Centre de Documentation Campus Montignies
Horaires :
Lundi : 8h-18h30
Mardi : 8h-17h30
Mercredi 9h-16h30
Jeudi : 8h30-18h30
Vendredi : 8h30-12h30 et 13h-14h30
Votre centre de documentation sera exceptionnellement fermé de 12h30 à 13h ce lundi 18 novembre.
Egalement, il sera fermé de 12h30 à 13h30 ce mercredi 20 novembre.
Lundi : 8h-18h30
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Mercredi 9h-16h30
Jeudi : 8h30-18h30
Vendredi : 8h30-12h30 et 13h-14h30
Votre centre de documentation sera exceptionnellement fermé de 12h30 à 13h ce lundi 18 novembre.
Egalement, il sera fermé de 12h30 à 13h30 ce mercredi 20 novembre.
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Auteur Françoise Motte |
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Titre : Bilan de reconstruction posturale® fiabilité inter-observateurs : Evaluation de la déformation du thorax dite en "boîte d'alumettes" Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Cindy Hugel, Auteur ; Michaël Nisand, Directeur de la recherche ; Françoise Motte, Directeur de la recherche Editeur : Montignies-sur-Sambre : Haute Ecole Charleroi Europe Année de publication : 2009 Importance : 23 p. Format : 30 cm Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : rééducation massage Index. décimale : MK Mémoire Kinésithérapie Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=1717 Bilan de reconstruction posturale® fiabilité inter-observateurs : Evaluation de la déformation du thorax dite en "boîte d'alumettes" [TFE / Mémoire] / Cindy Hugel, Auteur ; Michaël Nisand, Directeur de la recherche ; Françoise Motte, Directeur de la recherche . - Montignies-sur-Sambre : Haute Ecole Charleroi Europe, 2009 . - 23 p. ; 30 cm.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : rééducation massage Index. décimale : MK Mémoire Kinésithérapie Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=1717 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Caractérisation antivirale par test MTS de surfaces produites par pulvérisation cathodique magnétron / Mathilde Borgnet
Titre : Caractérisation antivirale par test MTS de surfaces produites par pulvérisation cathodique magnétron Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Mathilde Borgnet ; Françoise Motte, Directeur de la recherche Editeur : Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale Année de publication : 2024 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Les infections nosocomiales, qu’elles soient bactériennes ou virales, sont un large problème au sein de tous les hôpitaux et centres de soins. Une solution afin de contrer ce type d’infections à donc été investiguée. Une des solutions possibles serait de pouvoir créer des surfaces qui auraient les propriétés d’être antimicrobiennes. Des tests ont été réalisés et l’élaboration de ce genre de surfaces a vu le jour. Les surfaces créées ici à l’Université de Namur, par monsieur Valentin Job, sont produites par un procédé physique en phase vapeur, prénommé la pulvérisation cathodique magnétron. Ce procédé consiste en un dépôt d’un film mince, ayant des propriétés antimicrobiennes, sur des matériaux présents dans les hôpitaux, telles que des poignées de portes, des barres de lit,… Pour pouvoir réaliser et quantifier l’efficacité de ces revêtements, plusieurs tests ont été réalisés envers des bactéries, donnant des résultats prometteurs. Suite à cela, il est important de réaliser d’autres tests afin d’également tester leur efficacité, mais cette fois-ci envers des virus. Le type de virus choisi pour réaliser nos expériences s’est porté sur le PRCV, qui est le Coronavirus respiratoire porcin. Pour travailler avec des virus, l’utilisation de cellules est requise. Travaillant avec un virus porcin, ayant un tropisme pour les cellules de porc, ce sont les cellules ST qui ont été choisies. Les cellules ST sont des cellules de type fibroblastes de testicules de porc. Le test de référence afin de calculer un titre viral est appelé le test aux dilutions limites. Ce test est cependant assez complexe et fastidieux dans sa réalisation. Un nouveau test a donc été mis en place et optimisé ; le test MTS. Suite à cette optimisation, mon travail consistait à quantifier l’effet antiviral de différentes compositions de revêtements. Pour ce faire, une solution virale de concentration connue est déposée sur ces derniers, et est ensuite reprise après un certain temps. Le but réside ensuite dans la quantification de cette concentration virale restante de nos échantillons afin de pouvoir comparer l’efficacité de nos revêtements. Note de contenu : Table des matières
Présentation du lieu de stage .................................................................................................... 6
Introduction générale ................................................................................................................ 7
1. Contexte : ........................................................................................................................... 9
1.1. Les Microorganismes ................................................................................................. 9
2. Problématique .................................................................................................................. 10
2.1. Les infections nosocomiales .................................................................................... 10
2.2. Modes de transmission : .......................................................................................... 12
2.3. Traitement de ces infections ................................................................................... 14
2.4. Les infections nosocomiales liées aux virus ............................................................. 15
3. Solution ............................................................................................................................. 17
3.1. Élaboration de surfaces antimicrobiennes .............................................................. 17
3.2. Mécanisme d’action des films antimicrobiens ........................................................ 17
3.3. Composition de la surface ....................................................................................... 18
3.4. Mécanismes d’action des nanoparticules ............................................................... 20
3.4.1. Mécanisme antibactérien ................................................................................ 20
