Centre de Documentation Campus Montignies
Horaires :
Lundi : 8h-18h30
Mardi : 8h-18h30
Mercredi 9h-16h30
Jeudi : 8h-18h30
Vendredi : 8h-16h30
Attention,
Du 30 juin au 11 juillet l'horaire du centre de documentation sera réduit :
Nouvel horaire :
Lundi : 8h-12h30 / 13h-18h30
Mardi : 8h-18h30
Mercredi 9h-16h30
Jeudi : 8h-12h30/ 13h-18h30
Vendredi : 8h-12h30/ 13h-16h30
Egalement, votre centre de documentation sera exceptionnellement fermé ce mardi 1er juillet.
Lundi : 8h-18h30
Mardi : 8h-18h30
Mercredi 9h-16h30
Jeudi : 8h-18h30
Vendredi : 8h-16h30
Attention,
Du 30 juin au 11 juillet l'horaire du centre de documentation sera réduit :
Nouvel horaire :
Lundi : 8h-12h30 / 13h-18h30
Mardi : 8h-18h30
Mercredi 9h-16h30
Jeudi : 8h-12h30/ 13h-18h30
Vendredi : 8h-12h30/ 13h-16h30
Egalement, votre centre de documentation sera exceptionnellement fermé ce mardi 1er juillet.
Bienvenue sur le catalogue du centre de documentation du campus de Montignies.
Détail de l'auteur
Auteur Rémy Demer |
Documents disponibles écrits par cet auteur



Etude des voies de sénescence induites lors de la sous-expression de UGT72A2 chez le peuplier / Rémy Demer
Titre : Etude des voies de sénescence induites lors de la sous-expression de UGT72A2 chez le peuplier Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Rémy Demer, Auteur ; Jenny Pouyez, Directeur de publication, rédacteur en chef Année de publication : 2019 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : Agronomie AIBT Index. décimale : TFE AIBT TFE Agro-industries et biotechnologies Note de contenu : Table des matières
REMERCIEMENTS ……………………………………………………………………………………………………………………………………………… 2
INTRODUCTION ........................................................................................................................................................ 9
1.INTRODUCTION THEORIQUE ............................................................................................................................... 11
1.1. LE PEUPLIER ........................................................................................................................................... 11
1.2. LES GLYCOSYLTRANSFERASES ..................................................................................................................... 11
1.3. LES UGT DE LA FAMILLE UGT72 ............................................................................................................... 12
1.4. IMPORTANCE DE LA SENESCENCE POUR LES ARBRES ........................................................................................ 13
1.5. SENESCENCE EN GENERAL ; PROCESSUS GENETIQUES, BIOCHIMIQUES ET DEVELOPPEMENTAUX ................................ 13
1.6. GENES ASSOCIES A LA SENESCENCE ............................................................................................................. 15
2.OBJECTIF DU TRAVAIL DE FIN D’ETUDE ............................................................................................................... 16
3.MATERIEL ET METHODES .................................................................................................................................... 17
3.1. MATERIEL BIOLOGIQUE ............................................................................................................................ 17
3.2. CULTURE IN VITRO ................................................................................................................................... 17
3.3. MATERIEL PRELEVE POUR LA CARACTERISATION DU PHENOTYPE DE SENESCENCE DANS LES LIGNEES RNAI500 ET WT . 18
3.4. EXTRACTION D’ARN DE FEUILLES DE PEUPLIER .............................................................................................. 19
3.5. LA TRANSCRIPTION INVERSE (RT) ............................................................................................................... 19
3.6. QPCR ................................................................................................................................................... 20
3.7. DOSAGE DE LA CHLOROPHYLLE ET DES CAROTENOIDES .................................................................................... 20
3.8. ACTIVITE PAL (PHENYLALANINE AMMONIA-LYASE) ........................................................................................ 20
3.9. ACTIVITE PEROXYDASE .............................................................................................................................. 21
3.10. PEROXYDATION DES LIPIDES....................................................................................................................... 22
3.11. ACTIVITE DU PROTEASOME 20S ................................................................................................................. 22
3.12. MESURE DU POUVOIR OXYDANT ................................................................................................................. 23
3.13. MESURE DE LA TENEUR EN POLYPHENOLS TOTAUX ......................................................................................... 23
3.14. TEST HISTOCHIMIQUE GUS ....................................................................................................................... 24
4.ANALYSE DES RESULTATS .................................................................................................................................... 25
4.1. CARACTERISATION DE L’EXPRESSION DU GENE UGT72A2 ............................................................................... 25
4.2. ANALYSE DES LIGNEES DE PEUPLIERS TRANSGENIQUES SOUS-EXPRIMANT UGT72A2 ............................................ 25
4.2.1. Phénotype global d’une lignée sous-exprimant UGT72A2 comparé au WT .................................. 25
