Centre de Documentation Campus Montignies
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TFE Technologue de laboratoire médical
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Caractérisation du transcrit EGFL7/miR-126 dans un modèle de lymphome viro-induit chez le poulet / ELODIE DEBODT
Titre : Caractérisation du transcrit EGFL7/miR-126 dans un modèle de lymphome viro-induit chez le poulet Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : ELODIE DEBODT, Auteur ; Isabelle Gennart, Directeur de la recherche Année de publication : 2015 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale Université de Namur Unité de recherche vétérinaire intégrée URVI Volailles poulets : maladie Virus Maladie de Marek Virus GaHV-2 Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64284 Caractérisation du transcrit EGFL7/miR-126 dans un modèle de lymphome viro-induit chez le poulet [TFE / Mémoire] / ELODIE DEBODT, Auteur ; Isabelle Gennart, Directeur de la recherche . - 2015.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : biologie médicale Université de Namur Unité de recherche vétérinaire intégrée URVI Volailles poulets : maladie Virus Maladie de Marek Virus GaHV-2 Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64284 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Les cellules souches pulpaires comme outil d’évaluation de la biocompatibilité de matériaux dentaires et de développement de nouvelles procédures de régénération pulpaire / AMANDINE POCHET
Titre : Les cellules souches pulpaires comme outil d’évaluation de la biocompatibilité de matériaux dentaires et de développement de nouvelles procédures de régénération pulpaire Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : AMANDINE POCHET, Auteur ; Julie Vanacker, Directeur de la recherche Année de publication : 2015 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale : DRI Dental Regenerative & Innovative Materials cellules souches pulpaires // matériaux dentaires Régénération pulpaire Dents Résines composites Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Résumé
Actuellement, la carie dentaire est un mal qui touche un grand nombre d’êtres humains dans le monde entier. Elle cause douleurs, inflammation et nécrose de la pulpe. La présence d’une carie profonde peut mener à la dévitalisation de la dent. Le traitement de la carie consiste à combler l’orifice en appliquant un produit de restauration inerte, comme les composites dentaires qui sont de plus en plus utilisés comme substitut à l’amalgame en argent qui contient du mercure et qui est peu esthétique.
Le but de cette étude est composé de deux parties axées autour d’un même élément : les cellules souches dentaires.
La première partie du projet s’articule autour de la recherche d’une alternative à la dévitalisation de la dent grâce à la régénération d’un nouveau tissu pulpaire. La pulpe enflammée serait remplacée par un hydrogel contenant des facteurs de croissance nécessaire à la migration et au développement des cellules de pulpe. Pour cela, des hydrogels de matrice extracellulaire (ECM) de pulpe et de dentine ont été réalisé.
La seconde partie s’intéresse aux composites utilisés pour la restauration dentaire. Nous avons voulu voir si les résines composites pouvaient avoir un effet toxique sur nos cellules dentaires. Des tests de cytotoxicité (MTS) qui évaluent la fonction mitochondriale des cellules ont été effectués afin d’évaluer la viabilité des cellules après mise en contact indirect avec différents matériaux dentaires.
Pour réaliser ces différentes parties, des dents de sagesse humaines immatures et saines ont été récoltées.