3.4.2. Mécanisme antiviral......................................................................................... 21
4. Technique ......................................................................................................................... 22
4.1. Pulvérisation cathodique magnétron ...................................................................... 22
5. Objectifs et stratégie ........................................................................................................ 24
6. Matériels et méthodes ..................................................................................................... 25
6.1. Le virus : coronavirus respiratoire porcin ................................................................ 25
6.2. Production de virus .................................................................................................. 26
6.3. Type de cellules ........................................................................................................ 27
6.4. La décomplémentation du FBS ................................................................................ 29
6
6.5. La décongélation des cellules .................................................................................. 29
6.6. Le passage des cellules ............................................................................................ 30
6.7. Méthodes pour déterminer un titre viral ................................................................ 32
6.7.1. L’effet cytopathique ......................................................................................... 33
6.7.2. Titration par méthode aux dilutions limites .................................................... 33
6.7.3. Le Test MTS ...................................................................................................... 36
6.8. Optimisation du test MTS ........................................................................................ 40
6.9. Exemple d’un plan de plaque idéal .......................................................................... 43
7. Résultats ........................................................................................................................... 45
7.1. Production de surfaces ............................................................................................ 45
7.2. Production de virus .................................................................................................. 45
7.3. Détermination de la courbe de la charge virale ...................................................... 47
7.4. Tests sur surfaces de carbone (N=1) ........................................................................ 48
7.5. Tests sur surfaces de carbone (N=2 et 3) ................................................................ 51
7.5.1. 2e série : ........................................................................................................... 51
7.5.2. Calibration : ...................................................................................................... 52
7.5.3. 3e série : ........................................................................................................... 54
7.5.4. Calibration : ...................................................................................................... 54
7.6. Tests sur Contrôles................................................................................................... 56
8. Conclusion et perspectives .................................................................................................. 60Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=119417 Caractérisation antivirale par test MTS de surfaces produites par pulvérisation cathodique magnétron [TFE / Mémoire] / Mathilde Borgnet ; Françoise Motte, Directeur de la recherche . - Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale, 2024.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur
Langues : Français (fre)
Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Les infections nosocomiales, qu’elles soient bactériennes ou virales, sont un large problème au sein de tous les hôpitaux et centres de soins. Une solution afin de contrer ce type d’infections à donc été investiguée. Une des solutions possibles serait de pouvoir créer des surfaces qui auraient les propriétés d’être antimicrobiennes. Des tests ont été réalisés et l’élaboration de ce genre de surfaces a vu le jour. Les surfaces créées ici à l’Université de Namur, par monsieur Valentin Job, sont produites par un procédé physique en phase vapeur, prénommé la pulvérisation cathodique magnétron. Ce procédé consiste en un dépôt d’un film mince, ayant des propriétés antimicrobiennes, sur des matériaux présents dans les hôpitaux, telles que des poignées de portes, des barres de lit,… Pour pouvoir réaliser et quantifier l’efficacité de ces revêtements, plusieurs tests ont été réalisés envers des bactéries, donnant des résultats prometteurs. Suite à cela, il est important de réaliser d’autres tests afin d’également tester leur efficacité, mais cette fois-ci envers des virus. Le type de virus choisi pour réaliser nos expériences s’est porté sur le PRCV, qui est le Coronavirus respiratoire porcin. Pour travailler avec des virus, l’utilisation de cellules est requise. Travaillant avec un virus porcin, ayant un tropisme pour les cellules de porc, ce sont les cellules ST qui ont été choisies. Les cellules ST sont des cellules de type fibroblastes de testicules de porc. Le test de référence afin de calculer un titre viral est appelé le test aux dilutions limites. Ce test est cependant assez complexe et fastidieux dans sa réalisation. Un nouveau test a donc été mis en place et optimisé ; le test MTS. Suite à cette optimisation, mon travail consistait à quantifier l’effet antiviral de différentes compositions de revêtements. Pour ce faire, une solution virale de concentration connue est déposée sur ces derniers, et est ensuite reprise après un certain temps. Le but réside ensuite dans la quantification de cette concentration virale restante de nos échantillons afin de pouvoir comparer l’efficacité de nos revêtements. Note de contenu : Table des matières
Présentation du lieu de stage .................................................................................................... 6
Introduction générale ................................................................................................................ 7
1. Contexte : ........................................................................................................................... 9
