Centre de Documentation Campus Montignies
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18 résultat(s) recherche sur le mot-clé 'GOSSELIES'
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Analyse comparative de deux panels d’immunophénotypage cinq et dix couleurs en cytométrie en flux / Coleen Delatte
Titre : Analyse comparative de deux panels d’immunophénotypage cinq et dix couleurs en cytométrie en flux Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Coleen Delatte, Auteur ; Louise-Marie Vincent, Directeur de la recherche Editeur : Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale Année de publication : 2021 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : Notre-Dame de Grâce Gosselies Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Ce travail de fin d’études fut réalisé au sein du laboratoire d’hématologie à l’hopital Notre-Dame de Grâce de Gossselies.Le sujet est l’analyse comparative de deux panels d’immunophénotypage cinq et dix couleurs en cytométrie en flux. Ces dernières années, la cytométrie en flux a beaucoup évoluée et permet à ce jour de diagnostiquer et de suivre de nombreuses hémopathies malignes et, plus particulièrement au laboratoire, les lymphomes. Cette technique est utilisée en complément d’une numération et d’un examen cytologique des cellules. Le cytomètre en flux permet d’obtenir différentes informations sur les cellules en passant devant un laser. Les données récoltées donnent des caractéristiques telles que la taille, la granularité ainsi que certains marqueurs antigéniques de chaque cellule individuellement. Lors de mon arrivée au sein du laboratoire, le cytomètre en flux Beckman Coulter Navios EX, fonctionnait avec un panel de cinq couleurs et un seul laser était utilisé. Mon travail de fin d’étude a permis, en complément du travail de Klara Kara de l’an dernier, de mettre au point un panel d’anticorps avec dix fluorochromes différents permettant de réaliser l’exploration simultanée de douze paramètres analysés avec 3 lasers. Ce présent travail compare l’ancien panel 5 couleurs et le nouveau panel 10 couleurs, étudie la répétabilité et la stabilité de ce panel. Note de contenu : Table des matières
Présentation du lieu de stage............................................................................................. 7
Introduction générale ........................................................................................................ 8
1. La cytométrie en flux : ................................................................................................ 9
1.1. Principe général ..............................................................................................................9
1.1.1. Principe de focalisation hydrodynamique .....................................................................................10
1.1.2. Principe optique ............................................................................................................................11
1.1.3. Principe électronique ....................................................................................................................13
1.1.4. Les fluorochromes .........................................................................................................................14
1.1.5. Le chevauchement et les compensations spectrales ....................................................................15
1.1.6. Les marqueurs de différenciation..................................................................................................16
2. Automate Beckman Coulter Navios EX...................................................................... 17
3. Quand doit-on réaliser un immunophénotypage ? .................................................... 18
4. Comment interpréter un histogramme de cytométrie en flux ? ................................. 19
5. Les pathologies ........................................................................................................ 20
5.1. La lymphocytose B monoclonale ...................................................................................21
5.2. La leucémie lymphoïde chronique (LLC) ........................................................................21
5.3. La leucémie à tricholeucocytes......................................................................................25
6. Marqueurs utilisés pour le diagnostic des syndromes lymphoprolifératifs des cellules B
chroniques ....................................................................................................................... 26
6.1. Modification du phénotypage à la suite d’un traitement...............................................29
7. Objectifs du travail de fin d’étude............................................................................. 30
8. Matériel et méthode de travail pour réaliser un immunophénotypage ..................... 31
8.1. Matériel utilisé..............................................................................................................31
8.2. Méthode.......................................................................................................................31
8.2.1. Mode opératoire[26] .......................................................................................................................32
9. Mise en place d’un panel dix couleurs....................................................................... 33
10. La répétabilité de la méthode ............................................................................... 36
11. La stabilité de la méthode..................................................................................... 38
12. Comparaison et discussion des résultats ............................................................... 43
13. Conclusion ............................................................................................................ 57
Glossaire.......................................................................................................................... 58
Abréviations .................................................................................................................... 59
Table des figures.............................................................................................................. 60
Table des tableaux........................................................................................................... 60
Bibliographie : ................................................................................................................. 61
Annexes ........................................................................................................................... 65Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=100318 Analyse comparative de deux panels d’immunophénotypage cinq et dix couleurs en cytométrie en flux [TFE / Mémoire] / Coleen Delatte, Auteur ; Louise-Marie Vincent, Directeur de la recherche . - Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale, 2021.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur
Langues : Français (fre)
