉNESCENCE DÉVELOPPEMENTALE ......................................................... 29
4.3.1. Mesure de la concentration relative en chlorophylle .................................................................... 29
4.3.2. Détermination de la concentration absolue en chlorophylle ......................................................... 30
4.3.3. Analyse du niveau d’expression des différents gènes marqueurs de la sénescence ...................... 31
4.3.3.1. SAG12 .................................................................................................................................................. 31
4.3.3.2. SAG 13 ................................................................................................................................................. 32
4.3.3.3. EIN3 ..................................................................................................................................................... 32
4.3.3.4. REV ...................................................................................................................................................... 33
4.3.4. Analyse de l’activité du protéasome 20S ....................................................................................... 34
4.4. STRESS OXYDATIF .................................................................................................................................... 35
4.4.1. Détermination du pouvoir antioxydant par la méthode DPPH ...................................................... 35
4.4.2. Dosage des polyphénols totaux ..................................................................................................... 37
4.4.3. Activité des peroxydases solubles .................................................................................................. 38
4.4.4. Peroxydation des lipides ................................................................................................................ 38
4.5. SELECTION DE LIGNEES SUR-EXPRIMANT UGT72A2....................................................................................... 39
5.DISCUSSION ........................................................................................................................................................ 41
5.1. LOCALISATION DE L’EXPRESSION DE UGT72A2 ............................................................................................. 41
5.2. LE PHENOTYPE FOLIAIRE OBSERVE CHEZ LES LIGNEES RNAI500-04 NE SEMBLE PAS LIE A UNE SENESCENCE
DEVELOPPEMENTALE. ............................................................................................................................................. 41
5.3. LE PHENOTYPE FOLIAIRE OBSERVE PEUT ETRE ASSOCIE A UNE BAISSE DE PIGMENTS................................................ 42
5.4. L’AUGMENTATION DE L’ACTIVITE PAL DANS LA LIGNEE RNAI500-04 SUGGERE UN STRESS OXYDATIF. ..................... 42
5.5. PROTEASOME 20S .................................................................................................................................. 42
5.6. STRESS OXYDATIF .................................................................................................................................... 43
CONCLUSION ET PERSPECTIVES ............................................................................................................................. 45
BIBLIOGRAPHIE ...................................................................................................................................................... 47
ANNEXES ................................................................................................................................................................ 49
ANNEXE N°1 : PROTOCOLE DE CULTURE IN VITRO ......................................................................................................... 49
ANNEXE N°2 : PROTOCOLE D’EXTRACTION D’ARN AVEC LE KIT AGILENT PLANT RNA ISOLATION MINI KIT ............................. 51
ANNEXE N°3 : PROTOCOLE REVERSE TRANSCRIPTASE AVEC LE KIT GOSCRIPT REVERSE TRANSCRIPTION MIX, OLIGO (DT) .......... 52
ANNEXE N°4 : PROTOCOLE QPCR AVEC LE KIT LUNA UNIVERSAL QPCR MASTER MIX ........................................................ 53
ANNEXE N°5 : AMORCE UTILISEE + REFERENCE GENE .................................................................................................... 54
ANNEXE N°6 : DOSAGE DE LA CHLOROPHYLLE ............................................................................................................. 54
ANNEXE N°7 : ACTIVITE PAL ................................................................................................................................... 55
ANNEXE N°8 : ACTIVITE PEROXYDASE ........................................................................................................................ 55
ANNEXE N°9 : PEROXYDATION DES LIPIDES ................................................................................................................. 56
ANNEXE N°10 : PROTOCOLE WESTERN BLOT SEMI-DRY ................................................................................................ 57
ANNEXE N°11 : PROTOCOLE DE DOSAGE DU POUVOIR ANTIOXYDANT PAR LA METHODE DPPH ............................................. 59
ANNEXE N°12 : DOSAGE DES POLYPHENOLS TOTAUX PAR LA METHODE DE FOLIN-CIOCALTEU............................................... 61
ANNEXE N°13 : COLORATION GUS .......................................................................................................................... 62
ANNEXE N°14 : PROTOCOLE BRADFORD .................................................................................................................... 63Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=79722 Exemplaires
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