1.1. Les Microorganismes ................................................................................................. 9
2. Problématique .................................................................................................................. 10
2.1. Les infections nosocomiales .................................................................................... 10
2.2. Modes de transmission : .......................................................................................... 12
2.3. Traitement de ces infections ................................................................................... 14
2.4. Les infections nosocomiales liées aux virus ............................................................. 15
3. Solution ............................................................................................................................. 17
3.1. Élaboration de surfaces antimicrobiennes .............................................................. 17
3.2. Mécanisme d’action des films antimicrobiens ........................................................ 17
3.3. Composition de la surface ....................................................................................... 18
3.4. Mécanismes d’action des nanoparticules ............................................................... 20
3.4.1. Mécanisme antibactérien ................................................................................ 20
3.4.2. Mécanisme antiviral......................................................................................... 21
4. Technique ......................................................................................................................... 22
4.1. Pulvérisation cathodique magnétron ...................................................................... 22
5. Objectifs et stratégie ........................................................................................................ 24
6. Matériels et méthodes ..................................................................................................... 25
6.1. Le virus : coronavirus respiratoire porcin ................................................................ 25
6.2. Production de virus .................................................................................................. 26
6.3. Type de cellules ........................................................................................................ 27
6.4. La décomplémentation du FBS ................................................................................ 29
6
6.5. La décongélation des cellules .................................................................................. 29
6.6. Le passage des cellules ............................................................................................ 30
6.7. Méthodes pour déterminer un titre viral ................................................................ 32
6.7.1. L’effet cytopathique ......................................................................................... 33
6.7.2. Titration par méthode aux dilutions limites .................................................... 33
6.7.3. Le Test MTS ...................................................................................................... 36
6.8. Optimisation du test MTS ........................................................................................ 40
6.9. Exemple d’un plan de plaque idéal .......................................................................... 43
7. Résultats ........................................................................................................................... 45
7.1. Production de surfaces ............................................................................................ 45
7.2. Production de virus .................................................................................................. 45
7.3. Détermination de la courbe de la charge virale ...................................................... 47
7.4. Tests sur surfaces de carbone (N=1) ........................................................................ 48
7.5. Tests sur surfaces de carbone (N=2 et 3) ................................................................ 51
7.5.1. 2e série : ........................................................................................................... 51
7.5.2. Calibration : ...................................................................................................... 52
7.5.3. 3e série : ........................................................................................................... 54
7.5.4. Calibration : ...................................................................................................... 54
7.6. Tests sur Contrôles................................................................................................... 56
8. Conclusion et perspectives .................................................................................................. 60Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=119417 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire
Titre : Caractérisation, modification et utilisation de lignées cellulaires cancéreuses, modèles de recherche contre le cancer Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Ninon Ghys, Auteur ; Françoise Motte, Directeur de la recherche Editeur : Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale Année de publication : 2023 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteurLe fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur . Langues : Français (fre) Mots-clés : Centre de Recherche en Cancérologie de Marseille Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : La leucémie myéloïde aigüe (LMA) est une forme sévère de cancer de type hémopathie maligne affectant les cellules hématopoïétiques de la moelle osseuse. Cette maladie est la plus fréquente des leucémies aigües de l’adulte avec une médiane d’âge de 68 ans. Le traitement initial repose sur de la chimiothérapie associée, dans certains cas, à une greffe de moelle osseuse. Ces traitements ont permis d’améliorer la survie des patients. Cependant, le
taux de rechute de cette pathologie reste important. Chez les patients de plus de 60 ans, la survie à 5 ans est de 40 à 50 %. Face à ces résultats, il est primordial de trouver de nouvelles approches thérapeutiques afin d’augmenter les chances de guérison.