Mots-clés : Notre-Dame de Grâce Gosselies Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Ce travail de fin d’études fut réalisé au sein du laboratoire d’hématologie à l’hopital Notre-Dame de Grâce de Gossselies.Le sujet est l’analyse comparative de deux panels d’immunophénotypage cinq et dix couleurs en cytométrie en flux. Ces dernières années, la cytométrie en flux a beaucoup évoluée et permet à ce jour de diagnostiquer et de suivre de nombreuses hémopathies malignes et, plus particulièrement au laboratoire, les lymphomes. Cette technique est utilisée en complément d’une numération et d’un examen cytologique des cellules. Le cytomètre en flux permet d’obtenir différentes informations sur les cellules en passant devant un laser. Les données récoltées donnent des caractéristiques telles que la taille, la granularité ainsi que certains marqueurs antigéniques de chaque cellule individuellement. Lors de mon arrivée au sein du laboratoire, le cytomètre en flux Beckman Coulter Navios EX, fonctionnait avec un panel de cinq couleurs et un seul laser était utilisé. Mon travail de fin d’étude a permis, en complément du travail de Klara Kara de l’an dernier, de mettre au point un panel d’anticorps avec dix fluorochromes différents permettant de réaliser l’exploration simultanée de douze paramètres analysés avec 3 lasers. Ce présent travail compare l’ancien panel 5 couleurs et le nouveau panel 10 couleurs, étudie la répétabilité et la stabilité de ce panel. Note de contenu : Table des matières
Présentation du lieu de stage............................................................................................. 7
Introduction générale ........................................................................................................ 8
1. La cytométrie en flux : ................................................................................................ 9
1.1. Principe général ..............................................................................................................9
1.1.1. Principe de focalisation hydrodynamique .....................................................................................10
1.1.2. Principe optique ............................................................................................................................11
1.1.3. Principe électronique ....................................................................................................................13
1.1.4. Les fluorochromes .........................................................................................................................14
1.1.5. Le chevauchement et les compensations spectrales ....................................................................15
1.1.6. Les marqueurs de différenciation..................................................................................................16
2. Automate Beckman Coulter Navios EX...................................................................... 17
3. Quand doit-on réaliser un immunophénotypage ? .................................................... 18
4. Comment interpréter un histogramme de cytométrie en flux ? ................................. 19
5. Les pathologies ........................................................................................................ 20
5.1. La lymphocytose B monoclonale ...................................................................................21
5.2. La leucémie lymphoïde chronique (LLC) ........................................................................21
5.3. La leucémie à tricholeucocytes......................................................................................25
6. Marqueurs utilisés pour le diagnostic des syndromes lymphoprolifératifs des cellules B
chroniques ....................................................................................................................... 26
6.1. Modification du phénotypage à la suite d’un traitement...............................................29
7. Objectifs du travail de fin d’étude............................................................................. 30
8. Matériel et méthode de travail pour réaliser un immunophénotypage ..................... 31
8.1. Matériel utilisé..............................................................................................................31
8.2. Méthode.......................................................................................................................31
8.2.1. Mode opératoire[26] .......................................................................................................................32
9. Mise en place d’un panel dix couleurs....................................................................... 33
10. La répétabilité de la méthode ............................................................................... 36
11. La stabilité de la méthode..................................................................................... 38
12. Comparaison et discussion des résultats ............................................................... 43
13. Conclusion ............................................................................................................ 57
Glossaire.......................................................................................................................... 58
Abréviations .................................................................................................................... 59
Table des figures.............................................................................................................. 60
Table des tableaux........................................................................................................... 60
Bibliographie : ................................................................................................................. 61
Annexes ........................................................................................................................... 65Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=100318 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Les anticoagulants directs sous les projecteurs : quel(s) test(s) pour quelle molécule ? / Anaïs LEFEVRE
Titre : Les anticoagulants directs sous les projecteurs : quel(s) test(s) pour quelle molécule ? Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Anaïs LEFEVRE, Auteur Année de publication : 2014 Langues : Français (fre) Mots-clés : BIOLOGIE MÉDICALE CLINIQUE NOTRE-DAME DE GRACE GOSSELIES ANTICOAGULANTS DIRECTS TEST COAGULATION IN VIVO IN VITRO INHIBITEURS ANTICOAGULANT THROMBINE CEPHALINE PROTHROMBINE NOACS Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65400 Les anticoagulants directs sous les projecteurs : quel(s) test(s) pour quelle molécule ? [TFE / Mémoire] / Anaïs LEFEVRE, Auteur . - 2014.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : BIOLOGIE MÉDICALE CLINIQUE NOTRE-DAME DE GRACE GOSSELIES ANTICOAGULANTS DIRECTS TEST COAGULATION IN VIVO IN VITRO INHIBITEURS ANTICOAGULANT THROMBINE CEPHALINE PROTHROMBINE NOACS Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65400 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Les Campylobacter : Test antigénétique ou Culture ? Le dilemme… / Marius MEBOUPYEWO
Titre : Les Campylobacter : Test antigénétique ou Culture ? Le dilemme… Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Marius MEBOUPYEWO, Auteur Année de publication : 2014 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : BIOLOGIE MÉDICALE CLINIQUE NOTRE DAME DE GRACE GOSSELIES CAMPYLOBACTER TEST ANTIGENIQUE CULTURE CARACTERES BIOCHIMIQUES PATHOLOGIE TRANSMISSION DIAGNOSTIC ESPECE DIARRHEES JEJUNI CAMPYLOBACTERIOSE TESTS BIOCHIMIQUES SPRECTROMETRIE MALDI-TOF BUTZLER Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65404 Les Campylobacter : Test antigénétique ou Culture ? Le dilemme… [TFE / Mémoire] / Marius MEBOUPYEWO, Auteur . - 2014.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur
Langues : Français (fre)
Mots-clés : BIOLOGIE MÉDICALE CLINIQUE NOTRE DAME DE GRACE GOSSELIES CAMPYLOBACTER TEST ANTIGENIQUE CULTURE CARACTERES BIOCHIMIQUES PATHOLOGIE TRANSMISSION DIAGNOSTIC ESPECE DIARRHEES JEJUNI CAMPYLOBACTERIOSE TESTS BIOCHIMIQUES SPRECTROMETRIE MALDI-TOF BUTZLER Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65404 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire CytoDiff™ de la formule sanguine et comparaison par rapport aux méthodes de références / LEON NTHEUBISSE
Titre : CytoDiff™ de la formule sanguine et comparaison par rapport aux méthodes de références Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : LEON NTHEUBISSE, Auteur Année de publication : 2016 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale CNDG Gosselies hématopoïèse cytoDiff hémogramme formule leucocytaire hémopathie cytométrie en flux Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Introduction ...................................................................................................................... 8
1 Hématopoïèse ........................................................................................................... 10
1.1 Définition...................................................................................................................................................10
1.2 Localisation ...............................................................................................................................................10
1.3 Mécanisme de différenciation...................................................................................................................11
1.3.1 Les cellules souches hématopoïétiques ...............................................................................................11
1.3.2 Les progéniteurs ...................................................................................................................................11
1.3.3 Les précurseurs .....................................................................................................................................11
1.4 Régulation .................................................................................................................................................12
1.4.1 Les facteurs de croissance CSF (Colony Stimulating Factors) ...............................................................13
1.4.2 Le microenvironnement médullaire .....................................................................................................13
1.4.3 Les facteurs de régulation négatifs.......................................................................................................13
1.5 Importance clinique ..................................................................................................................................13
2 Hémogramme et formule leucocytaire ...................................................................... 14
2.1 Eléments figurés du sang .........................................................................................................................14
2.2 Valeurs de références ................................................................................................................................16
2.3 Formule leucocytaire et variations ............................................................................................................17
2.4 Validation de l’hémogramme ...................................................................................................................17
3 Quelques hémopathies malignes ............................................................................... 18
3.1 Leucémie aiguë .........................................................................................................................................18
3.1.1 Leucémies myéloïdes aiguës ................................................................................................................18
3.1.2 Leucémies lymphoblastiques aigües ....................................................................................................19
3.1.3 Manifestations cliniques.......................................................................................................................19
3.2 La leucémie myéloïde chronique ...............................................................................................................19
3.3 La maladie de Vaquez ou polyglobulie primitive : .....................................................................................20
3.4 La splénomégalie myéloïde ou myélofibrose primitive .............................................................................21
3.5 Les lymphomes ..........................................................................................................................................21
4 Automates ................................................................................................................ 21
4.1 Analyseur hématologique (cas du Coulter DxH800) .................................................................................21
4.2 Principe de l’ACCUCOUNT [7] ....................................................................................................................22
4.2.1 Numération leucocytaire ......................................................................................................................22
4.2.2 Numération des globules rouges ..........................................................................................................22
4.2.3 Formule leucocytaire ............................................................................................................................23
4.2.4 Numération des plaquettes ..................................................................................................................23
5 Cellavision ................................................................................................................ 23
6 Cytométrie en flux .................................................................................................... 23
6.1 Principe .....................................................................................................................................................23
6.1.1 La partie fluidique : ...............................................................................................................................24
6.1.2 La partie optique et électronique .........................................................................................................24
6.1.3 Compensations de fluorescence ..........................................................................................................25
6.1.4 La partie informatique ..........................................................................................................................25
7 Réactif CytoDiff™ ...................................................................................................... 26
7.1 Rôle ...........................................................................................................................................................26
