Centre de Documentation Campus Montignies
Horaires :
Lundi : 8h-18h30
Mardi : 8h-18h30
Mercredi 9h-16h30
Jeudi : 8h-18h30
Vendredi : 8h-16h30
Lundi : 8h-18h30
Mardi : 8h-18h30
Mercredi 9h-16h30
Jeudi : 8h-18h30
Vendredi : 8h-16h30
Bienvenue sur le catalogue du centre de documentation du campus de Montignies.
Résultat de la recherche
13 résultat(s) recherche sur le mot-clé 'criminalistique'
Ajouter le résultat dans votre panier Affiner la recherche Générer le flux rss de la recherche
Partager le résultat de cette recherche Faire une suggestion
Biologie et criminalistique Une histoire contemporaine in Biofutur, 312 (2010)
[article]
Titre : Biologie et criminalistique Une histoire contemporaine Type de document : texte imprimé Année de publication : 2010 Article en page(s) : 35 - 36 Mots-clés : CRIMINALISTIQUE BIOLOGIE JUDICIAIRE ANALYSE GENETIQUE EMPREINTES GENETIQUES SOI MOLECULMMAIRE MINISATELLITES MICROSATELLITES Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=72477
in Biofutur > 312 (2010) . - 35 - 36[article] Biologie et criminalistique Une histoire contemporaine [texte imprimé] . - 2010 . - 35 - 36.
in Biofutur > 312 (2010) . - 35 - 36
Mots-clés : CRIMINALISTIQUE BIOLOGIE JUDICIAIRE ANALYSE GENETIQUE EMPREINTES GENETIQUES SOI MOLECULMMAIRE MINISATELLITES MICROSATELLITES Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=72477 Exemplaires (1)
Cote Support Localisation Section Disponibilité Revue Revue Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Réserve Consultable sur demande auprès des documentalistes
Exclu du prêtDiatomées et criminalistique : comparaison et optimisation de procédés d’extraction / DELPHINE VAN BOSSCHE
Titre : Diatomées et criminalistique : comparaison et optimisation de procédés d’extraction Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : DELPHINE VAN BOSSCHE, Auteur Année de publication : 2016 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale Institut National de Criminalistique et de Criminologie INCC Bruxelles Diatomées criminalistique Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matière
Remerciements ..................................................................................................................................... 5
Présentation du lieu de stage .............................................................................................................. 11
Introduction générale .......................................................................................................................... 13
I. Contexte général .............................................................................................................................. 15
1. Les diatomées ................................................................................................................................... 15
1.1. Structure générale ..................................................................................................................... 15
1.2. Classification .............................................................................................................................. 17
Les centriques ou « Centrophycidées » .............................................................................. 17
Les pennées ou « Pennatophycidées » ............................................................................... 19
1.3. Reproduction ............................................................................................................................. 21
1.4. Écologie ...................................................................................................................................... 22
2. Intérêt de la recherche des diatomées dans le diagnostic de noyade............................................. 23
2.1. Contexte .................................................................................................................................... 23
2.2. Comment les diatomées peuvent-elles se retrouver dans les organes ? ................................ 23
2.2.1. Par inhalation ..................................................................................................................... 24
2.2.2. Par ingestion ...................................................................................................................... 24
2.3. Limites de la méthode ............................................................................................................... 24
3. Techniques d’extraction .................................................................................................................... 25
3.1. Extraction chimique .................................................................................................................. 26
3.1.1. Extraction chimique d’échantillons d’eau ......................................................................... 26
3.1.2. Extraction chimique d’échantillons d’organe ................................................................... 26
3.2. Extraction enzymatique ............................................................................................................ 27
3.2.1. Mode d’action .................................................................................................................... 27
Protéinase K .................................................................................................................... 27
Pepsine ............................................................................................................................ 28
Papaïne ............................................................................................................................ 28
Trypsine ........................................................................................................................... 28
3.3. Avantages et inconvénients ...................................................................................................... 29
4. Quantification des diatomées et rendement des extractions ......................................................... 29
5. Microscopie électronique à balayage : PhenomTM G2 pro .............................................................. 30
5.1. Définition ................................................................................................................................... 30
5.2. Principe du PhenomTM G2 pro ................................................................................................... 31
5.3. Composition .............................................................................................................................. 31
II. Objectifs et stratégies ...................................................................................................................... 33