Deux pools de cellules distincts ont été constitués en collectant d’une part les cellules souches de pulpe et d’autre part celles de papilles de ces dents de sagesse. Les dents ont donc servi à la formation des hydrogels et les cellules souches à la réalisation des tests de cytotoxicitéNote de contenu : Table des matières
Remerciements
Présentation du lieu de stage
Introduction ................................................................................................................................ 8
Contexte général ........................................................................................................................ 9
1. Les dents ........................................................................................................................ 10
1.1. Quelques généralités ............................................................................................. 10
1.2. L’émail .................................................................................................................... 12
1.3. La dentine ............................................................................................................... 12
1.4. La pulpe .................................................................................................................. 13
1.5. Le développement de la dent : rôle de la papille apicale ...................................... 14
1.6. La destruction des tissus dentaires par le processus carieux ................................ 15
2. Les résines composites et leur cytotoxicité .................................................................. 17
3. L’ingénierie tissulaire..................................................................................................... 20
3.1. Les cellules souches ............................................................................................... 21
3.2. Les hydrogels .......................................................................................................... 23
Objectifs et Stratégie ................................................................................................................ 26
Matériel et Méthodes .............................................................................................................. 28
1. La culture de cellules souches ....................................................................................... 29
1.1. Le matériel et réactifs ............................................................................................ 29
1.2. La préparation des milieux de culture ................................................................... 30
1.3. La réalisation des cultures ..................................................................................... 30
1.4. Le décollage et comptage de cellules .................................................................... 31
1.5. La congélation de cellules ...................................................................................... 31
2. La formation des hydrogels d’ECM ............................................................................... 32
2.1. Les réactifs ............................................................................................................. 32
2.2. Le matériel ............................................................................................................. 32
2.3. La préparation des solutions .................................................................................. 33
2.4. La réalisation des hydrogels ................................................................................... 34
3. Les tests de cytotoxicité ................................................................................................ 36
3.1. Le matériel et réactifs ............................................................................................ 37
5
3.2. La préparation des éluats des composites ............................................................ 37
3.3. La préparation des cellules .................................................................................... 38
3.4. La réalisation du test MTS ...................................................................................... 39
Résultats et discussions ............................................................................................................ 40
1. La récolte et la culture de cellules souches dentaires .................................................. 41
2. La préparation des hydrogels de matrice extracellulaire ............................................. 42
3. L’évaluation de la cytotoxicité de composites dentaires .............................................. 43
4. Discussion et perspectives ............................................................................................ 46
4.1. Les cellules souches ............................................................................................... 46
4.2. Les hydrogels de matrices extracellulaires ............................................................ 46
4.3. L’évaluation de la cytotoxicité de matériaux de restauration. .............................. 46
Conclusion générale ................................................................................................................. 47
Liste des abréviations ............................................................................................................... 48
Bibliographie ............................................................................................................................ 49Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65487 Les cellules souches pulpaires comme outil d’évaluation de la biocompatibilité de matériaux dentaires et de développement de nouvelles procédures de régénération pulpaire [TFE / Mémoire] / AMANDINE POCHET, Auteur ; Julie Vanacker, Directeur de la recherche . - 2015.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Langues : Français (fre)
Mots-clés : biologie médicale : DRI Dental Regenerative & Innovative Materials cellules souches pulpaires // matériaux dentaires Régénération pulpaire Dents Résines composites Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Résumé
Actuellement, la carie dentaire est un mal qui touche un grand nombre d’êtres humains dans le monde entier. Elle cause douleurs, inflammation et nécrose de la pulpe. La présence d’une carie profonde peut mener à la dévitalisation de la dent. Le traitement de la carie consiste à combler l’orifice en appliquant un produit de restauration inerte, comme les composites dentaires qui sont de plus en plus utilisés comme substitut à l’amalgame en argent qui contient du mercure et qui est peu esthétique.
Le but de cette étude est composé de deux parties axées autour d’un même élément : les cellules souches dentaires.
La première partie du projet s’articule autour de la recherche d’une alternative à la dévitalisation de la dent grâce à la régénération d’un nouveau tissu pulpaire. La pulpe enflammée serait remplacée par un hydrogel contenant des facteurs de croissance nécessaire à la migration et au développement des cellules de pulpe. Pour cela, des hydrogels de matrice extracellulaire (ECM) de pulpe et de dentine ont été réalisé.
La seconde partie s’intéresse aux composites utilisés pour la restauration dentaire. Nous avons voulu voir si les résines composites pouvaient avoir un effet toxique sur nos cellules dentaires. Des tests de cytotoxicité (MTS) qui évaluent la fonction mitochondriale des cellules ont été effectués afin d’évaluer la viabilité des cellules après mise en contact indirect avec différents matériaux dentaires.
Pour réaliser ces différentes parties, des dents de sagesse humaines immatures et saines ont été récoltées.