7.2 Principe .....................................................................................................................................................26
7.3 Les marqueurs ...........................................................................................................................................26
8 Matériels et méthodes .............................................................................................. 36
8.1 Coulter DxH800 .........................................................................................................................................36
8.2 Cytomic FC 500 ..........................................................................................................................................37
8.3 Microscopie ...............................................................................................................................................40
8.4 Cellavision .................................................................................................................................................41
9 Résultats et Discussion .............................................................................................. 43
9.1 Patients normaux ......................................................................................................................................43
9.1.1 Déterminations des valeurs de références ..........................................................................................43
9.1.2 Corrélation entre CytoDiff™ - DxH800, CytoDiff™- Cellavision, CytoDiff™- microscopie .....................44
9.2 Patients pathologiques .............................................................................................................................45
9.3 Répétabilité du CytoDiff™ .........................................................................................................................46
9.4 Stabilité du CytoDiff™ ...............................................................................................................................48
9.5 Évaluation du CytoDiff™............................................................................................................................49
Conclusion générale ......................................................................................................... 50
Bibliographie ................................................................................................................... 51
Tables des illustrations..................................................................................................... 53
Table des figures ....................................................................................................................................................53
Table des tableaux .................................................................................................................................................54
Table des annexes ...... 54Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65684 CytoDiff™ de la formule sanguine et comparaison par rapport aux méthodes de références [TFE / Mémoire] / LEON NTHEUBISSE, Auteur . - 2016.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : biologie médicale CNDG Gosselies hématopoïèse cytoDiff hémogramme formule leucocytaire hémopathie cytométrie en flux Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Note de contenu : Table des matières
Introduction ...................................................................................................................... 8
1 Hématopoïèse ........................................................................................................... 10
1.1 Définition...................................................................................................................................................10
1.2 Localisation ...............................................................................................................................................10
1.3 Mécanisme de différenciation...................................................................................................................11
1.3.1 Les cellules souches hématopoïétiques ...............................................................................................11
1.3.2 Les progéniteurs ...................................................................................................................................11
1.3.3 Les précurseurs .....................................................................................................................................11
1.4 Régulation .................................................................................................................................................12
1.4.1 Les facteurs de croissance CSF (Colony Stimulating Factors) ...............................................................13
1.4.2 Le microenvironnement médullaire .....................................................................................................13
1.4.3 Les facteurs de régulation négatifs.......................................................................................................13
1.5 Importance clinique ..................................................................................................................................13
2 Hémogramme et formule leucocytaire ...................................................................... 14
2.1 Eléments figurés du sang .........................................................................................................................14
2.2 Valeurs de références ................................................................................................................................16
2.3 Formule leucocytaire et variations ............................................................................................................17
2.4 Validation de l’hémogramme ...................................................................................................................17
3 Quelques hémopathies malignes ............................................................................... 18
3.1 Leucémie aiguë .........................................................................................................................................18
3.1.1 Leucémies myéloïdes aiguës ................................................................................................................18
3.1.2 Leucémies lymphoblastiques aigües ....................................................................................................19
3.1.3 Manifestations cliniques.......................................................................................................................19
3.2 La leucémie myéloïde chronique ...............................................................................................................19
3.3 La maladie de Vaquez ou polyglobulie primitive : .....................................................................................20
3.4 La splénomégalie myéloïde ou myélofibrose primitive .............................................................................21
3.5 Les lymphomes ..........................................................................................................................................21