III. Matériel et méthodes ..................................................................................................................... 35
1. Protocole d’extraction à partir d’échantillons d’eau ....................................................................... 35
1.1. Echantillons d’eaux ................................................................................................................... 35
1.2. Matériel et réactifs .................................................................................................................... 35
1.2.1. Matériel .............................................................................................................................. 35
1.2.2. Réactifs ............................................................................................................................... 36
1.3. Mise au point du protocole d’extraction .................................................................................. 36
1.3.1. Optimalisation de l’utilisation d’eau oxygénée (H2O2) pour l’élimination des matières organiques .................................................................................................................................... 37
1.3.2. Optimalisation de l’utilisation du HCl/Pyrophosphate et du Calgon pour l’élimination du calcaire et la défloculation des argiles et de l’utilisation ou non du polytungstate de sodium pour l’élimination des minéraux .................................................................................................. 37
1.3.3. Optimalisation des moments et du nombre de centrifugations entre les étapes de l’H2O2, du Calgon et du polytungstate de sodium ....................................................................... 39
2. Protocole d’extraction à partir d’échantillons d’organes ................................................................ 40
2.1. Echantillons ................................................................................................................................ 40
2.2. Matériels et réactifs .................................................................................................................. 41
2.2.1. Matériel .............................................................................................................................. 41
2.2.2. Réactifs ............................................................................................................................... 41
2.3. Techniques d’extraction des diatomées ................................................................................... 41
2.3.1. Digestion chimique des tissus à l’HCl ................................................................................ 42
2.3.2. Digestion chimique des tissus à l’H2O2 puis à l’HCl ........................................................... 42
2.3.3. Digestion enzymatique des tissus à la protéinase K ......................................................... 43
2.3.4. Digestions enzymatiques des tissus à la pepsine et à la papaïne avec ou sans ajout de DTT ................................................................................................................................................ 44
2.3.5. Digestion sur foie de porc .................................................................................................. 45
2.3.6. Digestion et extraction des diatomées sur poumon humain ........................................... 46
2.4. Méthode d’extraction utilisée pour calculer le rendement d’extraction sur poumon de porc ........................................................................................................................................................... 47
IV. Résultats et discussion ................................................................................................................... 49
1. Protocole d’extraction à partir d’échantillons d’eau ....................................................................... 49
1.1. Optimalisation de l’utilisation d’eau oxygénée (H2O2) pour l’élimination des matières organiques ........................................................................................................................................ 49
Discussion ................................................................................................................................. 51
1.2. Optimalisation de l’utilisation du HCl/Pyrophosphate de sodium et du Calgon pour l’élimination du calcaire et la défloculation des argiles et optimalisation de l’utilisation ou non du polytungstate de sodium pour l’élimination des minéraux ............................................................ 51
1.2.1. Choix de la concentration du Calgon ................................................................................. 51
Discussion ................................................................................................................................. 53
1.2.2. Choix du traitement au Calgon ou à l’HCl/pyrophosphate de sodium ............................. 54
Discussion ................................................................................................................................. 55
1.2.3. Choix de l’emploi ou non du polytungstate de sodium .................................................... 56
Discussion ................................................................................................................................. 57
1.3. Optimalisation des moments et du nombre de centrifugations entre les étapes d’H2O2, du Calgon et du polytungstate de sodium ............................................................................................ 58
Discussion ................................................................................................................................. 58
1.4. Conclusion .................................................................................................................................. 62
2. Protocole d’extraction à partir d’échantillons d’organes ................................................................ 62
2.1. Digestion à l’acide : HCl ............................................................................................................. 63
Discussion ................................................................................................................................. 64
2.2. Digestion enzymatique .............................................................................................................. 64
2.2.1. Digestion enzymatique des tissus à la protéinase K : détermination de la quantité de travail en protéinase K ................................................................................................................. 64