Deux pools de cellules distincts ont été constitués en collectant d’une part les cellules souches de pulpe et d’autre part celles de papilles de ces dents de sagesse. Les dents ont donc servi à la formation des hydrogels et les cellules souches à la réalisation des tests de cytotoxicitéNote de contenu : Table des matières
Remerciements
Présentation du lieu de stage
Introduction ................................................................................................................................ 8
Contexte général ........................................................................................................................ 9
1. Les dents ........................................................................................................................ 10
1.1. Quelques généralités ............................................................................................. 10
1.2. L’émail .................................................................................................................... 12
1.3. La dentine ............................................................................................................... 12
1.4. La pulpe .................................................................................................................. 13
1.5. Le développement de la dent : rôle de la papille apicale ...................................... 14
1.6. La destruction des tissus dentaires par le processus carieux ................................ 15
2. Les résines composites et leur cytotoxicité .................................................................. 17
3. L’ingénierie tissulaire..................................................................................................... 20
3.1. Les cellules souches ............................................................................................... 21
3.2. Les hydrogels .......................................................................................................... 23
Objectifs et Stratégie ................................................................................................................ 26
Matériel et Méthodes .............................................................................................................. 28
1. La culture de cellules souches ....................................................................................... 29
1.1. Le matériel et réactifs ............................................................................................ 29
1.2. La préparation des milieux de culture ................................................................... 30
1.3. La réalisation des cultures ..................................................................................... 30
1.4. Le décollage et comptage de cellules .................................................................... 31
1.5. La congélation de cellules ...................................................................................... 31
2. La formation des hydrogels d’ECM ............................................................................... 32
2.1. Les réactifs ............................................................................................................. 32
2.2. Le matériel ............................................................................................................. 32
2.3. La préparation des solutions .................................................................................. 33
2.4. La réalisation des hydrogels ................................................................................... 34
3. Les tests de cytotoxicité ................................................................................................ 36
3.1. Le matériel et réactifs ............................................................................................ 37
5
3.2. La préparation des éluats des composites ............................................................ 37
3.3. La préparation des cellules .................................................................................... 38
3.4. La réalisation du test MTS ...................................................................................... 39
Résultats et discussions ............................................................................................................ 40
1. La récolte et la culture de cellules souches dentaires .................................................. 41
2. La préparation des hydrogels de matrice extracellulaire ............................................. 42
3. L’évaluation de la cytotoxicité de composites dentaires .............................................. 43
4. Discussion et perspectives ............................................................................................ 46
4.1. Les cellules souches ............................................................................................... 46
4.2. Les hydrogels de matrices extracellulaires ............................................................ 46
4.3. L’évaluation de la cytotoxicité de matériaux de restauration. .............................. 46
Conclusion générale ................................................................................................................. 47
Liste des abréviations ............................................................................................................... 48
Bibliographie ............................................................................................................................ 49Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=65487 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Characterization of a cell line, qualification, and comparison of automata to a manual method for cell counting / Jade Nichols
Titre : Characterization of a cell line, qualification, and comparison of automata to a manual method for cell counting Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Jade Nichols, Auteur ; Caroline Charlier, Directeur de la recherche Editeur : Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale Année de publication : 2021 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Anglais (eng) Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Cell culture is a rapidly expanding field. This is mainly due to the development of new technologies, such as the production of biomedicines. Exothera is a biotechnology firm which optimize process and manufacture’s viral vectors. The analytical team of their laboratory is responsible of supporting and confirming the
production and purification parts of the production line. Hence, they need cells to determine whether the products meet the customer's expectations. To be able to use known cell lines in a production chain, it is necessary to know whether the cell banks that have been created from them are fit for purpose and behave identically to the
original cell line. Therefore, determination of the cell doubling time and assessment of culture sterility are essential. Furthermore, as the bio-production range increases, there is a need to find ways to reduce the time spent on each step of the cell culture process. One such time-consuming step is manual cell counting, which is necessary as part of a cell passage to keep the cell culture alive. Manual counting could be replaced by an automated method. At Exothera, two automata
are available: the iPrasens Norma XS and the Vi-CELL XR. To ensure that these two machines meet the Exothera’s requirements, it is necessary to
qualify them by testing their linearity range and accuracy. This is the purpose of this thesis, a cell characterization, and a method qualification on two
machines. The results obtained will make it possible to determine whether the cells can be used in an analytical laboratory, and whether the two automata can replace a manual method.Note de contenu : able of Contents
Presentation of the company ...................................................................................................6
General introduction.................................................................................................................8
1 General context ..................................................................................................................9
1.1 Cell culture ..................................................................................................................9
1.2 Cell line characterization...........................................................................................13
1.2.1 The cell doubling time........................................................................................13
1.2.2 Biological contamination ...................................................................................14
1.3 Cell counting..............................................................................................................21
1.3.1 Bürker cell counting chamber............................................................................21
1.3.2 iPrasens Norma XS .............................................................................................24
1.3.3 The Vi-CELL XR....................................................................................................27
1.4 Qualification ..............................................................................................................30
1.4.1 Linearity .............................................................................................................30
1.4.2 Accuracy.............................................................................................................31
2 Objectives .........................................................................................................................33
3 Material and method........................................................................................................34
3.1 Cell characterization..................................................................................................34
3.1.1 Cell doubling time. .............................................................................................34
3.1.2 Sterility test ........................................................................................................39
3.1.3 Mycoplasma detection ......................................................................................43
3.2 Cell counting..............................................................................................................46
3.2.1 Determining the linearity, the range, the LOD and the LOQ.............................46
3.2.2 Determining the accuracy of the method .........................................................48
4 Results and discussion ......................................................................................................50
4.1 Cell characterization..................................................................................................50
5
4.1.1 The cell doubling time........................................................................................51
4.1.2 The sterility ........................................................................................................55
4.1.3 The mycoplasma ................................................................................................56
4.2 Automata’s qualification ...........................................................................................57
4.2.1 The linearity .......................................................................................................57
4.2.2 Accuracy based on qualification testing ............................................................64
4.2.3 Accuracy based on routine testing ....................................................................67
5 Conclusion and perspective..............................................................................................70
Abbreviations, glossary, and list of figures ............................................................................72
Bibliography.............................................................................................................................76
Annex .......................................................................................................................................79
Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=100372 Characterization of a cell line, qualification, and comparison of automata to a manual method for cell counting [TFE / Mémoire] / Jade Nichols, Auteur ; Caroline Charlier, Directeur de la recherche . - Montignies-sur-Sambre : Helha. Paramédical - Biologie médicale, 2021.
