Centre de Documentation Campus Montignies
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10 résultat(s) recherche sur le mot-clé 'immunomarquage'
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Caractérisation morphologique de l’effet de la Propolis sur une plaie cutanée chez le rat / Xavier Blecha
Titre : Caractérisation morphologique de l’effet de la Propolis sur une plaie cutanée chez le rat Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Xavier Blecha, Auteur ; Charles Nicaise, Directeur de la recherche Année de publication : 2017 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale Université de Namur URPhym Unité de recherche en physiologie moléculaire propolis plaie rat peau cicatrisation cutanée lésion cutanée immunomarquage Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : La peau est l’organe le plus superficiel du corps humain. Elle exerce plusieurs fonctions différentes et est composée de trois couches qui se superposent, l’épiderme, le derme et l’hypoderme. Le derme qui va nous intéresser dans ce travail est le tissu connectif de la peau, il est vascularisé et joue un rôle nutritif et de soutien. Il est composé de matrice extracellulaire qui contient les vaisseaux sanguins, les nerfs ainsi que les fibroblastes. Lorsque la peau est endommagée, celle-ci va se reformer dans un processus nommé cicatrisation. La cicatrisation est divisée en quatre phases : l’hémostase, la phase inflammatoire, la phase de prolifération et la phase de remodélisation. Lors de la cicatrisation, les fibroblastes et les myofibroblastes jouent un rôle important, ils vont sécréter le collagène et aider la cicatrice à se refermer. Dans ce travail, nous nous sommes intéressés à la repopulation du lit cellulaire par les fibroblastes et les myofibroblastes et l’effet qu’exercerait la Propolis sur cette repopulation. La Propolis est une substance produite par les abeilles qui possède un grand nombre de propriétés thérapeutiques.
Le but du travail est d’évaluer l’effet de la Propolis sur la cicatrisation cutanée et plus particulièrement sur la repopulation du lit cellulaire par les fibroblastes et les myofibroblastes. Diverses techniques histologiques ont été utilisées comme des colorations topographiques (Hémalun-Eosine-Safran, Trichrome de Masson vert et le Rouge Picrosirius) ainsi que des immunomarquages spécifiques des fibroblastes et des myofibroblastes. Les immunomarquages sont dirigés contre la vimentine, qui est un marqueur des fibroblastes et des myofibroblastes, contre l’α-SMA qui est un marqueur des myofibroblastes et contre Iba-1 qui est un marqueur des macrophages et va nous permettre d’avoir une idée du processus inflammatoire.
Les résultats obtenus nous montrent que l’application de Propolis accélère de quelques heures la fermeture de la cicatrice au niveau macroscopique, comparativement à l’excipient seul (Macrogol). Ceci pourrait être expliqué par le fait que la Propolis stimule l’apparition des myofibroblastes qui vont jouer un rôle important dans la fermeture de la lésion. La Propolis augmente aussi le nombre de cellules vimentines positives au jour 7, c’est-à-dire au jour au il y a le plus de différence au niveau macroscopique. La Propolis agit sur la sécrétion du collagène, en effet, les fibres de collagène de type I des peaux traitées avec de la Propolis « récupèrent » plus rapidement leur orientation et en accélérant leur sécrétion. Enfin, la Propolis n’a pas d’effet apparent sur l’inflammation car aucune différence a été relevée entre les peaux traitées avec de la Propolis et les peaux traitées avec du Macrogol.Note de contenu : Table des matières
Présentation du lieu de stage .................................................................................................................. 7
1. Introduction ..................................................................................................................................... 9
1.1 La peau .......................................................................................................................................... 9
1.1.1 L’épiderme ............................................................................................................................ 10
1.1.1.1 La couche basale ........................................................................................................ 10
1.1.1.2 La couche épineuse ................................................................................................... 11
1.1.1.3 La couche granuleuse .................................................................................................... 12
1.1.1.4 La couche cornée ........................................................................................................... 12
1.1.2 Le derme ............................................................................................................................... 13
1.1.2.1 Les fibroblastes .............................................................................................................. 13
1.1.2.2 Les myofibroblastes ....................................................................................................... 14
1.1.2.3 Le collagène ................................................................................................................... 15
1.2 La cicatrisation cutanée ............................................................................................................... 16
1.2.1. Généralités .......................................................................................................................... 16
1.2.2 L’hémostase .......................................................................................................................... 17
1.2.3 La phase inflammatoire ........................................................................................................ 19
1.2.4 La phase proliférative ........................................................................................................... 20
1.2.4.1 La réépithalisation ......................................................................................................... 20
1.2.4.2 La fibroplasie ................................................................................................................. 21
1.2.4.3 L’angiogenèse ................................................................................................................ 22
1.2.5 La phase de remodélisation ................................................................................................. 23
1.3 La Propolis ................................................................................................................................... 24