Discussion ................................................................................................................................. 66
2.2.2. Digestions enzymatiques à la pepsine et à la papaïne avec ou sans dithiothréitol (DTT) 67
2.2.3. Digestion de foie de porc à la pepsine, pepsine/papaïne, trypsine et protéinase K ....... 67
2.2.4. Digestion et extraction de diatomées sur poumon humain à la papaïne, pepsine/papaïne, protéinase K et trypsine ................................................................................. 68
2.3. Rendements des extractions à partir d’échantillons de poumon humain ou de porc avec le protocole mis au point ..................................................................................................................... 70
2.3.1. Vérification du nombre de diatomées dans 2g d’échantillon humain ............................. 70
Discussion ................................................................................................................................. 73
2.3.2. Comparaison de la digestion à l’HNO3 et à la pepsine-papaïne dans des récipients en verre et en plastique .................................................................................................................... 74
Discussion ................................................................................................................................. 74
2.3.3. Rendement des extractions sur du poumon de porc inoculé avec 3 souches de diatomées ..................................................................................................................................... 75
Discussion ................................................................................................................................. 76
2.3.4. Conclusion .......................................................................................................................... 77
Conclusion générale et perspectives.................................................................................................... 79
Liste des tableaux ................................................................................................................................ 81
Liste des figures ................................................................................................................................... 82
Bibliographie ....................................................................................................................................... 84
Annexe 1 : Préparation des solutions .................................................................................................. 87Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65697 Diatomées et criminalistique : comparaison et optimisation de procédés d’extraction [TFE / Mémoire] / DELPHINE VAN BOSSCHE, Auteur . - 2016.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : biologie médicale Institut National de Criminalistique et de Criminologie INCC Bruxelles Diatomées criminalistique Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matière
Remerciements ..................................................................................................................................... 5
Présentation du lieu de stage .............................................................................................................. 11
Introduction générale .......................................................................................................................... 13
I. Contexte général .............................................................................................................................. 15
1. Les diatomées ................................................................................................................................... 15
1.1. Structure générale ..................................................................................................................... 15
1.2. Classification .............................................................................................................................. 17
Les centriques ou « Centrophycidées » .............................................................................. 17
Les pennées ou « Pennatophycidées » ............................................................................... 19
1.3. Reproduction ............................................................................................................................. 21
1.4. Écologie ...................................................................................................................................... 22
2. Intérêt de la recherche des diatomées dans le diagnostic de noyade............................................. 23
2.1. Contexte .................................................................................................................................... 23
2.2. Comment les diatomées peuvent-elles se retrouver dans les organes ? ................................ 23
2.2.1. Par inhalation ..................................................................................................................... 24
2.2.2. Par ingestion ...................................................................................................................... 24
2.3. Limites de la méthode ............................................................................................................... 24
3. Techniques d’extraction .................................................................................................................... 25
3.1. Extraction chimique .................................................................................................................. 26
3.1.1. Extraction chimique d’échantillons d’eau ......................................................................... 26
3.1.2. Extraction chimique d’échantillons d’organe ................................................................... 26
3.2. Extraction enzymatique ............................................................................................................ 27
3.2.1. Mode d’action .................................................................................................................... 27
Protéinase K .................................................................................................................... 27
Pepsine ............................................................................................................................ 28
Papaïne ............................................................................................................................ 28
Trypsine ........................................................................................................................... 28