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Langues : Anglais (eng)
Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Résumé : Cell culture is a rapidly expanding field. This is mainly due to the development of new technologies, such as the production of biomedicines. Exothera is a biotechnology firm which optimize process and manufacture’s viral vectors. The analytical team of their laboratory is responsible of supporting and confirming the
production and purification parts of the production line. Hence, they need cells to determine whether the products meet the customer's expectations. To be able to use known cell lines in a production chain, it is necessary to know whether the cell banks that have been created from them are fit for purpose and behave identically to the
original cell line. Therefore, determination of the cell doubling time and assessment of culture sterility are essential. Furthermore, as the bio-production range increases, there is a need to find ways to reduce the time spent on each step of the cell culture process. One such time-consuming step is manual cell counting, which is necessary as part of a cell passage to keep the cell culture alive. Manual counting could be replaced by an automated method. At Exothera, two automata
are available: the iPrasens Norma XS and the Vi-CELL XR. To ensure that these two machines meet the Exothera’s requirements, it is necessary to
qualify them by testing their linearity range and accuracy. This is the purpose of this thesis, a cell characterization, and a method qualification on two
machines. The results obtained will make it possible to determine whether the cells can be used in an analytical laboratory, and whether the two automata can replace a manual method.Note de contenu : able of Contents
Presentation of the company ...................................................................................................6
General introduction.................................................................................................................8
1 General context ..................................................................................................................9
1.1 Cell culture ..................................................................................................................9
1.2 Cell line characterization...........................................................................................13
1.2.1 The cell doubling time........................................................................................13
1.2.2 Biological contamination ...................................................................................14
1.3 Cell counting..............................................................................................................21
1.3.1 Bürker cell counting chamber............................................................................21
1.3.2 iPrasens Norma XS .............................................................................................24
1.3.3 The Vi-CELL XR....................................................................................................27
1.4 Qualification ..............................................................................................................30
1.4.1 Linearity .............................................................................................................30
1.4.2 Accuracy.............................................................................................................31
2 Objectives .........................................................................................................................33
3 Material and method........................................................................................................34
3.1 Cell characterization..................................................................................................34
3.1.1 Cell doubling time. .............................................................................................34
3.1.2 Sterility test ........................................................................................................39
3.1.3 Mycoplasma detection ......................................................................................43
3.2 Cell counting..............................................................................................................46
3.2.1 Determining the linearity, the range, the LOD and the LOQ.............................46
3.2.2 Determining the accuracy of the method .........................................................48
4 Results and discussion ......................................................................................................50
4.1 Cell characterization..................................................................................................50
5
4.1.1 The cell doubling time........................................................................................51
4.1.2 The sterility ........................................................................................................55
4.1.3 The mycoplasma ................................................................................................56