1.4. But du travail .............................................................................................................................. 25
2. Matériel et méthodes .................................................................................................................... 27
2.1 Animaux et modèle de lésion cutanée .................................................................................. 27
2.2. Histologie .................................................................................................................................... 28
2.2.1 Fixateur ................................................................................................................................. 28
2.2.2. Déshydratation et mise en paraffine des échantillons ........................................................ 28
2.2.3. Microtomisation et étalement des coupons sur lames ....................................................... 29
2.2.4. Coloration hématoxyline-éosine-safran (HES) .................................................................... 30
2.2.5. Coloration trichrome de Masson vert ................................................................................. 31
2.2.6. Coloration rouge picrosirius ................................................................................................ 32
2.2.4. Immunohistochimie ............................................................................................................ 33
2.2.7. Immunofluorescence ........................................................................................................... 36
3. Résultats ........................................................................................................................................ 39
3.1. Analyse macroscopique des plaies ............................................................................................. 39
3.2. Analyse microscopique des plaies .............................................................................................. 40
3.2.1. H.E.S ..................................................................................................................................... 40
3.2.2 Trichrome de Masson vert ................................................................................................... 43
3.2.3 Rouge picrosirius .................................................................................................................. 45
3.3. Immunomarquage de la vimentine ............................................................................................ 47
3.3.1. Révélation chromogénique ............................................................................................. 47
3.3.2 Quantification de la densité des cellules vimentine positive ........................................... 50
3.3.3. Immunofluorescence ....................................................................................................... 51
3.4. Immunomarquage de l’alpha SMA ......................................................................................... 51
3.4.1 Révélation chromogénique .............................................................................................. 51
3.4.2 Immunofluorescence ........................................................................................................ 54
3.5. Immunomarquage d’Iba 1 ...................................................................................................... 54
4. Discussion et perspectives ............................................................................................................ 57
Conclusion ............................................................................................................................................. 65
Liste des abréviations ............................................................................................................................ 67
Liste des figures ..................................................................................................................................... 69
Bibliographie.......................................................................................................................................... 71Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64855 Caractérisation morphologique de l’effet de la Propolis sur une plaie cutanée chez le rat [TFE / Mémoire] / Xavier Blecha, Auteur ; Charles Nicaise, Directeur de la recherche . - 2017.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : biologie médicale Université de Namur URPhym Unité de recherche en physiologie moléculaire propolis plaie rat peau cicatrisation cutanée lésion cutanée immunomarquage Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : La peau est l’organe le plus superficiel du corps humain. Elle exerce plusieurs fonctions différentes et est composée de trois couches qui se superposent, l’épiderme, le derme et l’hypoderme. Le derme qui va nous intéresser dans ce travail est le tissu connectif de la peau, il est vascularisé et joue un rôle nutritif et de soutien. Il est composé de matrice extracellulaire qui contient les vaisseaux sanguins, les nerfs ainsi que les fibroblastes. Lorsque la peau est endommagée, celle-ci va se reformer dans un processus nommé cicatrisation. La cicatrisation est divisée en quatre phases : l’hémostase, la phase inflammatoire, la phase de prolifération et la phase de remodélisation. Lors de la cicatrisation, les fibroblastes et les myofibroblastes jouent un rôle important, ils vont sécréter le collagène et aider la cicatrice à se refermer. Dans ce travail, nous nous sommes intéressés à la repopulation du lit cellulaire par les fibroblastes et les myofibroblastes et l’effet qu’exercerait la Propolis sur cette repopulation. La Propolis est une substance produite par les abeilles qui possède un grand nombre de propriétés thérapeutiques.
Le but du travail est d’évaluer l’effet de la Propolis sur la cicatrisation cutanée et plus particulièrement sur la repopulation du lit cellulaire par les fibroblastes et les myofibroblastes. Diverses techniques histologiques ont été utilisées comme des colorations topographiques (Hémalun-Eosine-Safran, Trichrome de Masson vert et le Rouge Picrosirius) ainsi que des immunomarquages spécifiques des fibroblastes et des myofibroblastes. Les immunomarquages sont dirigés contre la vimentine, qui est un marqueur des fibroblastes et des myofibroblastes, contre l’α-SMA qui est un marqueur des myofibroblastes et contre Iba-1 qui est un marqueur des macrophages et va nous permettre d’avoir une idée du processus inflammatoire.