4.2.2. Phénotype de sénescence précoce des feuilles de peupliers sous-exprimant RNAi500-04............ 26
4.2.3. Activité de la phénylalanine ammonia-lyase (PAL) ....................................................................... 27
4.2.4. Mesure de la concentration en anthocyanes ................................................................................ 28
4.3. ETUDE DES PROCESSUS ASSOCIÉS À UNE SÉNESCENCE DÉVELOPPEMENTALE ......................................................... 29
4.3.1. Mesure de la concentration relative en chlorophylle .................................................................... 29
4.3.2. Détermination de la concentration absolue en chlorophylle ......................................................... 30
4.3.3. Analyse du niveau d’expression des différents gènes marqueurs de la sénescence ...................... 31
4.3.3.1. SAG12 .................................................................................................................................................. 31
4.3.3.2. SAG 13 ................................................................................................................................................. 32
4.3.3.3. EIN3 ..................................................................................................................................................... 32
4.3.3.4. REV ...................................................................................................................................................... 33
4.3.4. Analyse de l’activité du protéasome 20S ....................................................................................... 34
4.4. STRESS OXYDATIF .................................................................................................................................... 35
4.4.1. Détermination du pouvoir antioxydant par la méthode DPPH ...................................................... 35
4.4.2. Dosage des polyphénols totaux ..................................................................................................... 37
4.4.3. Activité des peroxydases solubles .................................................................................................. 38
4.4.4. Peroxydation des lipides ................................................................................................................ 38
4.5. SELECTION DE LIGNEES SUR-EXPRIMANT UGT72A2....................................................................................... 39
5.DISCUSSION ........................................................................................................................................................ 41
5.1. LOCALISATION DE L’EXPRESSION DE UGT72A2 ............................................................................................. 41
5.2. LE PHENOTYPE FOLIAIRE OBSERVE CHEZ LES LIGNEES RNAI500-04 NE SEMBLE PAS LIE A UNE SENESCENCE
DEVELOPPEMENTALE. ............................................................................................................................................. 41
5.3. LE PHENOTYPE FOLIAIRE OBSERVE PEUT ETRE ASSOCIE A UNE BAISSE DE PIGMENTS................................................ 42
5.4. L’AUGMENTATION DE L’ACTIVITE PAL DANS LA LIGNEE RNAI500-04 SUGGERE UN STRESS OXYDATIF. ..................... 42
5.5. PROTEASOME 20S .................................................................................................................................. 42
5.6. STRESS OXYDATIF .................................................................................................................................... 43
CONCLUSION ET PERSPECTIVES ............................................................................................................................. 45
BIBLIOGRAPHIE ...................................................................................................................................................... 47
ANNEXES ................................................................................................................................................................ 49
ANNEXE N°1 : PROTOCOLE DE CULTURE IN VITRO ......................................................................................................... 49
ANNEXE N°2 : PROTOCOLE D’EXTRACTION D’ARN AVEC LE KIT AGILENT PLANT RNA ISOLATION MINI KIT ............................. 51
ANNEXE N°3 : PROTOCOLE REVERSE TRANSCRIPTASE AVEC LE KIT GOSCRIPT REVERSE TRANSCRIPTION MIX, OLIGO (DT) .......... 52
ANNEXE N°4 : PROTOCOLE QPCR AVEC LE KIT LUNA UNIVERSAL QPCR MASTER MIX ........................................................ 53
ANNEXE N°5 : AMORCE UTILISEE + REFERENCE GENE .................................................................................................... 54
ANNEXE N°6 : DOSAGE DE LA CHLOROPHYLLE ............................................................................................................. 54
ANNEXE N°7 : ACTIVITE PAL ................................................................................................................................... 55
ANNEXE N°8 : ACTIVITE PEROXYDASE ........................................................................................................................ 55
ANNEXE N°9 : PEROXYDATION DES LIPIDES ................................................................................................................. 56
ANNEXE N°10 : PROTOCOLE WESTERN BLOT SEMI-DRY ................................................................................................ 57