4.2 Automata’s qualification ...........................................................................................57
4.2.1 The linearity .......................................................................................................57
4.2.2 Accuracy based on qualification testing ............................................................64
4.2.3 Accuracy based on routine testing ....................................................................67
5 Conclusion and perspective..............................................................................................70
Abbreviations, glossary, and list of figures ............................................................................72
Bibliography.............................................................................................................................76
Annex .......................................................................................................................................79
Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=100372 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Comparaison de 2 tests immunochromatographiques commerciaux pour l'identification de carbapénémases chez les Entérobactéries / Anne-Sophie Berger
Titre : Comparaison de 2 tests immunochromatographiques commerciaux pour l'identification de carbapénémases chez les Entérobactéries Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : Anne-Sophie Berger, Auteur ; Pierre Bogaerts, Directeur de la recherche ; Nicolas Kesteman, Directeur de la recherche Année de publication : 2018 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur Langues : Français (fre) Mots-clés : biologie médicale Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=66071 Comparaison de 2 tests immunochromatographiques commerciaux pour l'identification de carbapénémases chez les Entérobactéries [TFE / Mémoire] / Anne-Sophie Berger, Auteur ; Pierre Bogaerts, Directeur de la recherche ; Nicolas Kesteman, Directeur de la recherche . - 2018.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez-vous connecter pour accéder à votre compte lecteur
Langues : Français (fre)
Mots-clés : biologie médicale Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=66071 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Comparaison de 4 milieux chromogènes permettant la détection des MRSA / BLAUWAERT Marine
Titre : Comparaison de 4 milieux chromogènes permettant la détection des MRSA Type de document : TFE / Mémoire Auteurs : BLAUWAERT Marine, Année de publication : 2009 Note générale : Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur. Mots-clés : STAPHYLOCOCCUS AUREUS RESISTANTS A LA METHICILLINE MRSA MILIEUX CHROMOGENES FROTTIS DE PLAIES INFECTIONS NOSOCOMIALES RESISTANCE AUX ANTIBIOTIQUES Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64545 Comparaison de 4 milieux chromogènes permettant la détection des MRSA [TFE / Mémoire] / BLAUWAERT Marine, . - 2009.
Le fichier numérique de ce document est disponible uniquement pour les membres de la Haute Ecole Louvain-en-Hainaut ainsi que ses étudiants. Veuillez vous connecter pour accéder à votre compte lecteur.
Mots-clés : STAPHYLOCOCCUS AUREUS RESISTANTS A LA METHICILLINE MRSA MILIEUX CHROMOGENES FROTTIS DE PLAIES INFECTIONS NOSOCOMIALES RESISTANCE AUX ANTIBIOTIQUES Index. décimale : TFE Bio Med TFE Biologie médicale Permalink : ./index.php?lvl=notice_display&id=64545 Exemplaires
Cote Support Localisation Section Disponibilité aucun exemplaire Comparaison de l'acquisition et de la transmission de 2 souches du virus Y de la pomme de terre (PVY ntn et PVY o) par Myzus persicae / Marine JORDAENS
PermalinkComparaison de deux kits pour la détection du génome de Chlamydia trachomatis / Neisseria gonorrhoeae : Abbott RealTime CT/NG Assay et Seegene Allplex CT/NG/MG/TV Assay / Alperen Karacaoglan
PermalinkComparaison de deux techniques analytiques pour le dosage semi-quantitatif des anticorps neutralisants anti-SARS-CoV-2 : PRNT vs SVNT. / Anne-Yseult Boucher
PermalinkComparaison de différents produits décalcifiants dans le but d'améliorer la qualité des techniques de coloration / DELFORGE Roxane
PermalinkComparaison de l’électrophorèse de l’hémoglobine sur l’Hydrasys et le Capillarys de la firme SEBIA. / Laura Pistone Nascone
PermalinkComparaison des flux des prélèvements sanguins au laboratoire de l'hôpital Principal (Dakar, Sénégal) et au laboratoire du CHU de Mont-Godinne / OUVERTUS Adeline
PermalinkComparaison d'un kit immunochromatographique et d'une nouvelle technique d'amplification isotherme pour la recherche de Streptococcus pyogenes dans des frottis de gorge par rapport à la culture / Louise Ripet
PermalinkComparaison de kits pour la détection rapide de l’antigène du Streptocoque du groupe A et pour la détection rapide des antigènes du Rotavirus et de l’Adénovirus / Florent Bianchi
PermalinkComparaison de la méthode de diffusion sur gélose et la méthode des microdilutions ou Sensititre® pour la sensibilité des Bacilles Gram négatif au Céfidérocol. / Boris Joseph Nganwoua Wonkam
PermalinkComparaison de méthodes de détermination de sensibilité à la colistine chez les entérobactéries, les Pseudomonas et les Acinetobacter. / Yves Van Wijnsberghe
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