3.3. Avantages et inconvénients ...................................................................................................... 29
4. Quantification des diatomées et rendement des extractions ......................................................... 29
5. Microscopie électronique à balayage : PhenomTM G2 pro .............................................................. 30
5.1. Définition ................................................................................................................................... 30
5.2. Principe du PhenomTM G2 pro ................................................................................................... 31
5.3. Composition .............................................................................................................................. 31
II. Objectifs et stratégies ...................................................................................................................... 33
III. Matériel et méthodes ..................................................................................................................... 35
1. Protocole d’extraction à partir d’échantillons d’eau ....................................................................... 35
1.1. Echantillons d’eaux ................................................................................................................... 35
1.2. Matériel et réactifs .................................................................................................................... 35
1.2.1. Matériel .............................................................................................................................. 35
1.2.2. Réactifs ............................................................................................................................... 36
1.3. Mise au point du protocole d’extraction .................................................................................. 36
1.3.1. Optimalisation de l’utilisation d’eau oxygénée (H2O2) pour l’élimination des matières organiques .................................................................................................................................... 37
1.3.2. Optimalisation de l’utilisation du HCl/Pyrophosphate et du Calgon pour l’élimination du calcaire et la défloculation des argiles et de l’utilisation ou non du polytungstate de sodium pour l’élimination des minéraux .................................................................................................. 37
1.3.3. Optimalisation des moments et du nombre de centrifugations entre les étapes de l’H2O2, du Calgon et du polytungstate de sodium ....................................................................... 39
2. Protocole d’extraction à partir d’échantillons d’organes ................................................................ 40
2.1. Echantillons ................................................................................................................................ 40
2.2. Matériels et réactifs .................................................................................................................. 41
2.2.1. Matériel .............................................................................................................................. 41
2.2.2. Réactifs ............................................................................................................................... 41
2.3. Techniques d’extraction des diatomées ................................................................................... 41
2.3.1. Digestion chimique des tissus à l’HCl ................................................................................ 42
2.3.2. Digestion chimique des tissus à l’H2O2 puis à l’HCl ........................................................... 42
2.3.3. Digestion enzymatique des tissus à la protéinase K ......................................................... 43
2.3.4. Digestions enzymatiques des tissus à la pepsine et à la papaïne avec ou sans ajout de DTT ................................................................................................................................................ 44
2.3.5. Digestion sur foie de porc .................................................................................................. 45
2.3.6. Digestion et extraction des diatomées sur poumon humain ........................................... 46
2.4. Méthode d’extraction utilisée pour calculer le rendement d’extraction sur poumon de porc ........................................................................................................................................................... 47
IV. Résultats et discussion ................................................................................................................... 49
1. Protocole d’extraction à partir d’échantillons d’eau ....................................................................... 49
1.1. Optimalisation de l’utilisation d’eau oxygénée (H2O2) pour l’élimination des matières organiques ........................................................................................................................................ 49
Discussion ................................................................................................................................. 51
1.2. Optimalisation de l’utilisation du HCl/Pyrophosphate de sodium et du Calgon pour l’élimination du calcaire et la défloculation des argiles et optimalisation de l’utilisation ou non du polytungstate de sodium pour l’élimination des minéraux ............................................................ 51
1.2.1. Choix de la concentration du Calgon ................................................................................. 51
Discussion ................................................................................................................................. 53
1.2.2. Choix du traitement au Calgon ou à l’HCl/pyrophosphate de sodium ............................. 54
Discussion ................................................................................................................................. 55
1.2.3. Choix de l’emploi ou non du polytungstate de sodium .................................................... 56
Discussion ................................................................................................................................. 57
1.3. Optimalisation des moments et du nombre de centrifugations entre les étapes d’H2O2, du Calgon et du polytungstate de sodium ............................................................................................ 58
Discussion ................................................................................................................................. 58
1.4. Conclusion .................................................................................................................................. 62
2. Protocole d’extraction à partir d’échantillons d’organes ................................................................ 62
2.1. Digestion à l’acide : HCl ............................................................................................................. 63
Discussion ................................................................................................................................. 64
2.2. Digestion enzymatique .............................................................................................................. 64
2.2.1. Digestion enzymatique des tissus à la protéinase K : détermination de la quantité de travail en protéinase K ................................................................................................................. 64
Discussion ................................................................................................................................. 66
2.2.2. Digestions enzymatiques à la pepsine et à la papaïne avec ou sans dithiothréitol (DTT) 67
2.2.3. Digestion de foie de porc à la pepsine, pepsine/papaïne, trypsine et protéinase K ....... 67
2.2.4. Digestion et extraction de diatomées sur poumon humain à la papaïne, pepsine/papaïne, protéinase K et trypsine ................................................................................. 68
2.3. Rendements des extractions à partir d’échantillons de poumon humain ou de porc avec le protocole mis au point ..................................................................................................................... 70
2.3.1. Vérification du nombre de diatomées dans 2g d’échantillon humain ............................. 70
Discussion ................................................................................................................................. 73
2.3.2. Comparaison de la digestion à l’HNO3 et à la pepsine-papaïne dans des récipients en verre et en plastique .................................................................................................................... 74
Discussion ................................................................................................................................. 74
2.3.3. Rendement des extractions sur du poumon de porc inoculé avec 3 souches de diatomées ..................................................................................................................................... 75
Discussion ................................................................................................................................. 76
2.3.4. Conclusion .......................................................................................................................... 77
Conclusion générale et perspectives.................................................................................................... 79
Liste des tableaux ................................................................................................................................ 81
Liste des figures ................................................................................................................................... 82
Bibliographie ....................................................................................................................................... 84
Annexe 1 : Préparation des solutions .................................................................................................. 87Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65697 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Edmond Locard, pionnier de la criminalistique in Biofutur, 312 (2010)
[article]
Titre : Edmond Locard, pionnier de la criminalistique Type de document : texte imprimé Année de publication : 2010 Article en page(s) : 45 - 46 Mots-clés : CRIMINALISTIQUE LOCARD EDMOND PIONNIER PORTRAIT Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=72483
in Biofutur > 312 (2010) . - 45 - 46[article] Edmond Locard, pionnier de la criminalistique [texte imprimé] . - 2010 . - 45 - 46.
in Biofutur > 312 (2010) . - 45 - 46
Mots-clés : CRIMINALISTIQUE LOCARD EDMOND PIONNIER PORTRAIT Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=72483 Exemplaires (1)
Cote Support Localisation Section Disponibilité Revue Revue Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Réserve Consultable sur demande auprès des documentalistes
Exclu du prêtHistorique de la criminalistique in Biofutur, 312 (2010)
[article]
Titre : Historique de la criminalistique Type de document : texte imprimé Année de publication : 2010 Article en page(s) : 28 - 30 Mots-clés : CRIMINALISTIQUE HISTORIQUE LABORATOIRES ANALYSE Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=72475
in Biofutur > 312 (2010) . - 28 - 30[article] Historique de la criminalistique [texte imprimé] . - 2010 . - 28 - 30.
in Biofutur > 312 (2010) . - 28 - 30
Mots-clés : CRIMINALISTIQUE HISTORIQUE LABORATOIRES ANALYSE Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=72475 Exemplaires (1)
Cote Support Localisation Section Disponibilité Revue Revue Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Réserve Consultable sur demande auprès des documentalistes
Exclu du prêtLes traces pédologiques et leur étude en criminalistique in Biofutur, 312 (2010)
[article]
Titre : Les traces pédologiques et leur étude en criminalistique Type de document : texte imprimé Année de publication : 2010 Article en page(s) : 42 - 43 Mots-clés : CRIMINALISTIQUE PEDOLOGIE TRACES GEOLOGIE PRELEVEMENTS SEDIMENTOMETRIE MINERAUX Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=72480
in Biofutur > 312 (2010) . - 42 - 43[article] Les traces pédologiques et leur étude en criminalistique [texte imprimé] . - 2010 . - 42 - 43.
in Biofutur > 312 (2010) . - 42 - 43
Mots-clés : CRIMINALISTIQUE PEDOLOGIE TRACES GEOLOGIE PRELEVEMENTS SEDIMENTOMETRIE MINERAUX Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=72480 Exemplaires (1)
Cote Support Localisation Section Disponibilité Revue Revue Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Réserve Consultable sur demande auprès des documentalistes
Exclu du prêtAnthopologie, thanatologie, odontologie médico-légales in Biofutur, 312 (2010)
PermalinkLes bases de données geénétiques in Biofutur, 312 (2010)
PermalinkDéveloppement et amélioration des techniques de sous-échantillonage à l'aide du CrimeScope / PELTIER Julie
PermalinkLes empreintes génétiques en pratique judiciaire in Biofutur, 312 (2010)
PermalinkEntomologie légale Les gendarmes et les voleurs...de temps in Biofutur, 312 (2010)
Permalink