Les résultats obtenus nous montrent que l’application de Propolis accélère de quelques heures la fermeture de la cicatrice au niveau macroscopique, comparativement à l’excipient seul (Macrogol). Ceci pourrait être expliqué par le fait que la Propolis stimule l’apparition des myofibroblastes qui vont jouer un rôle important dans la fermeture de la lésion. La Propolis augmente aussi le nombre de cellules vimentines positives au jour 7, c’est-à-dire au jour au il y a le plus de différence au niveau macroscopique. La Propolis agit sur la sécrétion du collagène, en effet, les fibres de collagène de type I des peaux traitées avec de la Propolis « récupèrent » plus rapidement leur orientation et en accélérant leur sécrétion. Enfin, la Propolis n’a pas d’effet apparent sur l’inflammation car aucune différence a été relevée entre les peaux traitées avec de la Propolis et les peaux traitées avec du Macrogol.Note de contenu : Table des matières
Présentation du lieu de stage .................................................................................................................. 7
1. Introduction ..................................................................................................................................... 9
1.1 La peau .......................................................................................................................................... 9
1.1.1 L’épiderme ............................................................................................................................ 10
1.1.1.1 La couche basale ........................................................................................................ 10
1.1.1.2 La couche épineuse ................................................................................................... 11
1.1.1.3 La couche granuleuse .................................................................................................... 12
1.1.1.4 La couche cornée ........................................................................................................... 12
1.1.2 Le derme ............................................................................................................................... 13
1.1.2.1 Les fibroblastes .............................................................................................................. 13
1.1.2.2 Les myofibroblastes ....................................................................................................... 14
1.1.2.3 Le collagène ................................................................................................................... 15
1.2 La cicatrisation cutanée ............................................................................................................... 16
1.2.1. Généralités .......................................................................................................................... 16
1.2.2 L’hémostase .......................................................................................................................... 17
1.2.3 La phase inflammatoire ........................................................................................................ 19
1.2.4 La phase proliférative ........................................................................................................... 20
1.2.4.1 La réépithalisation ......................................................................................................... 20
1.2.4.2 La fibroplasie ................................................................................................................. 21
1.2.4.3 L’angiogenèse ................................................................................................................ 22
1.2.5 La phase de remodélisation ................................................................................................. 23
1.3 La Propolis ................................................................................................................................... 24
1.4. But du travail .............................................................................................................................. 25
2. Matériel et méthodes .................................................................................................................... 27
2.1 Animaux et modèle de lésion cutanée .................................................................................. 27
2.2. Histologie .................................................................................................................................... 28
2.2.1 Fixateur ................................................................................................................................. 28
2.2.2. Déshydratation et mise en paraffine des échantillons ........................................................ 28
2.2.3. Microtomisation et étalement des coupons sur lames ....................................................... 29
2.2.4. Coloration hématoxyline-éosine-safran (HES) .................................................................... 30
2.2.5. Coloration trichrome de Masson vert ................................................................................. 31
2.2.6. Coloration rouge picrosirius ................................................................................................ 32
2.2.4. Immunohistochimie ............................................................................................................ 33
2.2.7. Immunofluorescence ........................................................................................................... 36
3. Résultats ........................................................................................................................................ 39
3.1. Analyse macroscopique des plaies ............................................................................................. 39
3.2. Analyse microscopique des plaies .............................................................................................. 40
3.2.1. H.E.S ..................................................................................................................................... 40
3.2.2 Trichrome de Masson vert ................................................................................................... 43
3.2.3 Rouge picrosirius .................................................................................................................. 45
3.3. Immunomarquage de la vimentine ............................................................................................ 47
3.3.1. Révélation chromogénique ............................................................................................. 47
3.3.2 Quantification de la densité des cellules vimentine positive ........................................... 50
3.3.3. Immunofluorescence ....................................................................................................... 51
3.4. Immunomarquage de l’alpha SMA ......................................................................................... 51
3.4.1 Révélation chromogénique .............................................................................................. 51
3.4.2 Immunofluorescence ........................................................................................................ 54
3.5. Immunomarquage d’Iba 1 ...................................................................................................... 54
4. Discussion et perspectives ............................................................................................................ 57
Conclusion ............................................................................................................................................. 65
Liste des abréviations ............................................................................................................................ 67
Liste des figures ..................................................................................................................................... 69
Bibliographie.......................................................................................................................................... 71Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64855 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Association d'un lymphome B et d'un lymphome T au cours d'une infection à HTLV1 in Annales de Biologie Clinique, 5 (1997)
[article]
Titre : Association d'un lymphome B et d'un lymphome T au cours d'une infection à HTLV1 Type de document : texte imprimé Année de publication : 1997 Article en page(s) : 491 - 493 Mots-clés : IMMUNOMARQUAGE Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=68985
in Annales de Biologie Clinique > 5 (1997) . - 491 - 493[article] Association d'un lymphome B et d'un lymphome T au cours d'une infection à HTLV1 [texte imprimé] . - 1997 . - 491 - 493.
in Annales de Biologie Clinique > 5 (1997) . - 491 - 493
Mots-clés : IMMUNOMARQUAGE Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=68985 Exemplaires (1)
Cote Support Localisation Section Disponibilité Revue Revue Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Réserve Consultable sur demande auprès des documentalistes
Exclu du prêtContribution à la caractérisation des cancers du seins triple négatifs / EL ABBOUTI Nabila
Titre : Contribution à la caractérisation des cancers du seins triple négatifs Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : EL ABBOUTI Nabila, Auteur Année de publication : 2011 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : BIOLOGIE MEDICALE IPG IMMUNOLOGIE ANTICORPS IMMUNOMARQUAGE CANCER CANCER DU SEIN CLASSIFICATION EPIDEMIOLOGIE FACTEURS DE RESIQUE BRCA TUMEUR TRIPLE NEGATIVE MARQUEURS TISSUE MICRO ARRAY MARQUAGE IHC CK5/6 MARQUAGE EGRF IMMUNOHISTOCHIMIE Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65497 Contribution à la caractérisation des cancers du seins triple négatifs [TFE / Mémoire] / EL ABBOUTI Nabila, Auteur . - 2011.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur
Langues : Français (fre)
Mots-clés : BIOLOGIE MEDICALE IPG IMMUNOLOGIE ANTICORPS IMMUNOMARQUAGE CANCER CANCER DU SEIN CLASSIFICATION EPIDEMIOLOGIE FACTEURS DE RESIQUE BRCA TUMEUR TRIPLE NEGATIVE MARQUEURS TISSUE MICRO ARRAY MARQUAGE IHC CK5/6 MARQUAGE EGRF IMMUNOHISTOCHIMIE Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65497 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Les diagnostics de la maladie d'Alzheimer in Annales de Biologie Clinique, 2 (1998)
[article]
Titre : Les diagnostics de la maladie d'Alzheimer Type de document : texte imprimé Année de publication : 1998 Article en page(s) : 133 - 142 Mots-clés : ALZHEIMER DEGENERESCENCE NEUROFIBRILLAIRES SUBSTANCE AMYLOIDE PEPTIDE A beta PROTEINRES TAU MUTATIONS IMMUNOMARQUAGE Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=69167
in Annales de Biologie Clinique > 2 (1998) . - 133 - 142[article] Les diagnostics de la maladie d'Alzheimer [texte imprimé] . - 1998 . - 133 - 142.
in Annales de Biologie Clinique > 2 (1998) . - 133 - 142
Mots-clés : ALZHEIMER DEGENERESCENCE NEUROFIBRILLAIRES SUBSTANCE AMYLOIDE PEPTIDE A beta PROTEINRES TAU MUTATIONS IMMUNOMARQUAGE Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=69167 Exemplaires (1)
Cote Support Localisation Section Disponibilité Revue Revue Centre de Documentation HELHa Campus Montignies Réserve Consultable sur demande auprès des documentalistes
Exclu du prêtEtude de l'effet proaptotique de molécules interférant avec les mécanismes épigénétiques sur des cellules issues de cancers pulmonaires / WILMAR Arnaud
Titre : Etude de l'effet proaptotique de molécules interférant avec les mécanismes épigénétiques sur des cellules issues de cancers pulmonaires Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : WILMAR Arnaud, Année de publication : 2008 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Mots-clés : CANCERS PULMONAIRES CULTURE CELLULES CYCLE CELLULAIRE APOPTOSE TEST VIABILITE WESTERN BLOT ELECTROPHORESE IMMUNOMARQUAGE Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64449 Etude de l'effet proaptotique de molécules interférant avec les mécanismes épigénétiques sur des cellules issues de cancers pulmonaires [TFE / Mémoire] / WILMAR Arnaud, . - 2008.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Mots-clés : CANCERS PULMONAIRES CULTURE CELLULES CYCLE CELLULAIRE APOPTOSE TEST VIABILITE WESTERN BLOT ELECTROPHORESE IMMUNOMARQUAGE Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64449 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Etude des modes de conservations de frottis sanguins pour la biobanque / Morgane EMMERECHTS
PermalinkEvaluation de l'expression de la glycoprotéine P en immunocytochimie et en cytométrie de flux associée au test fonctionnel : application aux leucémies aiguës myéloïdes in Annales de Biologie Clinique, 5 (1999)
PermalinkImmunologie / Jean-Pierre Revillard
PermalinkImmunoperoxydase en immunohistochimie in ABTL BVLT, 31/4 (2004)
PermalinkUtilisation d'un calibrateur pour quantifier les récepteurs d'adhérence du polynucléaire neutrophile par cytométrie en flux in Annales de Biologie Clinique, 3 (2000)
Permalink