ANNEXE N°11 : PROTOCOLE DE DOSAGE DU POUVOIR ANTIOXYDANT PAR LA METHODE DPPH ............................................. 59
ANNEXE N°12 : DOSAGE DES POLYPHENOLS TOTAUX PAR LA METHODE DE FOLIN-CIOCALTEU............................................... 61
ANNEXE N°13 : COLORATION GUS .......................................................................................................................... 62
ANNEXE N°14 : PROTOCOLE BRADFORD .................................................................................................................... 63Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=79722 Etude des voies de sénescence induites lors de la sous-expression de UGT72A2 chez le peuplier [TFE / Mémoire] / Rémy Demer, Auteur ; Jenny Pouyez, Directeur de publication, rédacteur en chef . - 2019.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : Agronomie AIBT Index. décimale : TFE AIBT TFE Agro-industries et biotechnologies Note de contenu : Table des matières
REMERCIEMENTS ……………………………………………………………………………………………………………………………………………… 2
INTRODUCTION ........................................................................................................................................................ 9
1.INTRODUCTION THEORIQUE ............................................................................................................................... 11
1.1. LE PEUPLIER ........................................................................................................................................... 11
1.2. LES GLYCOSYLTRANSFERASES ..................................................................................................................... 11
1.3. LES UGT DE LA FAMILLE UGT72 ............................................................................................................... 12
1.4. IMPORTANCE DE LA SENESCENCE POUR LES ARBRES ........................................................................................ 13
1.5. SENESCENCE EN GENERAL ; PROCESSUS GENETIQUES, BIOCHIMIQUES ET DEVELOPPEMENTAUX ................................ 13
1.6. GENES ASSOCIES A LA SENESCENCE ............................................................................................................. 15
2.OBJECTIF DU TRAVAIL DE FIN D’ETUDE ............................................................................................................... 16
3.MATERIEL ET METHODES .................................................................................................................................... 17
3.1. MATERIEL BIOLOGIQUE ............................................................................................................................ 17
3.2. CULTURE IN VITRO ................................................................................................................................... 17
3.3. MATERIEL PRELEVE POUR LA CARACTERISATION DU PHENOTYPE DE SENESCENCE DANS LES LIGNEES RNAI500 ET WT . 18
3.4. EXTRACTION D’ARN DE FEUILLES DE PEUPLIER .............................................................................................. 19
3.5. LA TRANSCRIPTION INVERSE (RT) ............................................................................................................... 19
3.6. QPCR ................................................................................................................................................... 20
3.7. DOSAGE DE LA CHLOROPHYLLE ET DES CAROTENOIDES .................................................................................... 20
3.8. ACTIVITE PAL (PHENYLALANINE AMMONIA-LYASE) ........................................................................................ 20
3.9. ACTIVITE PEROXYDASE .............................................................................................................................. 21
3.10. PEROXYDATION DES LIPIDES....................................................................................................................... 22
3.11. ACTIVITE DU PROTEASOME 20S ................................................................................................................. 22
3.12. MESURE DU POUVOIR OXYDANT ................................................................................................................. 23
3.13. MESURE DE LA TENEUR EN POLYPHENOLS TOTAUX ......................................................................................... 23
3.14. TEST HISTOCHIMIQUE GUS ....................................................................................................................... 24
4.ANALYSE DES RESULTATS .................................................................................................................................... 25
4.1. CARACTERISATION DE L’EXPRESSION DU GENE UGT72A2 ............................................................................... 25
4.2. ANALYSE DES LIGNEES DE PEUPLIERS TRANSGENIQUES SOUS-EXPRIMANT UGT72A2 ............................................ 25
4.2.1. Phénotype global d’une lignée sous-exprimant UGT72A2 comparé au WT .................................. 25
4.2.2. Phénotype de sénescence précoce des feuilles de peupliers sous-exprimant RNAi500-04............ 26
4.2.3. Activité de la phénylalanine ammonia-lyase (PAL) ....................................................................... 27
4.2.4. Mesure de la concentration en anthocyanes ................................................................................ 28
4.3. ETUDE DES PROCESSUS ASSOCIÉS À UNE SÉNESCENCE DÉVELOPPEMENTALE ......................................................... 29
4.3.1. Mesure de la concentration relative en chlorophylle .................................................................... 29