4 Automates ................................................................................................................ 21
4.1 Analyseur hématologique (cas du Coulter DxH800) .................................................................................21
4.2 Principe de l’ACCUCOUNT [7] ....................................................................................................................22
4.2.1 Numération leucocytaire ......................................................................................................................22
4.2.2 Numération des globules rouges ..........................................................................................................22
4.2.3 Formule leucocytaire ............................................................................................................................23
4.2.4 Numération des plaquettes ..................................................................................................................23
5 Cellavision ................................................................................................................ 23
6 Cytométrie en flux .................................................................................................... 23
6.1 Principe .....................................................................................................................................................23
6.1.1 La partie fluidique : ...............................................................................................................................24
6.1.2 La partie optique et électronique .........................................................................................................24
6.1.3 Compensations de fluorescence ..........................................................................................................25
6.1.4 La partie informatique ..........................................................................................................................25
7 Réactif CytoDiff™ ...................................................................................................... 26
7.1 Rôle ...........................................................................................................................................................26
7.2 Principe .....................................................................................................................................................26
7.3 Les marqueurs ...........................................................................................................................................26
8 Matériels et méthodes .............................................................................................. 36
8.1 Coulter DxH800 .........................................................................................................................................36
8.2 Cytomic FC 500 ..........................................................................................................................................37
8.3 Microscopie ...............................................................................................................................................40
8.4 Cellavision .................................................................................................................................................41
9 Résultats et Discussion .............................................................................................. 43
9.1 Patients normaux ......................................................................................................................................43
9.1.1 Déterminations des valeurs de références ..........................................................................................43
9.1.2 Corrélation entre CytoDiff™ - DxH800, CytoDiff™- Cellavision, CytoDiff™- microscopie .....................44
9.2 Patients pathologiques .............................................................................................................................45
9.3 Répétabilité du CytoDiff™ .........................................................................................................................46
9.4 Stabilité du CytoDiff™ ...............................................................................................................................48
9.5 Évaluation du CytoDiff™............................................................................................................................49
Conclusion générale ......................................................................................................... 50
Bibliographie ................................................................................................................... 51
Tables des illustrations..................................................................................................... 53
Table des figures ....................................................................................................................................................53
Table des tableaux .................................................................................................................................................54
Table des annexes ...... 54Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65684 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Le dépistage systématique des hémoglobinopathies sur sang de cordon par la méthode de Capillarys / Jullyan NITELET
Titre : Le dépistage systématique des hémoglobinopathies sur sang de cordon par la méthode de Capillarys Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Jullyan NITELET, Auteur Année de publication : 2012 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : BIOLOGIE CLINIQUE , CLINIQUE NOTRE DAME DE GRACE GOSSELIES HEMOGLOBINOPATHIES HEMOGLOBINE ANEMIE DREPANOCYTOSE CAPILLARYS EFFET JOULE HPLC FOCALISATION ISOELECTRIQUE ELECTROPHORESE TEST DE KLEIHAUER Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65436 Le dépistage systématique des hémoglobinopathies sur sang de cordon par la méthode de Capillarys [TFE / Mémoire] / Jullyan NITELET, Auteur . - 2012.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur
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Mots-clés : BIOLOGIE CLINIQUE , CLINIQUE NOTRE DAME DE GRACE GOSSELIES HEMOGLOBINOPATHIES HEMOGLOBINE ANEMIE DREPANOCYTOSE CAPILLARYS EFFET JOULE HPLC FOCALISATION ISOELECTRIQUE ELECTROPHORESE TEST DE KLEIHAUER Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65436 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Détection de pathogènes dans les selles: jusqu'où l'automatisation est-elle possible ? / Pierre-Yves NOERENS
PermalinkEtude de l’expression des récepteurs P2Y lors de la différenciation ostéogénique et adipogénique des cellules souches mésenchymateuses du tissus adipeux / Jérôme ZOLA
PermalinkEtude de la fonction anti-inflammatoire des lymphocytes T régulateurs in vitro [TFE extérieur] / Sarah Leclercq
PermalinkEtude par hybridation in situ de l’expression du microARN miR-210 dans les cancers du sein triple négatifs / SARA SOLLENNITA
PermalinkEtude du rôle du facteur de transcription Dmrt4 dans le développement du cortex cérébral chez la souris / ÉMILIE POSSONI
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