Les lignées cellulaires cancéreuses sont des modèles utilisés dans le développement de médicaments anti-cancéreux. Ce sont des modèles simples, qui sont facilement cultivables et qui ont des caractéristiques précises et connues. Chaque lignée est issue d’un donneur et d’un type de cancer spécifique. Cependant, ces cellules ont une tendance à muter rapidement, peuvent être sujettes à des contaminations microbiennes, être mal identifiées et dans certains cas, des contaminations croisées de lignées ont lieu. Ces différents points impliquent un contrôle important de la qualité de ces cellules afin qu’elles restent fidèles à leurs caractéristiques de départ.
D’autre part, certaines techniques utilisées au laboratoire impliquent des modifications de ces cellules ou de certaines molécules pour les rendre détectables.
Ceci implique en amont de la recherche un suivi de la qualité et la création de ce matériel biologique et chimique spécifique.
Ce travail est composé de 3 volets.
Le premier est l’authentification de lignées cellulaires cancéreuses via un génotypage des courtes séquences d’ADN en tandem.
Le deuxième volet est axé sur l’obtention d’une lignée cellulaire bioluminescente détectable en temps réel in vivo et fluorescente via une transduction par un lentivirus. Afin de pouvoir utiliser cette nouvelle lignée dans le futur, les cellules sont triées et l’expression des gènes rapporteurs est suivie au cours du temps afin d’évaluer leur stabilité. Pour finir, des tests de cytotoxicité à des drogues de référence sont effectués sur la lignée modifiée et la lignée parentale afin de vérifier que la modification génétique ne modifie pas la réponse cellulaire.
Enfin, le dernier volet concerne l’utilisation d’une lignée cellulaire pour caractériser une molécule anti-cancéreuse. Cette dernière a été modifiée par une équipe du laboratoire pour la rendre détectable par cytométrie en flux et par microscopie optique. Cependant, l’ajout du groupement permettant cette application ne doit pas modifier l’effet de cette molécule.
Plusieurs tests in vitro et in vivo sont effectués afin de s’en assurer. Dans ce contexte, nous nous sommes chargés de tester l’activité des caspases -3/7 en comparant l’effet de la molécule de départ et de la molécule modifiée à différentes concentrations.Note de contenu : Table des matières
Présentation du lieu de stage ............................................................................................. 5
Introduction ....................................................................................................................... 6
1. Contexte théorique ..................................................................................................... 8
1.1 Le cancer.............................................................................................................................. 8
1.1.1 Le cancer, qu’est-ce que c’est ? ..........................................................................................8
1.1.2 Le cancer en quelques chiffres ...........................................................................................8
1.2.3 La leucémie .........................................................................................................................9
1.2.3 La leucémie myéloïde aigüe ..............................................................................................11
1.2 L’apoptose ......................................................................................................................... 16
2. Matériels et méthodes ................................................................................................ 19
2.1 Culture cellulaire ................................................................................................................ 19
2.1.1 Généralités ........................................................................................................................19
2.1.2 Décongélation ...................................................................................................................20
2.1.3 Passage et comptage de cellules ......................................................................................20
......................................................................................................................................................23
* ....................................................................................................................................................23
2.1.4 Congélation .......................................................................................................................23
2.1.5 Détection de mycoplasmes ...............................................................................................24
2.2 Authentification ................................................................................................................. 25
2.3 Transduction ..................................................................................................................... 30
2.4 Cytométrie en flux ............................................................................................................. 31
2.5 Imagerie par bioluminescence ........................................................................................... 34
2.6 Test de cytotoxicité ............................................................................................................ 37
2.7 Mesure de l’activité des caspases -3/7 ............................................................................... 40
3. Résultats et discussion ................................................................................................ 41
3.1 Authentification ................................................................................................................ 41
3.2 Création de la lignée MOLM-13 bioluminescente ............................................................... 45
3.2.1 Contrôle de la stabilité des gènes transduits ....................................................................48
3.2.2 Tests de cytotoxicité .........................................................................................................54
3.2.3 Perspectives ......................................................................................................................56
3.3 Comparaison de l’activité des caspases -3/7 induite par le Melphalan et le Melphalan click
sur les cellules HeLa .................................................................................................................. 57
4. Conclusion .................................................................................................................. 59
Bibliographie .................................................................................................................... 60
Annexes ........................................................................................................................... 64Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=113432 Caractérisation, modification et utilisation de lignées cellulaires cancéreuses, modèles de recherche contre le cancer [TFE / Mémoire] / Ninon Ghys, Auteur ; Françoise Motte, Directeur de la recherche . - Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale, 2023.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteurLe fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur .
Langues : Français (fre)
Mots-clés : Centre de Recherche en Cancérologie de Marseille Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : La leucémie myéloïde aigüe (LMA) est une forme sévère de cancer de type hémopathie maligne affectant les cellules hématopoïétiques de la moelle osseuse. Cette maladie est la plus fréquente des leucémies aigües de l’adulte avec une médiane d’âge de 68 ans. Le traitement initial repose sur de la chimiothérapie associée, dans certains cas, à une greffe de moelle osseuse. Ces traitements ont permis d’améliorer la survie des patients. Cependant, le
taux de rechute de cette pathologie reste important. Chez les patients de plus de 60 ans, la survie à 5 ans est de 40 à 50 %. Face à ces résultats, il est primordial de trouver de nouvelles approches thérapeutiques afin d’augmenter les chances de guérison.
Les lignées cellulaires cancéreuses sont des modèles utilisés dans le développement de médicaments anti-cancéreux. Ce sont des modèles simples, qui sont facilement cultivables et qui ont des caractéristiques précises et connues. Chaque lignée est issue d’un donneur et d’un type de cancer spécifique. Cependant, ces cellules ont une tendance à muter rapidement, peuvent être sujettes à des contaminations microbiennes, être mal identifiées et dans certains cas, des contaminations croisées de lignées ont lieu. Ces différents points impliquent un contrôle important de la qualité de ces cellules afin qu’elles restent fidèles à leurs caractéristiques de départ.
D’autre part, certaines techniques utilisées au laboratoire impliquent des modifications de ces cellules ou de certaines molécules pour les rendre détectables.
Ceci implique en amont de la recherche un suivi de la qualité et la création de ce matériel biologique et chimique spécifique.
Ce travail est composé de 3 volets.
Le premier est l’authentification de lignées cellulaires cancéreuses via un génotypage des courtes séquences d’ADN en tandem.
Le deuxième volet est axé sur l’obtention d’une lignée cellulaire bioluminescente détectable en temps réel in vivo et fluorescente via une transduction par un lentivirus. Afin de pouvoir utiliser cette nouvelle lignée dans le futur, les cellules sont triées et l’expression des gènes rapporteurs est suivie au cours du temps afin d’évaluer leur stabilité. Pour finir, des tests de cytotoxicité à des drogues de référence sont effectués sur la lignée modifiée et la lignée parentale afin de vérifier que la modification génétique ne modifie pas la réponse cellulaire.
Enfin, le dernier volet concerne l’utilisation d’une lignée cellulaire pour caractériser une molécule anti-cancéreuse. Cette dernière a été modifiée par une équipe du laboratoire pour la rendre détectable par cytométrie en flux et par microscopie optique. Cependant, l’ajout du groupement permettant cette application ne doit pas modifier l’effet de cette molécule.
Plusieurs tests in vitro et in vivo sont effectués afin de s’en assurer. Dans ce contexte, nous nous sommes chargés de tester l’activité des caspases -3/7 en comparant l’effet de la molécule de départ et de la molécule modifiée à différentes concentrations.Note de contenu : Table des matières
Présentation du lieu de stage ............................................................................................. 5
Introduction ....................................................................................................................... 6
1. Contexte théorique ..................................................................................................... 8
1.1 Le cancer.............................................................................................................................. 8
1.1.1 Le cancer, qu’est-ce que c’est ? ..........................................................................................8
1.1.2 Le cancer en quelques chiffres ...........................................................................................8
1.2.3 La leucémie .........................................................................................................................9
1.2.3 La leucémie myéloïde aigüe ..............................................................................................11
1.2 L’apoptose ......................................................................................................................... 16
2. Matériels et méthodes ................................................................................................ 19
2.1 Culture cellulaire ................................................................................................................ 19
2.1.1 Généralités ........................................................................................................................19
2.1.2 Décongélation ...................................................................................................................20
2.1.3 Passage et comptage de cellules ......................................................................................20
......................................................................................................................................................23
* ....................................................................................................................................................23
2.1.4 Congélation .......................................................................................................................23
2.1.5 Détection de mycoplasmes ...............................................................................................24
2.2 Authentification ................................................................................................................. 25
2.3 Transduction ..................................................................................................................... 30
2.4 Cytométrie en flux ............................................................................................................. 31
2.5 Imagerie par bioluminescence ........................................................................................... 34
2.6 Test de cytotoxicité ............................................................................................................ 37
2.7 Mesure de l’activité des caspases -3/7 ............................................................................... 40
3. Résultats et discussion ................................................................................................ 41
3.1 Authentification ................................................................................................................ 41
3.2 Création de la lignée MOLM-13 bioluminescente ............................................................... 45
3.2.1 Contrôle de la stabilité des gènes transduits ....................................................................48
3.2.2 Tests de cytotoxicité .........................................................................................................54
3.2.3 Perspectives ......................................................................................................................56
3.3 Comparaison de l’activité des caspases -3/7 induite par le Melphalan et le Melphalan click
sur les cellules HeLa .................................................................................................................. 57
4. Conclusion .................................................................................................................. 59
Bibliographie .................................................................................................................... 60
Annexes ........................................................................................................................... 64Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=113432 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire
Titre : L'électrostimulation du quadriceps associée à la réhabilitation respiratoire chez le BPCO sévère : Etude préliminaire Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : François Deloge, Auteur ; Jean-Paul Roux, Directeur de la recherche ; Françoise Motte, Directeur de la recherche Editeur : Montignies-sur-Sambre : Haute Ecole Charleroi Europe Année de publication : 2008 Importance : 125 p. Format : 30 cm Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : appareil respiratoire Index. décimale : MK Mémoire Kinésithérapie Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=1839 L'électrostimulation du quadriceps associée à la réhabilitation respiratoire chez le BPCO sévère : Etude préliminaire [TFE / Mémoire] / François Deloge, Auteur ; Jean-Paul Roux, Directeur de la recherche ; Françoise Motte, Directeur de la recherche . - Montignies-sur-Sambre : Haute Ecole Charleroi Europe, 2008 . - 125 p. ; 30 cm.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : appareil respiratoire Index. décimale : MK Mémoire Kinésithérapie Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=1839 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire
Titre : Etude des mécanismes moléculaires contrôlant la réponse chimiotactique de la bactérie Caulobacter crescentus face au cuivre Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Vincent Paquet, Auteur ; Françoise Motte, Directeur de la recherche Editeur : Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale Année de publication : 2019 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale UNamur Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Notre environnement est constamment soumis à des variations de température, de concentration en CO2 dans l’air, ou encore à la présence de produits toxiques dans les mers ou les océans. L’augmentation de la concentration en cuivre (Cu) dans les eaux provoquant des stress oxydatifs pour les bactéries qui y sont exposées en est un exemple. Pour éviter des troubles métaboliques, les bactéries développent divers mécanismes de réponses adaptatifs. Caulobacter crescentus est un exemple de ces bactéries qui possède un mécanisme spécifique mis en oeuvre pour résister à ces variations extérieures. En effet, cet organisme aquatique possède un cycle cellulaire assez particulier. Son cycle cellulaire donne naissance à deux
cellules filles totalement différentes que ce soit morphologiquement ou fonctionnellement. Ces deux cellules sont appelées stalked et swarmer. Ces deux cellules réagissent différemment dans un milieu ou la concentration en Cu est stressante. D’un côté, la cellule stalked possède
un système appelé PcoAB qui lui permet de réguler sa concentration intracellulaire en Cu et de l’autre côté, la cellule swarmer peut à l’aide de son flagelle s’éloigner de cet environnement présentant le stress dû au Cu. Ce mécanisme est d’ailleurs appelé le chimiotactisme.
En ce moment, une étude visant à caractériser le chimiotactisme de C. crescentus est menée dans le laboratoire de l’URBM. Ce travail de fin d’étude s’inscrit dans le cadre de cette recherche. L’objectif premier de ce travail est de mettre au point deux protocoles simples et
rapides qui permettent une mise en évidence directe d’un mouvement dû à ce chimiotactisme. Ces deux expériences se basent sur des principes différents, l’une se base sur des gouttières de nage et l’autre se base sur une plaque 96 puits. Ces deux expérimentations
seront adaptées depuis un protocole standard existant afin de trouver les conditions optimales pour visualiser significativement un mouvement chimiotactique.
L’autre axe de ce travail vise à caractériser une protéine reconnue comme un acteur potentiellement important dans ce processus chimiotactique. Pour ce faire, un protocole de surexpression optimale de cette protéine sera mis au point sur base d’un procédé existant et utilisé pour la surexpression d’autres protéines. Pour caractériser cette protéine après surexpression, elle sera purifiée et cristallisée pour en étudier sa structure tridimensionnelle.Note de contenu : Présentation du lieu de stage ................................................................................................ 9
Introduction générale ............................................................................................................11
1. Contexte théorique ........................................................................................................13
1.1 Caulobacter crescentus ..........................................................................................13
1.2 Chimiotactisme .......................................................................................................15
1.3 Methyl-accepting Chemotaxis Protein (MCP) .........................................................17
2. Contexte de la recherche et objectifs .............................................................................19
3. Matériel et méthode .......................................................................................................21
3.1 Test gouttière : Protocole standard .........................................................................21
3.1.1 1ere mise au point.............................................................................................22
3.1.2 2e mise au point...............................................................................................22
3.1.3 3e mise au point...............................................................................................23
3.2 Test de chimiotactisme en plaque 96 puits : protocole standard .............................24
3.2.1 1ere mise au point.............................................................................................25
3.2.2 2e mise au point...............................................................................................26
3.2.3 3e mise au point...............................................................................................27
3.3 Production de souche BL21-pET28a-mcpP ............................................................28
3.3.1 Construction souche BL21-pET28a-mcpP .......................................................28
3.4 Surexpression de BL21-pET28A-mcpP ..................................................................32
3.4.1 Cultures LB-Kan en petit volume de BL21-pET28a-mcpP ...............................32
3.4.2 Vérification sur gel SDS-PAGE de l’induction à l’IPTG en petit volume ...........33
4. Résultats et discussion ..................................................................................................35
4.1 Gouttières ..............................................................................................................35
4.1.1 1ere mise au point .............................................................................................35
4.1.2 2e mise au point...............................................................................................36
4.1.3 3e mise au point...............................................................................................38
4.2 Test de chimiotactisme en Plaque 96 puits ............................................................40
4.2.1 1ere mise au point.............................................................................................40
4.2.2 2e mise au point...............................................................................................41
4.2.3 3e mise au point...............................................................................................42
4.3 Surexpression de McpP .........................................................................................43
4.3.1 Construction de la souche BL21-pET28a-mcpP ..............................................43
4.3.2 Vérification de la surexpression de BL21-pET28a-mcpP .................................45
Conclusion ...........................................................................................................................47
Bibliographie ........................................................................................................................49
Liste des figures ...................................................................................................................50
Liste des tableaux ................................................................................................................50
AnnexesPermalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=79997 Etude des mécanismes moléculaires contrôlant la réponse chimiotactique de la bactérie Caulobacter crescentus face au cuivre [TFE / Mémoire] / Vincent Paquet, Auteur ; Françoise Motte, Directeur de la recherche . - Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale, 2019.
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Langues : Français (fre)
Mots-clés : biologie médicale UNamur Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Notre environnement est constamment soumis à des variations de température, de concentration en CO2 dans l’air, ou encore à la présence de produits toxiques dans les mers ou les océans. L’augmentation de la concentration en cuivre (Cu) dans les eaux provoquant des stress oxydatifs pour les bactéries qui y sont exposées en est un exemple. Pour éviter des troubles métaboliques, les bactéries développent divers mécanismes de réponses adaptatifs. Caulobacter crescentus est un exemple de ces bactéries qui possède un mécanisme spécifique mis en oeuvre pour résister à ces variations extérieures. En effet, cet organisme aquatique possède un cycle cellulaire assez particulier. Son cycle cellulaire donne naissance à deux
cellules filles totalement différentes que ce soit morphologiquement ou fonctionnellement. Ces deux cellules sont appelées stalked et swarmer. Ces deux cellules réagissent différemment dans un milieu ou la concentration en Cu est stressante. D’un côté, la cellule stalked possède
un système appelé PcoAB qui lui permet de réguler sa concentration intracellulaire en Cu et de l’autre côté, la cellule swarmer peut à l’aide de son flagelle s’éloigner de cet environnement présentant le stress dû au Cu. Ce mécanisme est d’ailleurs appelé le chimiotactisme.
En ce moment, une étude visant à caractériser le chimiotactisme de C. crescentus est menée dans le laboratoire de l’URBM. Ce travail de fin d’étude s’inscrit dans le cadre de cette recherche. L’objectif premier de ce travail est de mettre au point deux protocoles simples et
rapides qui permettent une mise en évidence directe d’un mouvement dû à ce chimiotactisme. Ces deux expériences se basent sur des principes différents, l’une se base sur des gouttières de nage et l’autre se base sur une plaque 96 puits. Ces deux expérimentations
seront adaptées depuis un protocole standard existant afin de trouver les conditions optimales pour visualiser significativement un mouvement chimiotactique.
L’autre axe de ce travail vise à caractériser une protéine reconnue comme un acteur potentiellement important dans ce processus chimiotactique. Pour ce faire, un protocole de surexpression optimale de cette protéine sera mis au point sur base d’un procédé existant et utilisé pour la surexpression d’autres protéines. Pour caractériser cette protéine après surexpression, elle sera purifiée et cristallisée pour en étudier sa structure tridimensionnelle.Note de contenu : Présentation du lieu de stage ................................................................................................ 9
Introduction générale ............................................................................................................11
1. Contexte théorique ........................................................................................................13
1.1 Caulobacter crescentus ..........................................................................................13
1.2 Chimiotactisme .......................................................................................................15
1.3 Methyl-accepting Chemotaxis Protein (MCP) .........................................................17
2. Contexte de la recherche et objectifs .............................................................................19
3. Matériel et méthode .......................................................................................................21
3.1 Test gouttière : Protocole standard .........................................................................21
3.1.1 1ere mise au point.............................................................................................22
3.1.2 2e mise au point...............................................................................................22
3.1.3 3e mise au point...............................................................................................23
3.2 Test de chimiotactisme en plaque 96 puits : protocole standard .............................24
3.2.1 1ere mise au point.............................................................................................25
3.2.2 2e mise au point...............................................................................................26
3.2.3 3e mise au point...............................................................................................27
3.3 Production de souche BL21-pET28a-mcpP ............................................................28
3.3.1 Construction souche BL21-pET28a-mcpP .......................................................28
3.4 Surexpression de BL21-pET28A-mcpP ..................................................................32
3.4.1 Cultures LB-Kan en petit volume de BL21-pET28a-mcpP ...............................32
3.4.2 Vérification sur gel SDS-PAGE de l’induction à l’IPTG en petit volume ...........33
4. Résultats et discussion ..................................................................................................35
4.1 Gouttières ..............................................................................................................35
4.1.1 1ere mise au point .............................................................................................35
4.1.2 2e mise au point...............................................................................................36
4.1.3 3e mise au point...............................................................................................38
4.2 Test de chimiotactisme en Plaque 96 puits ............................................................40
4.2.1 1ere mise au point.............................................................................................40
4.2.2 2e mise au point...............................................................................................41
4.2.3 3e mise au point...............................................................................................42
4.3 Surexpression de McpP .........................................................................................43
4.3.1 Construction de la souche BL21-pET28a-mcpP ..............................................43
4.3.2 Vérification de la surexpression de BL21-pET28a-mcpP .................................45
Conclusion ...........................................................................................................................47
Bibliographie ........................................................................................................................49
Liste des figures ...................................................................................................................50
Liste des tableaux ................................................................................................................50
AnnexesPermalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=79997 Exemplaires
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