4.3.2. Détermination de la concentration absolue en chlorophylle ......................................................... 30
4.3.3. Analyse du niveau d’expression des différents gènes marqueurs de la sénescence ...................... 31
4.3.3.1. SAG12 .................................................................................................................................................. 31
4.3.3.2. SAG 13 ................................................................................................................................................. 32
4.3.3.3. EIN3 ..................................................................................................................................................... 32
4.3.3.4. REV ...................................................................................................................................................... 33
4.3.4. Analyse de l’activité du protéasome 20S ....................................................................................... 34
4.4. STRESS OXYDATIF .................................................................................................................................... 35
4.4.1. Détermination du pouvoir antioxydant par la méthode DPPH ...................................................... 35
4.4.2. Dosage des polyphénols totaux ..................................................................................................... 37
4.4.3. Activité des peroxydases solubles .................................................................................................. 38
4.4.4. Peroxydation des lipides ................................................................................................................ 38
4.5. SELECTION DE LIGNEES SUR-EXPRIMANT UGT72A2....................................................................................... 39
5.DISCUSSION ........................................................................................................................................................ 41
5.1. LOCALISATION DE L’EXPRESSION DE UGT72A2 ............................................................................................. 41
5.2. LE PHENOTYPE FOLIAIRE OBSERVE CHEZ LES LIGNEES RNAI500-04 NE SEMBLE PAS LIE A UNE SENESCENCE
DEVELOPPEMENTALE. ............................................................................................................................................. 41
5.3. LE PHENOTYPE FOLIAIRE OBSERVE PEUT ETRE ASSOCIE A UNE BAISSE DE PIGMENTS................................................ 42
5.4. L’AUGMENTATION DE L’ACTIVITE PAL DANS LA LIGNEE RNAI500-04 SUGGERE UN STRESS OXYDATIF. ..................... 42
5.5. PROTEASOME 20S .................................................................................................................................. 42
5.6. STRESS OXYDATIF .................................................................................................................................... 43
CONCLUSION ET PERSPECTIVES ............................................................................................................................. 45
BIBLIOGRAPHIE ...................................................................................................................................................... 47
ANNEXES ................................................................................................................................................................ 49
ANNEXE N°1 : PROTOCOLE DE CULTURE IN VITRO ......................................................................................................... 49
ANNEXE N°2 : PROTOCOLE D’EXTRACTION D’ARN AVEC LE KIT AGILENT PLANT RNA ISOLATION MINI KIT ............................. 51
ANNEXE N°3 : PROTOCOLE REVERSE TRANSCRIPTASE AVEC LE KIT GOSCRIPT REVERSE TRANSCRIPTION MIX, OLIGO (DT) .......... 52
ANNEXE N°4 : PROTOCOLE QPCR AVEC LE KIT LUNA UNIVERSAL QPCR MASTER MIX ........................................................ 53
ANNEXE N°5 : AMORCE UTILISEE + REFERENCE GENE .................................................................................................... 54
ANNEXE N°6 : DOSAGE DE LA CHLOROPHYLLE ............................................................................................................. 54
ANNEXE N°7 : ACTIVITE PAL ................................................................................................................................... 55
ANNEXE N°8 : ACTIVITE PEROXYDASE ........................................................................................................................ 55
ANNEXE N°9 : PEROXYDATION DES LIPIDES ................................................................................................................. 56
ANNEXE N°10 : PROTOCOLE WESTERN BLOT SEMI-DRY ................................................................................................ 57
ANNEXE N°11 : PROTOCOLE DE DOSAGE DU POUVOIR ANTIOXYDANT PAR LA METHODE DPPH ............................................. 59
ANNEXE N°12 : DOSAGE DES POLYPHENOLS TOTAUX PAR LA METHODE DE FOLIN-CIOCALTEU............................................... 61
ANNEXE N°13 : COLORATION GUS .......................................................................................................................... 62
ANNEXE N°14 : PROTOCOLE BRADFORD .................................................................................................................... 63Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=79722 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire